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玫瑰黃酮提取物對高脂血癥大鼠血脂水平和抗氧化作用的研究

2021-10-30 10:16:20魏志勇阿衣古麗麥麥提海熱姑麗馬木提阿依考賽爾亞力坤景玉霞
新疆醫科大學學報 2021年9期
關鍵詞:黃酮血脂模型

魏志勇,阿衣古麗·麥麥提,海熱姑麗·馬木提,阿依考賽爾·亞力坤,景玉霞

(1新疆生產建設兵團奎屯中醫院,奎屯 833200;2 新疆醫科大學中醫學院,烏魯木齊 830011;3新疆生產建設兵團醫院,烏魯木齊 830002)

高血脂、高血糖、高血壓一直以來都是全世界關注的焦點,而且隨著生活水平提高、工作壓力不斷增加,三高已經越來越年輕化,由此引發的并發癥及其死亡人數也是越來越多。對于高脂血癥目前除了加強鍛煉和控制飲食就是依靠藥物,而可以有效降低血脂水平且不良反應小的藥物還很匱乏。玫瑰花含多酚類、黃酮等多種成分,其含有的黃酮成分具有清除自由基、降血糖、抗病毒和免疫調節、防治血管硬化等多種功效[1-3],有良好的藥用價值,其作用可能與抗氧化作用有關。目前,對于玫瑰黃酮的研究主要集中在玫瑰花中黃酮化合物的提取以及降糖作用的研究[4-6]。據報道,玫瑰花總黃酮(RFE)具有清除氧自由基的能力,并且隨著質量濃度的增加,清除率呈線性關系[7-8]。SOD、MDA、GSH-Px 的聯合測定可以反映機體清除氧自由基的能力,說明機體的抗氧化應激能力[9]。但很少有研究對玫瑰黃酮提取物在高脂血癥模型中的抗氧化作用從SOD、MDA、GSH-Px 角度作進一步研究,本研究制備大鼠高脂血癥模型,觀察玫瑰黃酮提取物對高脂血癥的抗氧化作用,為玫瑰黃酮治療高脂血癥提供一定的理論依據。

1 材料與方法

1.1 動物及分組SPF 級SD 大鼠60 只,體重(200±20)g,購自新疆醫科大學動物實驗中心,動物許可證號:SYXK(新)2018-0003。所有SD 大鼠均在新疆醫科大學動物實驗中心按照國際AAALAC 標準統一管理,動物實驗經過新疆醫科大學第一附屬醫院實驗動物與使用管理委員會審核。SD 大鼠經適應性飼養1w,根據隨機數字表將60 只大鼠隨機分為6 組:對照組、模型組、陽性藥物組及玫瑰黃酮提取物低劑量組(RFE-L 組, 6 mg/kg)、中劑量組(RFE-M, 12 mg/kg)、高劑量組(RFE-H組, 24 mg/kg),每組10只。

1.2 試劑及儀器高脂飼料(83% 基礎飼料、10% 豬油、6% 白砂糖、1% 膽固醇);95% 的玫瑰黃酮提取物(贛州華漢生物科技有限公司,90106-38-0);甘油三酯試劑盒(深圳庫貝爾,190401);膽固醇試劑盒(深圳庫貝爾,190501);高密度脂蛋白試劑盒(深圳庫貝爾,190501);低密度脂蛋白試劑盒(深圳庫貝爾,190601)蘇木素染料、伊紅染料(北京索萊寶科技有限公司);病理染色常規試劑;SOD 試劑盒(E-30266,上海恒遠生物科技有限公司);MDA 試劑盒(E-30265,上海恒遠生物科技有限公司);GSH-Px 試劑盒(E-31036,上海恒遠生物科技有限公司);石蠟切片機(德國Leica);圖像采集系統(德國Leica);恒溫培養箱(上海精宏);酶標儀(Thermo 公司);生化儀(深圳庫貝爾,iMagic-V7)。

