亞麻籽蛋白特性及營養價值分析

馬德坤，王汝華，呂 筱，楊子彤，武淑芬,*，高俊文，陳寶儀，韓 釗，郭慶彬

（1.天津科技大學食品科學與工程學院，天津 300457；2.天津蘭瑞生物技術有限公司，天津 300384）

近年來，植物蛋白基食品浪潮不斷興起，發展勢頭迅猛，新型產品層出不窮[1]。動物蛋白缺點的暴露以及對植物蛋白認識的深入使得植物蛋白成為國內外食品領域關注的焦點。相對于動物蛋白，植物蛋白的生產利用具有綠色安全、環境友好和可持續發展的優勢，同時植物種植成本低、生產蛋白能力高效，更加符合社會發展需求[2]。從植物源加工工業的副產品中分離有價值的蛋白質并實現其高效利用，不僅可以保證生產的成本效益、可持續性和環境友好性，而且更能保證食品的安全性[3]。

亞麻籽是亞麻的種子，作為油料作物在我國廣泛種植，從榨油后的餅粕中提取蛋白質，可大大提高亞麻籽的整體利用度。已有研究證明，亞麻籽蛋白及其多肽具有抑制血管緊張素轉換酶活性、抗菌、抗糖尿病等多種生理功效，極具開發潛力和研究價值，但目前仍未實現商業化應用[4]。成熟的亞麻籽為扁平的長圓形，由兩個子葉包圍著一個薄胚乳和一個光滑的種皮（外殼）組成[5]。亞麻籽外殼中主要含有亞麻膠、木酚素、膳食纖維和生氰糖苷（機體攝入后可降解為有毒的HCN）[6]；亞麻仁中主要含有亞麻油和亞麻蛋白[7]。將亞麻籽的殼、仁分離，亞麻仁榨油后的餅粕用于提取蛋白，不僅提高蛋白提取率，同時還能達到脫毒目的；從亞麻籽殼中提取亞麻籽膠、木酚素和膳食纖維，如此可使亞麻籽的綜合開發利用走向高效、低耗的良性軌道[8]。現已有一些物理或化學方法用于殼仁分離，亞麻仁較易獲取[9-10]。

亞麻籽蛋白的提取方法多樣，包括除鹽沉淀法、堿提酸沉法和超聲法等，目前國內外廣泛使用的是堿提酸沉法[11]，相較于其他方法，該方法可實現重復提取。Tirgar等[12]發現堿提酸沉法提取的亞麻籽蛋白的表面疏水性以及乳化能力明顯高于酶法和酶溶劑萃取法；Kaushik等[13]首先使用水浸提法除膠，然后通過堿提酸沉獲取蛋白，使用該方法得到的亞麻籽蛋白具有極高的純度（90%以上）和較好的熱穩定性，在pH 9.0緩沖液中溶解度可達76%，并且形成的乳液具有較高的酸穩定性；孔惠廣等[14]以冷榨亞麻籽粕為原料，同樣采用堿提酸沉法提取蛋白，并采用冷凍干燥和噴霧干燥兩種方法對亞麻籽蛋白進行干燥，結果表明，干燥方式也會對蛋白的結構功能造成顯著影響；許光映等[15]以脫殼亞麻籽為原料，使用堿提酸沉法提取蛋白，但其只通過正交試驗確定了最佳工藝條件（提取pH值、溫度、料液比和時間），并未對所提取蛋白的性質進行系統分析評價。

基于以上研究背景，本研究以亞麻仁為原料，通過機械冷榨結合有機溶劑浸提方法除亞麻油，然后利用堿提酸沉方法提取亞麻蛋白；采用多種分析表征手段，對所提取的粗蛋白各組分含量、溶解度、分子質量、持水性、持油性、乳化性以及氨基酸組成進行分析檢測，同時借助在線酶解網站分析潛在的活性多肽序列。研究結果將為亞麻蛋白的高效利用提供參考，并為日后開發應用亞麻蛋白及其活性多肽提供數據支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

