李小萌,喬潛林
膠質瘤是神經系統最常見的惡性腫瘤,約占腦 腫瘤的40%~60%[1]。膠質瘤細胞增殖較快、侵襲性較強,雖然神經腫瘤學已取得了長足的進展,但膠質瘤病人預后較差、死亡率仍然居高不下[2-3]。深入探索膠質瘤發生分子機制,尋找可靠診斷和治療靶點是當前亟待解決的重要問題。長鏈非編碼RNA(lncRNAs)是蛋白編碼功能缺失但長度超過200個核苷酸的RNA,隨著對lncRNAs和腫瘤相關性研究的不斷深入,lncRNA在腫瘤發生發展中的作用被不斷揭示[4]。近年來研究顯示,在非小細胞肺癌中腫瘤蛋白53靶基因1(tumor protein 53 target gene 1,TP53TG1)表達下調,過表達TP53TG1可增強非小細胞肺癌細胞順鉑敏感性、促進細胞凋亡[5];在胰腺癌中,TP53TG1表達上調,下調TP53TG1抑制胰腺癌細胞的增殖、遷移和侵襲,誘導細胞凋亡[6]。在人神經膠質瘤細胞中,TP53TG1表達下調[7],但TP53TG1對膠質瘤生物行為的影響及其機制尚未完全闡明。因此,本研究從2019年1—6月開展體外實驗,通過觀察TP53TG1對膠質瘤細胞惡性行為的影響,初步探索其分子機制,以期為基于TP53TG1防治膠質瘤提供理論依據。
1.1 實驗材料人正常神經膠質細胞HA和神經膠質瘤細胞U251購于上海斯信生物科技有限公司;LipofectamineTM2000轉染試劑購于Invitrogen公司;雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒購于Promega公司;MTT細胞增殖檢測試劑盒、Annexin V-FITC∕PI試劑盒、TRIzol購于北京索萊寶生物科技有限公司;Western blotting相關試劑購于生工生物工程有限公司;pcDNA3.1、pcDNA3.1-TP53TG1、TP53TG1的小干擾RNA(si-TP53TG1)、TP53TG1野生型熒光素酶報告質粒(WT-TP53TG1)、miRNA模擬物陰性對照(miR-NC)、miR-33a模 擬 物(mimics)、si-NC和TP53TG1突變型熒光素酶報告質粒(MUTTP53TG1)的構建和測序以及PCR引物均由上海英駿生物公司提供;兔源細胞周期蛋白D1(CyclinD1)抗體、兔源細胞周期蛋白激酶抑制劑(P21)抗體、兔源B細胞淋巴瘤(Bcl-2)抗體、兔源Bcl相關x蛋白(Bax)多抗體、兔源基質金屬蛋白酶(MMP-2)抗體、辣根過氧化物酶(HRP)羊抗鼠及羊抗兔抗體購于Abcam公司;鼠源E鈣黏蛋白(E-cadherin)抗體購于Santa Cruz公司;Transwell小室和Matrigel基質膠購于Corning公司。
1.2 細胞培養、轉染和實驗分組HA和U251細胞均采用DMEM培養基(胎牛血清含量為10%)在37℃、含5%二氧化碳、培養箱孵育。將對數期U251細 胞 以2×105個∕孔 接 種6孔 板,利 用LipofectamineTM2000將pcDNA3.1、pcDNA3.1-TP53TG1分別轉染至匯合度為60%的U251細胞,依次標記為pcDNA3.1組、pcDNA3.1-TP53TG1組,培養24~72 h后,進行后續實驗分析。
為驗證TP53TG1是通過調控miR-33a表達進而影響膠質瘤細胞生物學行為,把miR-33a mimics分別與pcDNA3.1或pcDNA3.1-TP53TG1共轉染至U251細胞,依次標記為pcDNA3.1-TP53TG1+miRNC組和pcDNA3.1-TP53TG1+miR-33a組,檢測U251細胞的增殖、遷移侵襲以及凋亡情況。
