張盛清,蔡金宏,黃蘭麗,高 明△,趙勁民,4,5△
(1.廣西組織器官修復醫用生物材料工程技術研究中心;2.廣西醫科大學再生醫學與醫用生物資源開發應用協同創新中心;3.廣西醫科大學藥學院;4.廣西再生醫學重點實驗室;5.廣西醫科大學第一附屬醫院創傷骨科手外科,南寧 530021)
骨關節炎(osteoarthritis,OA)是一種以疼痛、軟骨缺損和關節炎癥為特征的慢性疾病,目前臨床上的治療方式十分有限[1]。目前有一種觀點認為,活性氧(reactive oxygen species,ROS)作為一種參與細胞內信號傳導的重要物質[2-4],在調節軟骨細胞衰老、凋亡、細胞外基質合成和降解的同時,也在骨關節炎的進展中產生了重要的影響[5]。當ROS濃度超過了機體的抗氧化能力時,將產生大量的氧化中間產物,進而導致軟骨細胞DNA 損傷,干擾和抑制軟骨基質合成并激活基質金屬蛋白酶,造成軟骨細胞死亡加快OA 的進程。所以,清除致損氧化中間產物,減緩氧化應激效應,被認為是治療OA的可行方案。四氧化三錳納米粒子(Mn3O4NPs)是目前倍受眾關注的一種納米酶材料,由于有著Mn2+/Mn3+的混合氧化狀態、高不可逆氧化穩定性、大比表面積等特點,使Mn3O4NPs具有了顯著的多重擬酶活性[6-7]。本研究將通過表面修飾加強Mn3O4NPs的生物相容性,并探討修飾后的Mn3O4NPs 通過清除ROS 對OA的抗炎抗氧化作用。
1.1.1 動物 SD 大鼠(SPF 級),體重(180±2)g,廣西醫科大學實驗動物中心提供,本實驗已通過實驗動物倫理審批,審批編號No.202010023。
1.1.2 試劑 四水合醋酸錳[Mn(CH3COO)2·4H2O](aladdin,上海);水合肼(N2H4)(aladdin,上海);無水乙醇(sinopharm,上海);無水甲醇(sinopharm,上海);聚乙二醇(PEG Mn=3 350)(sigma-aldrich,美國);過氧化氫(H2O2)(JINSHAN,成都);CCK-8 檢測試劑盒(sigma-aldrich,美國);鈣黃綠素(Calcein-AM)(sigma-aldrich,美國);碘化丙啶(PI)(sigma-aldrich,美國);超氧化物歧化酶(SOD)檢測試劑盒(sigma-aldrich,美國);過氧化氫酶(CAT)檢測試劑盒(beyotime,上海);羥自由基(·OH)檢測試劑盒(solarbio,北京);組織細胞RNA 小量提取試劑盒(magen,廣州);胎牛血清(every green,浙江);高糖培養基(gibco,美國)。
1.1.3 儀器與設備 透射電子顯微鏡(TEM)(HITACHI,日本)、X射線衍射儀(XRD)(Rigaku,日本);傅里葉變換紅外光譜儀(FTIR)(SHIMADZU,日本);納米粒度及ZETA 電位分析儀(Malvern,英國);全波長酶標儀(Thermo Fisher Scientific,美國);PCR 儀(Roche,瑞士);熒光成像顯微鏡(OLYMPUS,日本);超純水機(Merck,德國);5810R 低溫高速離心機(Eppendorf,德國);電熱真空干燥箱(博訊實業,上海)。
1.2.1 Mn3O4NPs的合成