脫殼亞麻仁購于日照孚洽貿易有限公司；大豆油購自當地超市。

正己烷、氫氧化鈉、鹽酸、硫酸（均為分析純）天津市江天化工技術有限公司。

1.2 儀器與設備

Alpha-2LDplus真空冷凍干燥機 德國Charist公司；Kjeltec凱氏定氮儀 福斯（中國）有限公司；IS50傅里葉紅外光譜（Fourier transform infrared，FTIR）儀美國尼高利儀器公司；Infinite M200 Pro酶標儀 瑞士Tecan公司；CS7小型榨油機 深圳奧斯達科技有限公司；DYY-8C電泳儀 北京六一儀器廠；TGAQ50熱重分析儀美國TA儀器公司；90PLUS/BI激光粒度儀 美國布魯克海文儀器公司。

1.3 亞麻籽蛋白提取

1.3.1 亞麻籽油脂的脫除

采用機械冷榨與有機溶劑浸提相結合的方法，使用小型榨油機將原料連續冷榨3 次，將榨油后餅粕磨碎成粉，與正己烷以液料比1∶5（mL/g）混合置于燒杯中，室溫下攪拌（750 r/min、12 h），更換有機溶劑并繼續攪拌12 h，最后將除油固體置于培養皿中，在通風櫥內使殘余有機溶劑完全揮發盡，即得到脫脂亞麻籽粉。

1.3.2 亞麻籽蛋白的提取

參考Lan Yang等[16]的方法并稍作修改，采用堿提酸沉法提取亞麻籽蛋白。具體如下：將脫脂亞麻籽粉與水按料液比1∶15（g/mL）混合置于燒杯中，使用0.1 mol/L NaOH溶液調節pH值至9.0，室溫攪拌2 h，同時維持pH值恒定，攪拌結束后離心（4 ℃、8 000 r/min、20 min），取上清液置于燒杯中；使用0.1 mol/L HCl溶液調節pH值至4.2～4.6，離心（4 ℃、5 000 r/min、5 min），取沉淀，真空冷凍干燥即得亞麻籽蛋白。

1.3.3 亞麻籽蛋白理化性質測定

1.3.3.1 蛋白純度及提取率的測定

參考GB 5009.5—2016《食品中蛋白質的測定》，采用凱氏定氮法測定粗提亞麻籽蛋白以及脫殼亞麻仁中的氮含量。亞麻籽蛋白純度、提取率及得率分別按式（1）～（3）計算：

1.3.3.2 SDS-PAGE分析

根據孫媛[17]的改良Osborne分級法從亞麻籽粗蛋白中分離提取水溶性蛋白和鹽溶性蛋白。用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳（sodium dodecyl sulfatepolyacrylamide gel electrophoresis，SDS-PAGE）對亞麻籽粗蛋白及2 種分級提取蛋白的分子質量進行分析。

1.3.3.3 溶解度測定

分別配制不同pH值的Tris-HCl緩沖溶液（0.1 mol/L，pH 2.0～11.0），取一定質量的亞麻籽蛋白分別溶于上述緩沖溶液中，蛋白質量濃度0.2 g/100 mL，室溫下振蕩60 min，離心（4 ℃、8 000 r/min、20 min），取上清液；采用考馬斯亮藍法測定上清液中蛋白質含量，進而計算不同pH值條件下亞麻籽粗蛋白的溶解度。

1.3.3.4 Zeta電位分析

將亞麻籽蛋白溶于0.1 mol/L Tris-HCl（pH 8.6）緩沖液中，蛋白質量濃度0.2 g/100 mL，經0.45 μm濾膜過濾后均分于8 支試管中，使用0.1 mol/L NaOH溶液或0.1 mol/L HCl溶液分別調節各試管pH值為2.0～8.0。使用激光粒度儀測定各溶液Zeta電位。每組平行3 次。

1.3.3.5 熱重分析

借助熱重分析考察亞麻籽蛋白的熱穩定性。稱取8 mg亞麻籽蛋白樣品置于坩堝中，設置溫度量程為20～600 ℃，升溫速率為10 ℃/min。以溫度（℃）為橫坐標，樣品質量損失率（%）為縱坐標，記錄樣品在加熱過程中質量（m）隨溫度（T）的變化，從而得到熱重曲線，并對質量損失率求一階導（dΔm/dT）得到質量損失率的變化速率曲線。