1.3 qRT-PCR檢測用TRIzol試劑分離總RNA。首先合成cDNA模板,再按照說明書進行qPCR擴增。采用2-ΔΔCt法計算TP53TG1相對表達量(GAPDH為內參)。
1.4 雙熒光素酶報告基因檢測利用生物信息學軟件在線預測TP53TG1靶基因發現,TP53TG1與miR-33a存在連續結合位點。構建野生型WT-TP53TG1和突變型MUT-TP53TG1熒光素酶報告載體,將miR-33a mimics和miR-NC分別與WT-TP53TG1或MUT-TP53TG1同時轉染至U251細胞,測定培養48 h后各組細胞的熒光素酶活性。
1.5 MTT法檢測細胞活力取對數期U251細胞按照2×103個∕孔接種于96孔板,按照1.2進行相應處理后,每培養24 h取出一組平板,每孔加入MTT試劑20 μL,孵育4 h后,棄去上清液,每孔加入150 μL DMSO,再孵育2 h溶解結晶,酶標儀測定490 nm處各孔的OD值。
1.6 Transwell法檢測細胞遷移和侵襲能力侵襲實驗:經胰酶消化轉染48 h的細胞,用不含血清的DMEM培養基重懸,調整細胞濃度約為1×106∕mL。向包被Matrigel基質膠的Transwell上室、24孔板下室分別加入200 μL細胞懸液、500 μL完全培養基,培養24 h,用甲醇固定Transwell膜下表面30 min,0.5%結晶紫溶液染色10 min。自來水沖洗去除多余染液,在倒置顯微鏡下隨機選取5個視野拍照、計數,取均值表示細胞侵襲數。遷移實驗時不用Matrigel基質膠包被Transwell小室,其余步驟同上。
1.7 流式細胞術檢測細胞凋亡加入適量的1×Binding Buffer懸浮轉染48 h細胞使其濃度達到1×106個∕mL。向流式管內加入100 μL懸液,然后依次加入5 μL Annexin V-FITC、5 μL的PI,室溫避光孵育15 min,加入PBS液至500 μL,混合均勻后于1 h之內用流式細胞儀評估細胞凋亡。
1.8 Western blotting檢測RIPA裂解法提取總蛋白,取適量蛋白煮沸3 min使其變性。每組用30 μg蛋白進行SDS-PAGE,濕法將蛋白轉移至PVDF膜。Western封閉液阻斷膜,洗膜后,分別加入已稀釋的抗Cyclin D1(1∶500)、P21(1∶1 000)、Bcl-2(1∶1 000)、Bax(1∶500)、MMP-2(1∶500)、E-cadherin(1∶500)和GAPDH(1∶2 500)的Ⅰ抗4℃孵育過夜。再次洗膜后,加入Ⅱ抗稀釋液室溫孵育1 h,化學發光顯色后拍照,成像掃描分析系統測定目的條帶相對于GAPDH的灰度值。
1.9 統計學方法用SPSS 20.0進行統計分析,本研究中所有計量資料均采用±s表示,兩組間比較時采用t檢驗,多組間比較時采用單因素方差分析,進一步組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05表示差異有統計學意義。
2.1 細胞HA和U251中TP53TG1的表達情況與人正常神經膠質細胞HA相比,神經膠質瘤細胞U251中TP53TG1的表達顯著降低,(1.03±0.10)比(0.28±0.03),差異有統計學意義(t=21.551,P<0.001)。
2.2 過表達TP53TG1對細胞U251增殖、凋亡的影響與pcDNA3.1組比較,pcDNA3.1-TP53TG1組TP53TG1的表達顯著升高,P21和Bax蛋白的表達顯著升高,Cyclin D1和Bcl-2蛋白的表達顯著降低,細胞活力顯著降低,凋亡率顯著升高(P<0.001)。表明,過表達TP53TG1可抑制U251細胞增殖,促進細胞凋亡。見圖1,表1。

