陳國峰,賈金蓉,李雪茹,廖 輝,張曉波,劉 峰,董見南
(黑龍江省農業科學院農產品質量安全研究所,哈爾濱 150086)
玉米是我國北方地區的主要糧食作物,能夠為食品加工提供豐富的原材料,促進我國農業經濟的快速發展。玉米生長過程中易發生各種病蟲草害,如玉米發苗階段的主要蟲害是黏蟲等,心葉階段的主要有害生物是草地貪夜蛾、玉米螟、蚜蟲和紅蜘蛛等[1-2],狗尾草、稗草、藜和反枝莧是玉米生長過程中的主要雜草[3]。
撲草凈,又叫撲滅通,是選擇性內吸傳導型除草劑,其主要被根部吸收,在植物體內運輸傳導到植物葉片,也可從莖葉進入植物體內[4-5]。撲草凈作用機理是抑制植物光合作用中電子的傳遞。雜草中毒癥狀首先是葉片由外向內逐漸失綠,最終全株枯死[6-8]。乙草胺屬于芽前除草劑,由美國孟山都公司于1971年研發成功,是目前世界上最重要的除草劑品種之一,也是目前我國使用量最大的除草劑之一,可防除一年生禾本科雜草和某些一年生闊葉雜草[9-10]。乙草胺作用機理是抑制α-淀粉酶活性,影響赤霉素、蛋白酶的合成及細胞膜通透性等[11-12]。異 唑草酮是一種選擇性內吸型苗前除草劑,主要用于玉米、甘蔗等旱作物,可防除多種一年生闊葉雜草和一些禾本科雜草[13]。異 唑草酮被噴到土壤中后迅速水解為異 唑草酮代謝物(異 唑草酮-二酮腈)[14]。異 唑草酮-二酮腈通過抑制對羥基苯基丙酮酸酯雙氧化酶的合成,進而影響到類胡蘿卜素的生物合成,最終使雜草出現失綠、生長停止和壞死等癥狀[14]。將撲草凈、乙草胺和異 唑草酮復配,可擴大復配藥劑對春玉米田一年生雜草的殺草譜及提高防效。
大量研究報道了撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的藥效、環境行為以及檢測方法等[15-18],而目前有關同時測定青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈殘留方法的研究較少。此外,有關田間條件下聯合處理撲草凈、乙草胺和異 唑草酮及其代謝物的殘留和風險評估的報道較少。因此,本研究的目的是:(1)建立一種簡單、快速、有效的分析方法,通過UPLC-MS/MS測定青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的殘留量;(2)研究田間施用78%撲草凈·乙草胺·異 唑草酮SE在青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中的最終殘留;(3)評估撲草凈、乙草胺和異 唑草酮在膳食中的攝入風險。
標準品撲草凈(純度99.7%)、乙草胺(純度99.4%),上海市農藥研究所有限公司;異 唑草酮(純度99.6%),德國Dr.Ehrenstorfer公司;異 唑草酮-二酮腈(純度99.5%),美國CHEM SERVICE公司。乙腈、丙酮和乙酸銨均為色譜純、有機系濾膜(0.22μm),北京迪馬歐泰科技發展中心;乙腈、氯化鈉均為分析純,北京益利精細化學品有限公司;石墨化碳黑(GCB)、N-(正丙基)乙二胺(PSA),天津艾杰爾科技有限公司。
X-TQS三重四極桿質譜,配有電噴霧離子源(ESI),美國沃特世公司;BT 2202 S電子天平,德國賽多利公司;CF15RX高速離心機,日本日立公司;HS501振蕩器,德國艾卡公司。
1.2.1 田間試驗
按照NY/T 788—2018《農產品中農藥殘留試驗準則》[19]分別于我國6處玉米主產區進行殘留試驗。試驗地的氣候條件及土壤類型見表1。各地的殘留試驗設2個試驗小區(1個處理小區和1個對照小區),每個小區面積為100 m2,小區之間設保護行。于春玉米播種后,出苗前以2 340 g a.i./hm2施用1次78%撲草凈·乙草胺·異 唑草酮懸乳劑,于青玉米成熟期和玉米成熟期分別收獲青玉米、青玉米秸稈和玉米、玉米秸稈。