1.3.3.6 FTIR光譜表征

采用FTIR和曲線擬合方法分析蛋白二級結構。測試光譜區域400～4 000 cm－1，分辨率4 cm－1。使用Omnic軟件對譜圖進行平滑，然后利用Peakfit軟件選取1 600～1 700 cm－1（酰胺I帶）區域求得二階導，進行高斯擬合，根據各區域峰面積計算4 種二級結構相對含量。

1.3.3.7 持水力與吸脂力評價

將0.5 g亞麻籽蛋白置于預先稱質量的離心管中，添加5 g蒸餾水，于2 500 r/min條件下渦旋振蕩5 min，室溫靜置30 min后離心（5 000 r/min、10 min），小心倒出上清液，并再次稱量帶有沉淀物的試管質量，測定亞麻籽蛋白持水力。稱取0.5 g 亞麻籽蛋白加入5 g大豆油按照上述步驟測定亞麻籽蛋白吸脂力。持水力與吸脂力分別按式（4）、（5）計算：

1.3.3.8 EAI和ESI測定

乳化活性指數（emulsifying activity index，EAI）和乳液穩定性指數（emulsifying stability index，ESI）是評價乳液形成能力和穩定性的重要指標。參考葉鳳凌等[18]的方法并稍作修改。以磷酸鹽緩沖液（含0.6 mol/L NaCl，pH 7.0、50 mmol/L）配制亞麻籽蛋白溶液（1.0 mg/mL），將大豆油分散于蛋白溶液（1∶4，V/V）中，室溫下經乳化（10 000 r/min、1 min）和均質（500 bar、1 次），制備水包油型乳液。分別在均質后0 min和10 min，距離離心管底部5 mm處取40 μL乳液，分散于4 mL 0.1% SDS溶液中，室溫靜置10 min，于500 nm波長處測定吸光度，分別記為A0和A10，以SDS溶液作空白。亞麻籽蛋白乳液的EAI和ESI分別按式（6）、（7）計算：

式中：ρ為乳化前蛋白溶液質量濃度/（g/mL）；φ為油相體積分數（20%）；n為稀釋倍數（100）。

1.3.4 亞麻籽蛋白營養價值評價

1.3.4.1 氨基酸組成分析

氨基酸組成分析委托杭州研趣信息技術有限公司進行測定。

1.3.4.2 一級序列（部分）分析

結合酶解和高分辨生物質譜技術，對蛋白樣品進行分析，該工作委托杭州景杰生物科技有限公司完成；利用NCBI蛋白數據庫和MaxQuant軟件分析樣品蛋白一級序列（部分）片段。

1.3.4.3 活性多肽片段預測

借助BioPD數據庫（http://www.uwm.edu.pl/biochemia/index.php/en/biopep）提供的在線酶解功能與活性多肽數據庫，分別采用胰蛋白酶、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶單獨酶解以及復合酶解的方式，分析潛在的活性多肽片段。

1.4 數據統計分析

實驗結果采用SPSS 20.0軟件進行顯著性差異分析，以P＜0.05為顯著性檢驗標準，所有結果均以平均值±標準誤表示，采用Origin 8.5進行作圖。

2 結果與分析

2.1 亞麻籽蛋白純度與提取率

經凱氏定氮分析與計算，去殼亞麻籽仁蛋白質量分數為24.82%，經除油、提取所得蛋白純度為98.86%，提取率為47.20%。Lan Yang等[16]使用堿溶酸沉法從亞麻籽餅粕中提取亞麻籽蛋白，純度不足65%；Tirgar等[12]使用堿性分離結合纖維素酶處理和乙醇沉淀法提取的亞麻籽粗蛋白仍含有10%的非蛋白雜質。而本實驗提取的亞麻籽蛋白具有更高的純度和較高的提取率。其原因可能在于使用亞麻仁為原料，排除了亞麻籽外殼中大部分糖類物質對蛋白提取的干擾，機械榨油和有機溶劑結合的兩步除油法也使油脂去除率較高。高純度的蛋白意味著極低的油脂含量，這在工業應用中具有重要意義，因為這可減少蛋白制品中殘余油脂氧化變質帶來的感官及質量上的不良影響，延長產品保質期。此外，研究證實亞麻籽蛋白自身作為功能食品成分具有抗氧化活性，可進一步抑制變質，保護食品感官品質并提供自身營養價值[19]。