圖1 過表達腫瘤蛋白53靶基因1(TP53TG1)對細胞U251增殖、凋亡的影響
表1 過表達TP53TG1對細胞U251增殖的影響∕±s

表1 過表達TP53TG1對細胞U251增殖的影響∕±s
注:TP53TG1為腫瘤蛋白53靶基因1,pcDNA3.1為空載體質粒,pcDNA3.1-TP53TG1為TP53TG1的過表達質粒。
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2.3 過表達TP53TG1對細胞U251遷移、侵襲的影響與pcDNA3.1組比較,pcDNA3.1-TP53TG1組U251細胞遷移和侵襲數減少[(138±14.01)個 比(72±7.26個)、(126±12.54)個 比(65±6.63)個,t=12.548、12.901,均P<0.001],MMP-2蛋白水平降低[(0.63±0.06)比(0.21±0.02),t=19.922,P<0.001],Ecadherin蛋白水平升高[(0.33±0.03)比(1.02±0.10),t=19.827,P<0.001],過表達TP53TG1可抑制U251細胞遷移和侵襲。見圖2。

圖2 過表達TP53TG1對細胞U251 E-cadherin、MMP-2蛋白表達的影響
2.4 TP53TG1靶向調控miR-33a表達生物信息學軟件在線預測到TP53TG1和miR-33a存在結合位點,見圖3。與miR-NC、WT-TP53TG1共轉染組相比,miR-33a、WT-TP53TG1共轉染組U251細胞的熒光素酶活性顯著降低[(1.04±0.10)比(0.32±0.03),t=20.689,P<0.001];與miR-NC、MUT-TP53TG1共轉染組相比,miR-33a、MUT-TP53TG1共轉染組U251細胞的熒光素酶活性無顯著變化[(1.02±0.10)比(1.06±0.10),t=0.849,P=0.409]。與pcDNA3.1組比較,pcDNA3.1-TP53TG1組U251細 胞miR-33a的 表達水平顯著降低,(1.03±0.10)比(0.43±0.04),t=16.713,P<0.05;與si-NC組 比 較,si-TP53TG1組U251細胞miR-33a的表達水平顯著升高,(1.04±0.10)比(1.76±0.18),t=10.490,P<0.001。以上結果表明,TP53TG1靶向負調控miR-33a表達。

圖3 腫瘤蛋白53靶基因1(TP53TG1)靶向miR-33a
2.5 過表達miR-33a能逆轉TP53TG1對細胞U251增殖、凋亡、遷移、侵襲的影響與pcDNA3.1組比較,pcDNA3.1-TP53TG1組U251細胞活力、miR-33a表達以及Cyclin D1、Bcl-2和MMP-2蛋白水平降低,凋亡率以及P21、Bax和E-cadherin蛋白水平升高,遷移數和侵襲數減少;與pcDNA3.1-TP53TG1+miR-NC組 比 較,pcDNA3.1-TP53TG1+miR-33a組U251細胞細胞活力、miR-33a表達以及Cyclin D1、Bcl-2和MMP-2蛋白水平升高,凋亡率以及P21、Bax和E-cadherin蛋白水平降低,遷移數和侵襲數增多(P<0.001)。以上結果表明,過表達miR-33a能夠逆轉TP53TG1對細胞U251增殖、凋亡、遷移、侵襲的影響。見圖4,表2。
表2 過表達miR-33a能逆轉腫瘤蛋白53靶基因1(TP53TG1)對細胞U251細胞活性的影響∕±s

表2 過表達miR-33a能逆轉腫瘤蛋白53靶基因1(TP53TG1)對細胞U251細胞活性的影響∕±s