在已有文獻[8]的技術上進行改進,在室溫條件下合成了Mn3O4NPs。首先稱取400 mgMn(CH3COO)2·4H2O置于圓底燒瓶內,加入60 mL 超純水充分溶解并保持攪拌。向攪拌的液體中快速加入1 mL N2H4,保持攪拌。反應24 h后將溶液轉移至潔凈的50 mL離心管內,離心10 min 去除上清液,用無水甲醇重復洗滌沉淀3次,重懸沉淀后再次離心,去除上清液后得到深褐色沉淀,將深褐色沉淀65°C真空干燥12 h。干燥所得褐色固體即為Mn3O4NPs。
1.2.2 聚乙二醇修飾的四氧化三錳納米粒子(Mn3O4-PEG NPs)的合成 稱取MPEG=5%MMn的PEG,充分溶解于無水乙醇中并加入充分分散的Mn3O4NPs,保持攪拌。反應24 h 后將溶液轉移至潔凈的50 mL 離心管內,高速離心10 min 去除上清液,用無水甲醇重復洗滌沉淀3次,重懸沉淀后再次離心,去除上清液后得到深褐色沉淀,將沉淀65°C真空干燥12 h。干燥所得褐色固體即為Mn3O4-PEG NPs。
將上述真空干燥所得材料,取少量粉末分別用于TEM、XRD、FTIR和ZETA電位測量。
根據試劑盒說明書,計算好樣品分組及試劑用量,分別配制適量的工作液和樣本溶液。對于擬SOD酶活性測量,根據超氧陰離子氧化WST-8顯色的原理,通過計算不同樣品450 nm 處的吸光值,即可得知不同樣本中的超氧陰離子(·O2-)清除率;對于擬CAT酶活性測量,根據H2O2氧化顯色底物顯色的原理,通過計算不同樣品520 nm 處的吸光值,即可得知不同樣本中的H2O2清除率;對于·OH清除率測量,根據·OH 可與顯色劑反應顯色的原理,通過計算不同樣品536 nm處的吸光值,即可得知不同樣本中的·OH清除率。
軟骨組織取自3~5 日齡SD 乳鼠的關節部分,并用含10%青鏈霉素雙抗的PBS 沖去凝血和雜質。組織塊置于潔凈的培養皿中,先用胰酶在37°C下消化2 h,之后離心去除上清液收集沉淀,收集到的沉淀用Ⅱ型膠原酶重懸,并在37°C 培養箱中消化過夜。次日,差速離心去除消化剝離的纖維后,離心收集游離出的軟骨細胞。將已收集好的軟骨細胞重懸后接種于培養皿中,待細胞貼壁后傳代培養,傳至P2~P3代使用。
CCK-8法:將約8×103個/孔P2~P3代軟骨細胞接種于96 孔板內,培養細胞24 h 后,分別更換用無血清培養基配制的不同濃度的材料溶液。繼續培養細胞24 h后先吸去孔內液體,并用生理鹽水沖洗兩邊去除殘余材料。隨后加入按1∶10 比例配制好的CCK-8 工作液110 μL,繼續孵育1 h。因CCK-8工作液會與孔內活細胞產生橙黃色甲臜物,測量各孔內液體在450 nm 處的吸光值即可得知各實驗組細胞存活量。
細胞活死染色法:將約2×105個/孔P2~P3代軟骨細胞接種于放置有爬片的6 孔板內,培養細胞24 h 后,分別更換用無血清培養基配制的不同濃度的材料溶液。繼續培養細胞24 h 后,先吸去孔內液體,并用生理鹽水沖洗兩邊去除殘余材料。用配制好的Calcein-AM/PI染色工作液浸沒過爬片,避光染色10 min,隨后用生理鹽水沖洗3 次去多余染料。完成爬片染色后,將爬片置于熒光成像顯微鏡下,隨機選取3個視野觀察和拍照記錄。
將約3×105個/孔P2~P3代軟細胞接種于6孔板內。當細胞完全貼壁后,吸除孔內液體,并用生理鹽水沖洗兩邊除去雜質和未貼壁細胞。隨后加入用無血清培養基配制的濃度為200 μmol/L 的H2O2誘導細胞進入氧化應激狀態。待誘導細胞完成后,再加更換有不同材料的無血清培養基,繼續培養細胞 24 h。次日吸除孔內液體,并用生理鹽水沖洗兩邊去除殘余的材料,隨后按照試劑盒說明書提取各實驗組mRNA 樣本,保存于-80°C 冰箱中,以備用于RT-qPCR實驗。RT-qPCR所用引物序列,見表1。