2.2 亞麻籽蛋白亞基組成

針對亞麻籽粕蛋白的結構已進行了相關研究。例如，Oomah等[20]通過SDS-PAGE分析發現亞麻籽蛋白中含有4 種主要條帶（分別位于14、24、25 kDa和34 kDa）；Tirgar等[12]報道亞麻籽蛋白主要條帶分布于25～30 kDa及35～40 kDa，并提出20～27 kDa的條帶對應蛋白堿性亞基，30～39 kDa的條帶對應蛋白酸性亞基。不同品種亞麻籽蛋白亞基組成并非完全相同[21]。如圖1所示，在亞麻籽蛋白的SDS-PAGE圖譜中，21 kDa和33 kDa的譜帶較為強烈，分別對應蛋白酸性亞基和堿性亞基，Nwachukwu等[22]研究結果中也有相似分子質量的2 條強烈譜帶。全蛋白、水溶性蛋白和鹽溶性蛋白條帶沒有明顯差異，可能是由于樣品在提取以及電泳前處理過程中，加樣幾乎為水溶性蛋白。然而三者條帶強度存在差異，這種差異可能與蛋白含量及溶解度有關。此外，蛋白預處理也會導致蛋白電泳圖譜的差異，例如，Perreault等[23]使用高靜水壓進行蛋白預處理，促使亞麻籽蛋白大小亞基結合形成聚集體，導致了高分子質量電泳譜帶強度明顯提高。

圖1 亞麻籽蛋白的SDS-PAGE圖譜Fig. 1 SDS-PAGE profile of flaxseed proteins

2.3 亞麻籽蛋白溶解度分析

蛋白質的溶解性與pH值密切相關，不同pH值通過影響蛋白顆粒的凈電荷量以及顆粒之間的靜電斥力，進而影響蛋白的溶解穩定性，溶解度最低時的pH值被認為是蛋白等電點（pI）。如圖2所示，pH 4.0附近，蛋白溶解度最低，這是因為靜電排斥作用減弱，蛋白顆粒穩定性下降，導致蛋白顆粒聚集或沉淀，表明亞麻籽蛋白pI約為4.0；當pH值遠離pI時，隨pH值的升高蛋白溶解度不斷增加，pH 11.0溶解度高達68%，絕大部分蛋白處于溶解狀態。蛋白溶解度曲線基本符合“V”字形，且蛋白在堿性條件下溶解性較酸性條件更優。

圖2 不同pH值下亞麻籽蛋白的溶解度Fig. 2 Solubility of flaxseed protein at different pH values

2.4 亞麻籽蛋白Zeta電位分析

Zeta電位可以反映蛋白顆粒的帶電性質，其絕對值越高，顆粒間的斥力越大。如圖3所示，當pH值在4.0以下時，蛋白氨基發生質子化現象，蛋白顆粒帶正電荷。在pH 4.0～5.0，Zeta電位達到0 mV附近，這與溶解度結果一致，再次說明亞麻籽蛋白pI位于此區間。隨著pH值由pI持續升高，蛋白羧基基團電離強度隨之增加，導致蛋白顆粒所帶負電荷量顯著增加[24]。

圖3 不同pH值下亞麻籽蛋白的Zeta電位Fig. 3 Zeta potential of flaxseed protein at different pH values

2.5 亞麻籽蛋白熱穩定性分析

如圖4所示，亞麻籽蛋白主要有3 個熱降解階段。第1階段位于20～150 ℃，質量損失約6.45%，在50 ℃左右出現一個明顯的失重峰，這是由樣品失水造成的。經過冷凍干燥，樣品中的自由水很容易被去除，而結合水仍保留在干燥樣品中，并且因干燥樣品多孔結構而更容易吸濕，所以在加樣過程中會吸收部分游離水，因此這一階段的失水包括大部分的結合水和一部分游離水[25]。第2個熱降解階段位于200～500 ℃，此階段質量損失約57.63%，失重峰出現于320 ℃左右，這一溫度區間質量損失加快，說明在此過程中樣品中的主要成分蛋白質發生化學結構降解。第3階段位于500～600 ℃，質量損失約7%，此階段的質量損失可能由于碳化導致的。