1.3 動物模型制作對照組大鼠普通飼料喂養,其余各組均給予高脂飼料喂養,自由采食飲水,制作高脂血癥動物模型。喂養8 w 后,對照組繼續給予普通飼料喂養,其余組均以高脂飼料喂養,同時給予藥物干預:對照組普通飼料喂養,其余各組仍然高脂飼料喂養;陽性藥物組給予4 mg/kg體質量辛伐他汀灌胃,95% 的玫瑰黃酮提取物按RFE-L 組(RFE-L 組, 6 mg/kg)、中劑量組(RFE-M 組, 12 mg/kg)、高劑量組(RFEH 組, 24 mg/kg)灌胃,模型組和對照組給予同等體積生理鹽水灌胃,每日1次,連續1個月。

1.4 血脂水平測定藥物干預結束后,處死各組大鼠,取全血,全血靜置約1 h,3000 r/min,離心5 min,吸取血清用生化儀檢測TG、TC、HDL、LDL。

1.5 肝臟病理HE 染色藥物干預結束后,處死大鼠,取肝臟,固定于4 %福爾馬林中,48 h 后,固定好的肝臟經修整,脫水,包埋,切片,進行HE染色。

1.6 檢測SOD、MDA、GSH-Px 的表達水平藥物干預結束后,處死各組大鼠,取全血,全血靜置約1 h,3000 r/min,離心5 min,吸取血清用于試劑盒檢測。采用酶聯免疫吸附(ELISA)法檢測血清SOD、MDA、GSH-Px中水平,方法嚴格按說明書操作進行。

1.7 統計學分析采用SPSS 23.0 統計學軟件進行數據分析。計量資料以均數±標準(±s)表示,兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 各組大鼠成模率對照組普通飼料喂養,其余各組均給予高脂飼料喂養,到第8周內眥靜脈取血用于檢測血脂水平,除去12只大鼠血脂升高不明顯,其余各組和對照組比較TC、TG、HDL-C、LDL-C差異均有統計學意義(P<0.01),見表1,各組經血脂水平測定后,篩選出成模動物,經測算平均成模率達到約76%,詳見表2。

表1 高脂血癥模型大鼠血脂表達水平(±s,mmol /L)

表1 高脂血癥模型大鼠血脂表達水平(±s,mmol /L)

注:與對照組比較,*P<0.05

組別對照組模型組tP只數10 38 TC 1.47±0.62 4.43±0.73*-11.739<0.01 TG 0.54±0.16 0.99±0.21*-4.894<0.01 HDL-C 0.89±0.13 0.54±0.17*5.811<0.01 LDL-C 0.45±0.11 0.98±0.21*-7.049<0.01

表2 各組動物制成高脂血癥模型成模率

2.2 各組大鼠不同組藥物干預后肝臟的病理改變對照組大鼠肝組織無病理改變,有正常的肝小葉結構,肝索排列整齊,肝細胞呈放射狀圍繞中央靜脈排列,細胞大小正常。模型組大鼠肝組織中肝小葉結構被破壞,顯微鏡下可見大量的脂肪空泡,肝細胞排列不規則;陽性對照組中肝小葉結構正常,高倍鏡下仍可見少量脂肪空泡,肝索排列整齊;玫瑰黃酮提取物RFE-L 組可見肝小葉結構被破壞,肝細胞有大量的脂肪空泡,肝細胞排列不規則;玫瑰黃酮提取物中劑量組可見肝小葉結構已經有所恢復,部分視野可見完整的肝小葉結構,肝索排列整齊,但是仍可見較多肝細胞變性,整個視野有較多脂肪空泡;玫瑰黃酮提取物高劑量組可見肝小葉結構已經恢復較好,肝索排列整齊,肝細胞少見脂肪變性,細胞大小形態正常。各組大鼠肝組織病理改變見圖1。