表1 試驗地氣候條件及土壤類型
1.2.2 樣品采集與制備
于青玉米和玉米成熟期在試驗小區中按照棋盤式分布采樣,每個小區采集不少于12株,采集的樣品總量不少于2 kg,并將采集完的樣品裝入樣本容器。處理小區分別采集2個獨立樣品,對照小區采集1個樣品。地頭或邊緣0.5 m內不采樣。
將采集的青玉米秸稈和玉米秸稈樣品剪切成1 cm以下的小段,充分混勻,用四分法縮分樣品,分取2份200 g樣品,于低溫(-18℃)保存。青玉米和玉米樣品脫粒后以四分法縮分,分取2份200 g樣品,于低溫(-18℃)保存。試驗前用磨粉機將青玉米、青玉米秸稈、玉米和玉米秸稈樣品制成粉末狀樣品。
1.2.3 標準溶液的配制
分別稱取撲草凈、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的標準品各10 mg至10 mL燒杯中,加乙腈溶解并用10 mL容量瓶定容,配制成濃度為1 000 mg/L的標準儲備液。稱取乙草胺標準品10 mg至10 mL燒杯中,加丙酮溶解,并用10 mL容量瓶定容,配制成濃度為1000mg/L的標準儲備液。將上述濃度為1000 mg/L撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的標準儲備液用乙腈稀釋配得100 mg/L的標準混合液,隨后再用乙腈逐級稀釋配制成0.001、0.005、0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5 mg/L的系列混合標準工作溶液,于4℃保存,待用。
1.2.4 樣品前處理
分別稱取10.0 g青玉米、10.0 g玉米、5.0 g青玉米秸稈和5.0 g玉米秸稈于50 mL離心管中,依次加入適合比例的乙腈提取劑,振蕩30 min,隨后加入5 g NaCl,渦旋10 min,以3 500 r/min離心5 min,待凈化。
取1 mL上層乙腈相轉移至含有吸附劑的離心管中,渦旋30 s,以10 000 r/min離心3 min,取上清液,經0.22μm有機系濾膜過濾,待測。
1.2.5 儀器條件
色譜條件。利用配備超高效液相色譜(I-Class,Waters)的三重四極桿串聯質譜儀(UPLC-MS/MS)對撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈進行分析。Acquity UPLC BEH T3(100 mm×2.1 mm,1.8μm)用于液相色譜分離,柱溫為35℃,進樣體積為5μL,流速為0.3 mL/min。流動相由5 mmol/L乙酸銨水溶液(A)和乙腈(B)的混合溶劑組成。采用梯度洗脫,洗脫程序:0~1 min,10%B;1~2.0 min,10%~90%B;2.0~3.0 min,90%B;3.0~3.5 min,90%~10%B;3.5~5.0 min,10%B。
質譜條件。離子源:電噴霧離子源(ESI);撲草凈和乙草胺的掃描方式:正離子掃描,異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的掃描方式:負離子掃描;毛細管電壓:3.0 kV;離子源溫度:150℃;脫溶劑溫度:450℃;脫溶劑氣流量:1000L/h;錐孔氣流量:150L/h;檢測方式:多重反應監測(MRM),詳見表2。

表2 撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的質譜參數
1.2.6 除草劑檢測方法優化
優化提取溶劑。用混合標準溶液加標青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈,使上述4種基質中除草劑及代謝物的含量均為0.1 mg/kg;分別對撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的提取溶劑純乙腈、乙腈∶水(20∶20,V/V)、乙腈∶水(20∶10,V/V)進行優化篩選。
優化凈化條件。取上層乙腈提取液1 mL,加入至25~100 mg常用的吸附劑PSA、GCB和C18中,評估其使用量并選用最適材料。
1.2.7 定量限和檢測限
以3倍的信噪比(S/N)來確定目標化合物的檢測限(LOD),以最小添加回收濃度作為方法的定量限(LOQ)。為了確定青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中的撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的LOQ值,用工作溶液0.01 mg/L加標4種樣品,按照上述方法進行提取和凈化,逐級稀釋直至目標化合物的S/N比為10(S/N=10)。
1.2.8 添加回收測定
將混有撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的標準溶液分別添加3組濃度到空白玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈樣品中,每檔濃度重復5次,用上述分析方法測定并計算相對標準偏差(RSD)。
撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的國家估算每日攝入量(NEDI)和風險商(RQ)按式(1)、(2)計算[20]。