食品加工過程中經常使用熱處理，而溫度的控制則顯得尤為重要，溫度低時，達不到加工所需預期效果，溫度高時，則可能造成某些物質分解，影響有效成分含量、產品品質及產生有害物質等。對亞麻籽蛋白進行熱重分析，可以了解其熱穩定性，結果表明，亞麻籽蛋白熱穩定性良好，在300 ℃下不易分解，與展海軍等[26]對大豆蛋白熱穩定性測定結果相比，亞麻籽蛋白的熱穩定性較好，更適于工業熱加工處理。

圖4 亞麻籽蛋白熱重分析圖Fig. 4 Thermogravimetric analysis of flaxseed protein

2.6 亞麻籽蛋白二級結構分析

分析蛋白質二級結構的方法有很多，其中FTIR光譜適用范圍廣，對樣品蛋白純度、質地、樣品量等要求較低[27]。本實驗所提取的蛋白在低pH值下溶解度較低，更適于在固體狀態下使用FTIR光譜進行蛋白二級結構分析。紅外譜圖中的酰胺I帶（1 600～1 700 cm－1）和酰胺III帶（1 220～1 330 cm－1）常被用于分析蛋白質的二級結構，目前對于酰胺I帶經過譜峰擬合后各子峰與二級結構對應關系的研究較為成熟。紅外光譜中酰胺I帶區域的吸收光譜主要是由C=O伸縮振動引起，蛋白質中含有豐富的C=O雙鍵，其二級結構的變化會引起酰胺I帶吸收光譜的變化，以1 600～1 639 cm－1為β-折疊，1 640～1 650 cm－1為無規卷曲，1 651～1 660 cm－1為α-螺旋，1 661～1 700 cm－1為β-轉角作為定量指標，進而可以準確分析蛋白質的二級結構信息[28]。

如圖5所示，經計算可知，α-螺旋、β-折疊、β-轉角和無規卷曲結構的相對含量分別為14.58%、28.48%、41.42%、15.52%。本實驗提取的亞麻籽蛋白含有較高比例的β-轉角，α-螺旋和β-折疊結構相對含量之和略高于β-轉角，無規卷曲相對含量較低。據報道，蛋白質分子中α-螺旋和β-折疊能夠形成緊密的無空腔結構，而與α-螺旋和β-折疊結構相比，無規卷曲結構的構象穩定性和緊密程度則相對較差。因此，亞麻籽蛋白中較低含量的α-螺旋和β-折疊使其分子的無序性較高，結構更加疏松開放，表明亞麻籽蛋白的二級結構穩定性一般，這可能是由于除油過程中螺旋擠壓對穩定結構造成破壞[29]。

圖5 亞麻籽蛋白FTIR譜圖（A）和酰胺I帶曲線擬合圖譜（B）Fig. 5 FTIR spectrum (A) and curve fitting results of amide I band of flaxseed protein (B)

2.7 亞麻籽蛋白持水、持油能力評價

蛋白質的持油性、持水性和起泡性是蛋糕、肉制品、面包、冰激凌等食品加工過程中重要的特性和質量控制指標。蛋白質良好的持水性有利于提高焙烤面團的結構穩定性，而良好的吸油性能則有利于肉制品、奶制品等的加工生產。

與大豆蛋白等其他植物蛋白相比，亞麻籽蛋白的脂肪吸收能力較高，達5.288 g/g，這可能是由于其具有更高的親脂性。脂肪吸收能力受到蛋白質中非極性氨基酸的影響，非極性氨基酸含量越高，親脂性越強[13]。亞麻籽蛋白的持水力為1.175 g/g，本實驗中亞麻籽蛋白提取后經冷凍干燥，親水性相比其他方法要低得多，這可能歸因于亞麻籽黏液的低殘留率。從亞麻仁中提取的蛋白含酚類物質較少，這也是蛋白持水能力相對較差的原因之一[30]。良好的親水性和親油性可以更好地將亞麻籽蛋白作為表面活性成分應用于相關溶液中，有望為食品工業或者醫藥加工帶來新的突破口，也可用于制備新型健康代餐食品。