表1 RT-qPCR引物序列
采用SPSS 26.0統計軟件對相關實驗數據進行統計學分析,計量資料以均數±標準差(±s)表示,兩組間均數對比采用t檢驗;多組間均數對比采用One-way anova,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗;以P<0.05為差異有統計學意義。
TEM 顯示,合成的Mn3O4-PEG NPs 呈方臺狀,粒子分散性良好,見圖1。

圖1 Mn3O4-PEG NPs透射電鏡圖
XRD 圖譜顯示,所合成的Mn3O4NPs 主峰未出現較大偏移,在2θ=18.2°、26.3°、29.0°、31.1°、32.5°、36.2°、38.2°、44.6°、50.8°和60.0°處分別出現了與標準Mn3O4卡片(JCPDS24-0734)對應的強衍射峰,由此可認為Mn3O4NPs已成功合成。PEG修飾后所得的Mn3O4-PEG NPs 也含有相同的衍射峰,峰強比和半峰寬沒有出現明顯改變,說明修飾過程對Mn3O4NPs 的微觀結構沒有造成明顯影響,基本保持了Mn3O4NPs原本的結晶度,見圖2A。
FTIR 結果顯示,相比于修飾前,修飾后的Mn3O4-PEG NPs 含有與對照PEG 樣品相同的紅外吸收峰峰,證明PEG已成功修飾到Mn3O4NPs表面,見圖2B。

圖2 XRD和FTIR表征結果
修飾后Mn3O4NPs 表面的ZETA 電位發生了明顯的改變,由-18.27 mV轉變為-8.74 mV,這是由于PEG 的鏈狀分子包覆于Mn3O4NPs 外表,屏蔽了粒子部分表面電荷所致,證明PEG 成功修飾到了Mn3O4NPs的表面,見圖3。

圖3 Mn3O4 NPs和Mn3O4-PEG NPs的ZETA電位測量結果
2.5.1 不同濃度Mn3O4NPs組和Mn3O4-PEG NPs組干預24 h 對軟骨細胞活性的影響 當Mn3O4-PEG NPs濃度約在20 μg/mL以內時,實驗組軟骨細胞活性與空白對照組比較,可以保持在80%以上,對比未經修飾的Mn3O4NPs,在濃度約10 μg/mL 時就已經產生一定毒性,經過修飾的Mn3O4-PEG NPs明顯有著更好的生物相容性,見圖4。

圖4 不同濃度Mn3O4 NPs組和Mn3O4-PEG NPs組干預24 h對軟骨細胞活性的影響
2.5.2 Mn3O4NPs 組和Mn3O4-PEG NPs 組的Calcien-AM/PI 染色和熒光定量分析 當共培養濃度為20 μg/mL時,Mn3O4-PEG NPs對軟骨細胞基本沒有表現出毒性作用,與Mn3O4NPs組比較差異有統計學意義(P<0.01),見圖5。

圖5 Mn3O4 NPs組與Mn3O4-PEG NPs組的Calcien-AM/PI染色和熒光定量分析
伴隨著濃度的升高,Mn3O4-PEG NPs 的擬SOD酶活性也逐漸升高,且與Mn3O4NPs的擬SOD酶活性無顯著區別,見圖6A。在清除H2O2和·OH 兩種活性氧基團時也表現出了較強的活性,且與Mn3O4NPs的清除能力比較差異有統計學意義,見圖6B。證明PEG 修飾在提高Mn3O4-PEG NPs 分散性和生物相容性的同時,未顯著影響Mn3O4NPs的擬酶活性。

圖6 Mn3O4 NPs與Mn3O4-PEG NPs的·O2-、H2O2、·OH清除率對比
按最大生物相容劑量,Mn3O4-PEG NPs對TNFα、IL-1β和IL-6 3種炎癥因子的表達均下調,且結果與H2O2組比較差異具有統計學意義(P<0.01),見圖7。