2.3 各組大鼠經藥物干預后血脂水平的改變與對照組比較,模型組TC、TG、LDL-C 顯著升高,HDL-C顯著降低,差異有統計學意義(P<0.01)。與模型組比較,陽性藥物組、RFE-L、RFE-M、RFE-H 中大鼠血清中TC、TG、LDL-C 水平降低,HDL-C 水平升高,差異有統計學意義(P<0.05)。與陽性藥物組比較,RFEL、RFE-M 組TC 差異均有統計學意義(P<0.05),與RFE-H 組差異無統計學意義(P>0.05);與RFE-L 組TG 比較,RFE-M、RFE-H 組差異均無統計學意義(P>0.05);與RFE-H 組LDL-C 比較,與RFE-L、RFEM組差異無統計學意義(P>0.05),見表3。

表3 玫瑰黃銅提取物對高血脂大鼠血清中血脂水平的影響(±s,mmol /L)

表3 玫瑰黃銅提取物對高血脂大鼠血清中血脂水平的影響(±s,mmol /L)

注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與陽性藥物組比較,△P<0.05

組別對照組模型組陽性藥物組RFE-L組RFE-M組RFE-H組FP動物數/只10 8 7 8 8 7 TC 1.846±0.57#△5.40±0.93*△3.22±0.805#4.68±0.68△4.29±0.77#△2.75±0.56#28.643<0.01 TG 0.54±0.13#1.18±0.25*△0.52±0.11#0.83±0.14*#△0.62±0.13#0.51±0.12#23.244<0.01 HDL-C 0.72±0.14#0.39±0.13*0.48±0.11#0.53±0.10#0.57±0.13#0.52±0.12#7.208<0.05 LDL-C 0.51±0.15#△1.17±0.33*#△0.82±0.16*#0.98±0.18*#0.72±0.14*#0.48±0.10#△15.833<0.01

2.4 各組大鼠的SOD、MDA、GSH-Px 改變不同組SOD、MDA、GSH-Px 的改變不同,差異均有統計學意義(P<0.01)。進一步采用L-SD 法進行兩兩比較,SOD 結果表明:與對照組比較,陽性藥物、RFE-M、RFE-H 組差異均有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,陽性藥物、RFE-M、RFE-H 組差異均有統計學意義(P<0.05);與RFE-L 比較,RFE-M、RFE-H 組差異有統計學意義(P<0.05);隨著玫瑰黃酮提取物藥物濃度增加,SOD 水平逐漸升高。MDA 結果表明:與對照組比較,模型、RFE-L、RFE-M 組差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,其余組差異均有統計學意義(P<0.05);陽性藥物組和RFE-H 組差異無統計學意義(P>0.05);隨著玫瑰黃酮提取物藥物濃度增加,MDA 水平逐漸降低。GSH-Px 結果表明:與對照組比較,其余各組差異均有統計學意義(P<0.05);與模型組比較,陽性藥物、RFE-M、RFE-H 組差異有統計學意義(P<0.05);與RFE-L 組比較,RFE-M、RFEH組差異均有統計學意義(P<0.05)。見表4。

表4 各組動物SOD、MDA、GSH-Px表達水平比較(±s)

表4 各組動物SOD、MDA、GSH-Px表達水平比較(±s)

注:與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與陽性藥物組比較,△P<0.05;與RFE-L組比較,▼P<0.05

組別對照組模型組陽性藥物組RFE-L組RFE-M組RFE-H組FP SOD/(pg/mL)3.89±0.91△3.24±0.61△6.70±1.5*#4.06±0.49△5.68±0.78*#△▼6.34±1.07*#▼22.196 0.001 MDA/(nmol/L)0.21±0.08#0.99±0.30*△0.16±0.09#0.79±0.17*#△0.53±0.09*#△▼0.16±0.10#▼49.143 0.001 GSH/(pmol/mL)10.47±2.00#△4.09±1.53*△7.96±1.54*#5.33±1.51*△6.89±1.19*#▼8.65±1.92*#▼19.713 0.001