2.8 亞麻籽蛋白乳化活性和乳化穩定性分析

蛋白多肽鏈上的兩親性氨基酸側鏈可以吸附到油水界面上并包裹由均質化所形成的油滴，同時通過羧基和氨基的解離產生靜電斥力發揮穩定液滴、防止聚集的作用。

由圖6A可知，在pH值小于4.0和大于5.0時，蛋白顆粒之間的靜電排斥作用阻止了油滴間聚合，提高了蛋白的乳化能力。靜電排斥導致蛋白疏水性增大，這會導致界面上吸附的蛋白濃度增大，界面張力減小，乳液更穩定，同時足夠多的蛋白分子吸附在油水界面形成高強度界面膜也更利于乳液的穩定。高乳化穩定性（ESI＞80%，圖6B）表明亞麻籽蛋白具有短期穩定食品乳劑的潛力。在pH 4.0～5.0范圍內，蛋白顆粒表面凈電荷減少，靜電排斥力減弱導致油滴聚集，EAI和ESI均降低。此外，本研究結果還顯示亞麻籽蛋白EAI與其溶解度呈正相關，ESI的變化趨勢與EAI相似，這與劉娟[31]對文冠果種子蛋白乳化性的研究結果一致；但EAI數值稍低而ESI值明顯高于其他研究結果[13-14]，這可能是由于蛋白質提取條件存在差異，所得蛋白純度以及蛋白微觀結構也不同。

圖6 不同pH值下亞麻籽蛋白的EAI（A）和ESI（B）Fig. 6 Emulsification activity index (A) and emulsion stability index (B) of flaxseed protein at different pH values

2.9 亞麻籽蛋白氨基酸組成分析

如表1所示，經過酸解處理，亞麻籽蛋白中共檢出17 種氨基酸，色氨酸在酸解過程中被破壞，谷氨酰胺和天冬酰胺經酸解轉換成谷氨酸和天冬氨酸。與大豆蛋白類似，亞麻籽蛋白富含天冬氨酸（9.32%）、谷氨酸（24.10%）、亮氨酸（5.95%）和精氨酸（10.11%），但含硫氨基酸蛋氨酸（1.53%）和半胱氨酸（2.07%）含量較低。就必需氨基酸而言，組氨酸（2.69%）、蘇氨酸（3.40%）、纈氨酸（5.83%）和異亮氨酸（4.64%）均高于聯合國糧食及農業組織/世界衛生組織（Food and Agriculture Organization/World Health Organization，FAO/WHO）的兒童推薦值（分別為1.9%、3.4%、3.5%、2.8%），亮氨酸（5.95%）、苯丙氨酸（5.76%）、賴氨酸（4.71%）和蛋氨酸（1.53%）含量稍低于FAO/WHO的兒童推薦值（分別為6.6%、6.3%、5.8%、2.8%），而除蛋氨酸外的所有必需氨基酸含量均高于FAO/WHO的成人推薦值（分別為蛋氨酸1.7%、蘇氨酸0.9%、纈氨酸1.3%、異亮氨酸1.3%、亮氨酸1.9%、苯丙氨酸1.9%、賴氨酸1.6%、組氨酸1.6%）。此外，帶負電荷的氨基酸如谷氨酸和天冬氨酸可通過螯合金屬鐵離子，抑制鐵誘導的脂質氧化，從而有助于防止食品的氧化損傷；高精氨酸/賴氨酸比率（2.15∶1）有助于降低血液膽固醇水平和增強心血管健康；必需氨基酸占總氨基酸的比例高于30%，預示亞麻籽蛋白作為優越蛋白質來源的巨大潛力。由于酸水解造成色氨酸的破壞，因此未檢測出其含量，但根據前人研究，亞麻籽蛋白中存在色氨酸且含量約為2%[32]。

表1 亞麻籽蛋白氨基酸組成Table 1 Amino acid composition of flaxseed protein

2.10 亞麻籽蛋白蛋白一級結構及在線酶解分析

本研究首先利用高效液相色譜-串聯質譜法結合數據庫檢索對提取亞麻籽蛋白中可能存在的蛋白組分進行初步鑒定，然后通過在線酶解并與活性多肽數據庫對比，對潛在活性多肽片段進行初步預測，為評估亞麻籽蛋白生理功效提供數據依據。