圖7 Mn3O4-PEG NPs對H2O2誘導的軟骨細胞模型中TNF-α、IL-1β、IL-6表達的影響
目前,國內有著大量的患者長期遭受著OA 的折磨[9],患者在遭受著強烈疼痛的同時,也面臨著極高的致殘風險,這無疑會對患者及其家庭造成沉重的打擊。目前關于OA 的發病機制尚無統一的結論,多數研究認為OA 的發病可能由多種因素綜合引發(如年齡、勞損、內分泌等)。近些年也有研究指出,諸如·O2-、H2O2和·OH等氧化中間產物會導致細胞損傷,引起的細胞內氧化和抗氧化統失衡,是誘發OA 的重要原因之一。因此,控制組織內ROS含量,維持細胞內氧化/抗氧化平衡是治療OA 的一個重要潛在途徑。
盡管生物體內已在自然進化中形成了高效的天然活性氧清除酶,但因其是有機質且對反應環境具有高敏感性(如溫度和pH 穩定性),條件不當時極易失活,難以大量生產、保存和利用。不同于天然酶,人工納米酶有著更好的穩定性,易生產性,且兼具多功能性和可調諧活性,因而目前受到人們廣泛的關注,目前的研究報道中已經發現了不少性能優異的抗ROS納米酶[10-11]。而另一方面,Mn超氧化物歧化酶(SOD)的模擬作用也在藥代動力學研究中被發現,據報道其催化性能是優于Cu/Zn SOD和Fe SOD 的[12]。因此,由于Mn3O4NPs 有著顯著的多重擬酶活性,是目前納米酶研究的熱點之一。在本研究中,所合成的Mn3O4-PEG NPs 電鏡下呈現為大小均勻的方臺狀顆粒,粒徑約為100 nm,分散性良好。XRD、FTIR 和ZETA 電位結果表明,粒子表面成功的修飾有PEG分子,且當濃度在20 μg/mL濃度以下時,Mn3O4-PEG NPs 沒有表現出明顯細胞毒性。綜上所述,Mn3O4-PEG NPs 被成功合成且具有較好的生物相容性。
OA 造成的損傷以軟骨缺損為主,包括·O2-、H2O2和·OH 等氧化中間產物在內的ROS 基團與骨關節疾病的進展呈顯著相關[5]。本研究進一步驗證了Mn3O4-PEG NPs對ROS的催化清除能力,結果顯示,Mn3O4-PEG NPs 在清除·O2-、H2O2和·OH 3 種活性氧基團時均表現出了較高活性,且與Mn3O4NPs的·O2-、H2O2和·OH清除能力相比無統計學差異,證明修飾過程在提高Mn3O4-PEG NPs 分散性和生物相容性的同時,未影響Mn3O4-PEG NPs 發揮其擬酶活性。結果表明,Mn3O4-PEG NPs 具有作為關節腔內清除ROS的納米酶的潛力。
由于ROS是調控炎癥的重要信號分子,ROS的失衡是引起關節炎癥因子表達上調,造成關節軟骨損傷的重要原因之一。而早先的研究中盡管存在一些分歧,但TNF-α、IL-1β 普遍被認為是與關節炎早期發病及關節炎早、晚期病程密切相關的[13]。在本研究中,濃度為20 μg/mL的Mn3O4-PEG NPs成功下調了TNF-α、IL-1β 和IL-6 3 種炎癥因子的表達,且結果具有統計學差異,證明適量的Mn3O4-PEG NPs具有作為關節腔內抗炎藥物的潛力。
綜上所述,本研究成功制備了一種具有良好分散性和多重擬酶活性的抗ROS納米酶,在體外實驗中能有效清除·O2-、H2O2和·OH 3種活性氧基團,且細胞實驗證明,所合成的納米酶生物相容性良好,能夠下調氧化應激狀態下的軟骨細胞中炎癥因子的表達。在未來的實驗中,我們將在保證安全性的前提下,進一步驗證Mn3O4-PEG NPs 在動物體內能否達到治療關節炎的效果,以便對Mn3O4-PEG NPs作為納米酶的功效進行更全面的評價,為其清除ROS 維持組織氧化/抗氧化平衡治療OA 提供更詳實的理論和實驗數據支持。