3 討論

隨著人們生活水平不斷提高,攝入越來越多的高脂高糖飲食,高脂血癥、糖尿病、冠心病的發病率年輕化。盡管臨床已經有成熟應用于臨床的降脂降糖藥物,但是這些藥物在發揮作用時,有不同程度的肝腎功能損傷。因此亟需尋找既能發揮降低血脂水平又能降低血糖水平的藥物。據報道,玫瑰花中含有的黃酮成份具有降血脂、降糖、抗菌、抗炎和鎮痛等生物活性作用[10-13]。因此本實驗主要對玫瑰黃酮提取物對高脂血癥大鼠的降脂作用及其抗氧化作用展開研究。據文獻報道,黃酮類化合物有降低血脂的作用[14-15]。篩選出的符合高脂血癥要求的模型動物,經不同濃度藥物連續灌胃一個月后取得樣本,結果顯示玫瑰黃酮提取物低、中、高組大鼠血清中TC、TG、LDL-C 水平降低,HDL-C 水平升高,且玫瑰黃銅提取物RFE-H 組降脂作用最好,說明玫瑰黃銅提取物低、中、高劑量組均有不同程度降低血脂的功能,且降脂作用與給藥濃度成正比,呈劑量依賴關系[16]。

本實驗中高脂血癥模型組的病理改變與文獻[17]報道一致,對照組大鼠肝組織無病理改變,而模型組大鼠肝組織中肝小葉結構被破壞,顯微鏡下可見大量的脂肪空泡,這是高脂血癥動物模型最主要的病理特征。經藥物干預后的動物模型病理改變明顯好轉,而且隨著給藥濃度的增加,脂肪空泡越來越少,并且肝細胞逐漸恢復正常形態和大小,肝小葉結構也逐漸恢復,以玫瑰黃酮提取物RFE-H組HE染色與對照組及陽性藥物組比較,差異最小,說明玫瑰黃酮提取物RFE-H 組有利于修復高脂飼料造成動物的肝細胞損傷。

玫瑰花總黃酮具有清除自由基,抑制產生活性氧,從而減少氧化應激[18]。SOD、MDA 和GSH-Px 聯合測定,可以反映機體清除氧自由基的能力,說明機體的抗氧化應激能力[19]。SOD 是抗氧化體系中最關鍵的酶,能夠清除氧自由基,保護細胞[20],成模動物經過玫瑰黃酮提取物灌胃治療后,隨著干預藥物濃度的增加,SOD 水平不斷增加,說明玫瑰黃酮提取物在一定程度上發揮了抗氧化作用,且隨著藥物濃度的增加,其作用逐漸增強。MDA 產生的量與氧自由基的量可反映機體內脂質過氧化的程度,間接反映出細胞損傷的程度[21-22]。本研究中MDA 在模型組中表達最高,說明模型組中的肝細胞損傷最為嚴重,這與病理結果一致,隨著玫瑰黃酮提取物藥物濃度的增加,MDA 水平逐漸降低,說明玫瑰黃酮提取物的藥物劑量與MDA 表達呈反向趨勢,模型損傷程度與MDA呈正向趨勢。GSH-Px 是體內重要的催化過氧化氫分解的酶,將其還原成無害的羥基化合物和水,可以起到保護細胞膜及細胞功能的作用,與SOD 的作用趨勢一致[23]。GSH-Px在本實驗中,與模型組相比,隨著干預藥物濃度的增加GSH-Px 水平不斷增加,說明玫瑰黃酮提取物可能分解了氧自由基,增強了機體抗氧化作用,且隨著藥物濃度的增加,其作用逐漸增強。本研究顯示,玫瑰黃酮提取物RFE-H 組的SOD和GSH-Px 明顯高于模型組,而MDA 遠低于模型組,表明RFE-H 組可能是清除了機體內氧自由基,使機體脂質過氧化程度顯著降低,增強了機體的抗氧化作用,說明高劑量的玫瑰黃酮提取物的降血脂作用可能與機體的抗氧化酶活性有關。

綜上,玫瑰黃酮提取物的降血脂作用可能與機體的抗氧化酶活性有關,且與玫瑰黃酮提取物呈劑量依賴性。

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