不同氮素形態配比對三七根腐病的影響

李晴晴 霍瑩瑩 楊 靜 李甜甜 徐福榮 董 鮮

(云南中醫藥大學中藥學院，云南 昆明 650500)

當植物遭遇病原菌侵襲時，活性氧(reactive oxygen species, ROS)累積，以及防御系統啟動，防御系統包括酶促系統和非酶促系統[6]。非酶促系統主要通過合成一些次生代謝產物，如酚類、木質素、植保素等來抵抗病原菌[7]。酶系統中，起重要作用的有超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)、過氧化物酶(peroxidase, POD)、多酚氧化酶(polyphenol oxidase, PPO)和苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia lyase, PAL)，上述酶類參與ROS的清除，以及酚類、木質素和植保素等抗病相關物質的合成[8]，能有效抵御ROS對細胞膜系統的傷害，增強植物對病原菌的抵抗能力。

研究表明不同氮素形態對植物防御系統的影響有差異[6,9-10]，對植物的生長也有不同的影響。適宜的銨硝配比能夠增加植物的抗病性，促進植物生長，增加生物量以及次級代謝產物的累積[11-13]。

目前三七種植過程中根腐病發生嚴重，而氮肥施用對三七根腐病影響的相關研究較少。因此，本試驗就不同氮素形態配比及病原菌侵染對三七產量、有效成分以及抗性指標的影響展開研究，以期探索出科學的氮肥運籌模式，為三七根腐病的防控提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

三七：健康一年生三七子條由文山景源農業發展有限公司提供。

菌株：尖孢鐮刀菌(Fusariumoxysporum)，云南中醫藥大學云南省道地瀕危中藥材繁育與栽培工程技術研究中心保存菌株。

試劑：三七皂苷R1、人參皂苷Rg1、人參皂苷Rb1和人參皂苷Rd(對照品，純度均為HPLC≥98%)，購于北京索萊寶科技有限公司；甲醇、乙腈(均為色譜純)，購于德國Meker公司；植物可溶性糖含量檢測試劑盒、植物類黃酮含量檢測試劑盒、SOD試劑盒、POD試劑盒、PPO試劑盒和PAL試劑盒、植物總酚(total phenols, TP)含量檢測試劑盒、木質素含量檢測試劑盒和過氧化氫(H2O2)含量檢測試劑盒，購于北京索萊寶科技有限公司。

1.2 培養基

馬鈴薯葡萄糖培養基(potato dextrose agar，PDA)：去皮馬鈴薯20 g，葡萄糖 20 g，瓊脂 20 g，蒸餾水定容至1 000 mL。

Bilay’s培養基：磷酸二氫鉀1 g，氯化鉀0.5 g，硝酸鉀1 g，七水硫酸鎂0.5 g，葡萄糖0.2 g，蔗糖0.2 g，淀粉0.2 g，蒸餾水定容至1 000 mL。

1.3 試驗設計

1.3.3 孢子懸浮液的制備以及病原菌的侵染 用無菌水將PDA培養基上的尖孢鐮刀菌沖洗下來，經過濾用無紡布Miracloth(Millipore)濾掉菌絲，在顯微鏡下用血球計數板調成所需濃度的孢子懸浮液(1 × 107個·mL-1)， 備用。不同氮素形態配比營養液處理三七兩周后，7月5日三七接種尖孢鐮刀菌，用注射器將制備好的孢子懸浮液注入三七根部的基質中，每株注射4 mL，未接菌組注入等量無菌水。此時總氮含量為2 mmol·L-1， 試驗共10個處理，即：

1.4 測定項目與方法

1.4.1 尖孢鐮刀菌菌落直徑和孢子濃度的測定 在PDA培養基中分別加入總氮含量為2 mmol·L-1的5種不同氮素形態配比溶液。接種后連續7 d采用十字交叉法測量菌落直徑，每個處理5個重復。

在Bilay’s培養基中分別加入總氮含量2 mmol·L-1的5種不同氮素形態配比溶液。滅菌后加入等量的尖孢鐮刀菌孢子懸浮液，放于搖床上，180 r·min-1、28℃恒溫震蕩培養7 d，采用血球計數板統計孢子數量，每個處理4個重復。

1.4.2 葉綠素含量的測定和病情指數的統計 氮素處理54 d后，植株采集前使用SPAD-502葉綠素含量測定儀(Konica Minoita, 日本)測定各處理兩年生三七的葉綠素含量并統計病情指數，每個處理4個重復，根據三七病害的發展將發病程度分為0～4個等級：

0級：三七植株生長健康；

1級：三七葉端出現病斑；

2級：植株出現枯黃葉片<50%；

3級：植株出現枯黃葉片>50%；

4級：植株死亡。

按照公式計算病情指數(disease index，Di)：

Di=∑[(Dn×Dg)/(Tn×Mg)]×100

(1)

式中，Dn表示同一病情等級的植株數目，Dg表示相應的病情等級，Tn表示總植株數目，Mg表示最高病情等級。

1.4.3 生物量的測定 氮素處理54 d后進行植株的采集，帶回實驗室，洗凈、擦干水分后將其分為地上部分和地下部分，稱重。一部分經液氮冷凍后放于-80℃ 冰箱，備用。另一部分置于40℃烘箱中烘干，稱定干重，銅銃粉碎，過65目篩，放于干燥器中，備用，每個處理4個重復。