注:①與pcDNA3.1組比較,P<0.05。②與pcDNA3.1-TP53TG1+miR-NC組比較,P<0.05。
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圖4 過表達miR-33a能逆轉TP53TG1對細胞U251凋亡及Cyclin D1、P21、Bax、Bcl-2、E-cadherin、MMP-2蛋白表達的影響:A為過表達miR-33a能逆轉TP53TG1對細胞U251凋亡的影響;B為過表達miR-33aCyclin D1、P21、Bax、Bcl-2、E-cadherin、MMP-2蛋白的表達
膠質瘤是最常見的原發性顱內腫瘤[8]。盡管有手術和放化療等治療手段,膠質瘤的發病率和死亡率仍然很高[1]。闡明膠質瘤的發生發展的分子機制,開發更有效的診治療方法,對改善膠質瘤病人預后,提高生存率具有重大意義。
lncRNA是活躍的生物分子,在許多腫瘤中發揮重要的調控作用。多項研究表明,lncRNA參與調控神經膠質瘤的生長、轉移和耐藥等多種生物學過程的調控[9-11]。TP53TG1是p53誘導的lncRNA,在人類癌癥的進展中起著至關重要的作用。本研究探索了TP53TG1在膠質瘤進展中的作用,結果顯示膠質瘤細胞中TP53TG1表達下調,這與包雯等[12]的研究結論相吻合,可能與TP53TG1啟動子CpG島高甲基化有關,TP53TG1表達的恢復與結腸直腸癌和胃癌細胞的侵襲和遷移能力降低相關[13]。Cyclin D1是重要的細胞周期蛋白,主要通過促進細胞從G1期進入S期發揮細胞增殖正性調控作用,而P21則發揮相反的作用[14]。Bcl-2家族在細胞凋亡中具有重要作用,促凋亡蛋白Bax和抑凋亡蛋白Bcl-2的比例是細胞凋亡發生的關鍵[15]。E-cadherin是上皮細胞標志物,腫瘤細胞中E-cadherin表達下調,而MMP-2表達上調則通過降解細胞外基質促進腫瘤的侵襲和轉移[16]。本研究發現過表達TP53TG1在抑制膠質瘤細胞增殖、遷移和侵襲誘導凋亡,伴隨著P21、E-cadherin和Bax蛋白水平的增加以及Cyclin D1、MMP-2和Bcl-2蛋白水平的下降。提示TP53TG1在膠質瘤中發揮抑癌基因作用。
近年來,lncRNA通過與miRNA相互作用調控腫瘤發生發展的機制被廣泛報道。為揭示TP53TG1調控膠質瘤發生發展的分子機制,利用生物信息學軟件進行靶基因預測發現,miR-33a是TP53TG1的潛在靶基因。隨后的雙熒光素酶報告基因實驗證實了TP53TG1和miR-33a的靶向關系,并通過Western blotting證實在膠質瘤中miR-33a的表達到受到TP53TG1的負性調控。miR-33a是一種內含子miRNA,位于固醇反應原件結合蛋白基因SREBF2的內含子序列中,在調節膽固醇和脂肪酸代謝中發揮重要作用[17]。研究顯示,miR-33a在膠質瘤組織和細胞中表達上調,高表達miR-33a的膠質瘤病人腫瘤體積較大、生存率較低,敲除miR-33a可抑制膠質瘤的生長[18]。此外,miR-33a高表達還可促進膠質瘤細胞的自我更新[19-20]。于是,本研究推測TP53TG1通過負性調控miR-33a表達抑制膠質瘤的發生發展。為證實TP53TG1的抗膠質瘤作用依賴于miR-33a表達下調,本研究將pcDNA3.1-TP53TG1和miR-33a mimics共轉染膠質瘤細胞進行恢復實驗,結果顯示過表達miR-33a可顯著逆轉TP53TG1對膠質瘤細胞活力、遷移數、侵襲數、凋亡率以及對應蛋白水平的影響。
綜上所述,TP53TG1在膠質瘤細胞中表達下調,上調TP53TG1通過靶向miR-33a抑制膠質瘤細胞增殖、遷移和侵襲,促進細胞凋亡,TP53TG1有望成為膠質瘤的潛在診療靶點。