表2 亞麻籽蛋白組分初步分析Table 2 Composition of flaxseed meal proteins

由表2可知，通過BLAST檢索與之相匹配的已知序列蛋白，提取的亞麻籽蛋白可能含有11 種已知序列蛋白組分，蛋白打分值依次降低。有報道稱，亞麻籽蛋白中貯藏蛋白含量為10%～37%[28]，編號Q8LPD3和Q8LPD4兩種蛋白片段在數據庫中對應一種亞麻籽貯藏蛋白。A0RZJ8、P69315、Q703F2、K4K951這4 種蛋白為部分覆蓋，想要精確獲得覆蓋序列，需利用NCBI數據庫，將蛋白名稱下的序列全部下載，并利用原始測序數據，在MaxQuant軟件上進行分析處理。

通過MaxQuant可視化分析得到亞麻籽蛋白一級序列部分片段，共計45 條片段序列，分別為：QIQEQDYLRSCQQK、DLPGQCGTQPSR、GGGQQSQHFDSCCDDLK、AVGSSPVR、DLPGQCR、QDIQQQGQQQEVER、DLPGQCGTQPSR、QEIQQQGQQQEVQR、AVFPSIVGR、DSYVGDEAQSK、VAPEEHPVLLTEAPLNPK、DLTDYLMK、GYSFTTTAER、SYELPDGQVITIGNER、EITALAPSTMK、IIAPPER、LSLSATR、VLPELNGKLTGMAFR、VPTANVSVVDLTCR、TLLFGEK、AASFNIIPSSTGAAK、VLPELNGKLTGMAFR、IGLDGFGR、ESTLHLVLR、EGLPPDQQR、EVGQEIQ、YEAGVVPPGAR、ETQPASENLAAAAK、ELIIGDR、EAYPGDVFYLHSR、IINEPTAAAIAYGIDK、AAEQAAR、QLAVETR、VLPELDGK、LTGMAFR、LGATAGLR、LITTWSR、LGINGFGR、TLLFGEK、AASFNIIPSSTGAAK、TLSDYNIQK、ESTLHLVLR、HPVGADSLDQAR、IQDKEGIPVGR、YVTGGHPAGGDSLDQAR。由于樣品處理采用胰蛋白酶酶解，作用位點為精氨酸和賴氨酸，因此對應片段末端氨基酸均為K或R。此外，由于完整序列未知，在使用胰蛋白酶酶解時，得到的多肽片段長短不一，由于二級質譜依據分子質量進行匹配，片段過長過短都會影響匹配準確度，因此匹配范圍設置為5～25 個氨基酸片段，小于5 個或大于25 個氨基酸的片段都被自動忽略。

蛋白樣品在處理過程中已被胰蛋白酶酶解，對上述亞麻籽蛋白一級序列片段分別進行在線模擬酶解（http://www.uwm.edu.pl/biochemia/index.php/en/biopep），考察胃蛋白酶、木瓜蛋白酶單獨酶解及二者復合酶解后產生活性多肽情況。

表3 亞麻籽蛋白酶解后潛在活性多肽片段Table 3 Potential active polypeptide fragments derived from linseed protease hydrolysis

通過與活性多肽數據庫比對，由表3可知，亞麻籽蛋白經酶解后產生的潛在活性肽段多達47 條，均為二肽或三肽，表明亞麻籽蛋白酶解較為徹底。同時短肽更有利于吸收，這些活性片段具有較為廣泛的生物活性，如降壓、降糖、修護胃黏膜等，其中具有降糖或降壓活性的多肽占比較大。據此推測，亞麻籽蛋白經體內消化酶解后，可產生多種活性肽段，為后續蛋白酶解制備活性多肽提供有益指導。

3 結 論

為實現亞麻籽蛋白的高效開發利用，本實驗使用亞麻仁為原料，通過堿提酸沉法獲得了高純度的亞麻籽蛋白。研究表明，亞麻籽蛋白具有良好的熱穩定性和作為天然乳化劑的潛力，良好的兩親性和堿溶性等理化特性為其工業開發應用奠定了基礎。對蛋白進行改性處理，進一步提高其乳化活性，將有利于拓寬亞麻籽蛋白的應用范圍。亞麻籽蛋白含有人體必需的8 種氨基酸，通過模擬人體消化系統進行在線酶解，證實其水解產物具有抗高血壓、降血糖、抗氧化等功能活性，其潛在的營養價值具有客觀的市場競爭力與吸引力。