1.4.4 皂苷含量的測定

1.4.4.1 對照品溶液的制備 分別精密稱定三七皂苷R1、人參皂苷Rg1、Rb1和Rd四個對照品，甲醇定容至10 mL，配制成以上單體皂苷濃度分別為0.968、1.824、1.758和1.049 mg·mL-1的混合對照品溶液，之后將其逐級稀釋，共8個濃度。

1.4.4.2 供試品溶液的制備 精密稱定三七地下部分粉末0.1 g，置于試管中，精密加入3 mL甲醇，封口，常溫超聲提取1h(40 kHz，300 W)，3 000 r·min-1離心10 min，取上清液過0.22 μm微孔濾膜，所得續濾液即為供試品溶液。

1.4.4.3 色譜條件 色譜柱為Agilent Zorbax Eclipse Plus C18(4.6 mm × 250 mm，5 μm)，色譜條件參考《中華人民共和國藥典》[1]。流動相為乙腈(A)-水(B)，洗脫程序：0 min，19% A；12 min，19% A；60 min，36% A；77 min，36% A，之后回到初始濃度，保持10 min。流速為0.6 mL·min-1，進樣量為10 μL，柱溫為30℃，檢測波長為203 nm。

1.4.5 可溶性糖和黃酮含量的測定 取保存于-80℃ 冰箱內的三七地下部分鮮樣，液氮研磨后使用植物可溶性糖含量檢測試劑盒進行測定。取三七地下部分粉樣，使用植物類黃酮含量檢測試劑盒進行測定，每個處理4個重復。

1.4.6 三七防御酶活性的測定 取三七地上部分鮮樣，液氮研磨后使用SOD、POD、PPO和PAL活性檢測試劑盒進行測定，每個處理5個重復。

1.4.7 酚類和木質素含量的測定 取三七地上部分粉樣，分別使用TP含量檢測試劑盒和木質素含量檢測試劑盒進行測定，每個處理4個重復。

1.4.8 H2O2含量的測定 取三七地上部分鮮樣，液氮研磨后，使用H2O2含量檢測試劑盒進行測定，每個處理4個重復。

1.5 數據處理

利用SPSS Statistic 19.00軟件對數據進行處理和分析，使用Origin 2018進行繪圖。

2 結果與分析

2.1 不同氮素形態配比對尖孢鐮刀菌生長的影響

注：A：培養第7天菌落生長情況；B：培養7天菌落生長曲線。下同。Note: A: Colony growth on the seventh day of culture. B: Colony growth curve within seven days. A: N: The same as following.圖1 不同氮素形態配比對尖孢鐮刀菌生長的影響Fig.1 Effect of different nitrogen forms on the growth of F. oxysporum

表1 不同氮素形態配比對尖孢鐮刀菌第7天菌落直徑和孢子數量的影響Table 1 Effect of different nitrogen forms on colony diameter and spore content of F. oxysporum on the seventh day

2.2 不同氮素形態配比及病原菌侵染對三七生長的影響

圖2 不同氮素形態配比及病原菌侵染對三七生長的影響Fig.2 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the growth of P. notogensing

表2 不同氮素形態配比及病原菌侵染對兩年生三七生長的影響Table 2 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the growth of two-years P. notogensing

2.3 不同氮素形態配比及病原菌侵染對三七中皂苷含量的影響

注：1：三七皂苷R1； 2：人參皂苷Rg1；3：人參皂苷Rb1；4：人參皂苷Rd。Note: 1: Notoginsenoside R1. 2: Ginsenoside Rg1. 3: Ginsenoside Rb1. 4: Ginsenoside Rd.圖3 皂苷對照品(A)和三七樣品(B)HPLC色譜圖Fig.3 HPLC chromatogram of saponins reference substance (A) and P. notoginseng (B)

表3 不同氮素形態配比以及病原菌侵染對兩年生三七皂苷含量的影響Table 3 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the content of saponins /(mg·g-1)

2.4 不同氮素形態配比及病原菌侵染對三七可溶性糖和黃酮含量的影響

注：不同字母表示不同處理間差異達顯著水平(P<0.05)。下同。Note: Different letters indicate significant difference at 0.05 level. The same as following.圖4 不同氮素形態配比以及病原菌侵染對兩年生三七可溶性糖(A)和黃酮(B)含量的影響Fig.4 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the contents of soluble sugar(A)and flavonoids(B)

2.5 不同氮素形態配比及病原菌侵染對防御酶的影響

圖5 不同氮素形態配比對兩年生三七抗病防御酶活性的影響Fig.5 Effects of different nitrogen forms and pathogen infection on the activity of anti-disease defensive enzymes

2.6 不同氮素形態配比及病原菌侵染對酚類和木質素含量的影響

未接菌組酚類及木質素平均含量分別為3.70 mg·g-1和188.74 mg·g-1，不同氮素配比處理含量無顯著性差異(圖6-A、B)。病原菌侵染使兩者含量均增加，此時酚類和木質素平均含量分別為3.95 mg·g-1和217.00 mg·g-1，當銨硝配比為25∶75時，二者升高幅度均達到最大。

圖6 不同氮素形態配比及病原菌侵染對酚類和可溶性糖含量的影響Fig.6 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the contents of phenols and lignin

2.7 不同氮素形態配比及病原菌侵染對H2O2含量的影響

未接菌組H2O2平均含量為7.12 μmoL·g-1，接菌組平均含量為7.13 μmoL·g-1。不同氮素形態配比間H2O2含量無差異，病原菌侵染對H2O2含量無明顯影響(圖7)。

圖7 不同氮素形態配比及病原菌侵染對對H2O2含量的影響Fig.7 Effect of different nitrogen forms and pathogen infection on the content of H2O2

3 討論

4 結論