式中:STMRi為農藥在某種食品中的規范殘留試驗中值,mg/kg;Fi為一般人群對該食品的消費量,kg;bw為中國人均體重,kg(一般以63 kg計);ADI為農藥的每日允許攝入量mg/(kg bw)。
當RQ≤100%時,表示其風險可以接受,RQ值越小,風險越小;當RQ>100%時,表示有不可接受的慢性風險,RQ值越大,風險越大。
2.1.1 提取劑的選擇
提取劑的選擇如圖1所示,使用純乙腈對撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈在青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中的平均提取率在50.9%~72.6%,乙腈∶水(20∶20,V/V)的平均提取率在74.3%~83.2%,乙腈∶水(20∶10,V/V)對上述4種化合物的平均提取率在92.3%~102.2%。因此,乙腈∶水(20∶10,V/V)是提取青玉米、玉米、青玉米秸稈和玉米秸稈中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的最佳溶劑。

圖1 撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的提取率
2.1.2 凈化劑的選擇
根據優化試驗結果,使用30 mL乙腈∶水(20∶10,V/V)提取目標化合物。如表3所示,每1 mL提取物中的C18含量在25~100 mg時,撲草凈、乙草胺、異唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的平均回收率低于86.7%;每1 mL提取物中的PSA含量在25~75 mg時,平均回收率介于84.2%~103.2%,可能因PSA凈化劑含有2個氨基,可與提取液中有機酸、脂肪酸、色素、糖類等極性基質成分結合,且對目標農藥和代謝物不具有吸附效果,當PSA使用量超過50 mg時,4種化合物的平均回收率均下降;每1 mL提取物中的GCB含量在25~100 mg時,平均回收率在41.2%~87.1%,隨著GCB使用量的增加,其回收率逐漸減小,說明GCB與目標化合物之間具有強吸附性。

表3 不同凈化劑對4種化合物的凈化效果對比
考慮到樣品回收率和凈化的成本,故本次試驗使用50 mg PSA凈化青玉米、玉米中的雜質。對于秸稈樣品,本次試驗使用25 g GCB進行凈化,原因在于其有著特殊的層狀結構,能夠吸附秸稈提取液中的色素和甾醇類物質,且25 mg GCB不會吸附目標化合物。
如表4所示,在0.001~0.5 mg/L范圍內,撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈標準溶液濃度與峰面積呈良好的線性關系,R2均大于0.999。
在上述條件下,撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的檢測限(LOD)分別為1.1×10-5、1.1×10-5、4.8×10-6、1.1×10-5ng(表4)。以最小添加回收濃度作為方法的定量限,在上述色譜條件下撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈在玉米中的定量限(LOQ)分別為0.01、0.005、0.005和0.005 mg/kg;在青玉米中的最低檢出濃度均為0.005 mg/kg,在玉米秸稈中的最低檢出濃度均為0.02 mg/kg,在青玉米秸稈中的最低檢出濃度分別為0.02、0.02、0.02和0.01 mg/kg(表5)。

表4 撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的標準曲線和LOD

表5 撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的添加回收試驗結果(n=5)
玉米中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的平均回收率為75.5%~108.4%,RSD值為2.9%~12.7%;青玉米中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的平均回收率為82.6%~105.3%,RSD值為1.7%~13.6%;玉米秸稈中上述除草劑及代謝物的平均回收率為86.7%~110.8%,RSD值為1.9%~14.0%;青玉米秸稈中除草劑及代謝物的平均回收率為86.9%~107.8%,RSD值為0.8%~14.4%。結果表明,該方法的精密度、重現性和靈敏度足以滿足同時定量測定玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈中除草劑及代謝物的殘留量。
如表6所示,玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈中撲草凈的殘留量均未檢出,低于GB 2763—2021《食品安全國家標準食品中農藥最大殘留限量》[21]規定的玉米中撲草凈最大殘留限量(MRL)(0.02 mg/kg);乙草胺在上述4種基質中也均未檢出,低于標準規定的MRL(0.05 mg/kg);異 唑草酮和異 唑草酮代謝物在上種4種基質中也均未檢出。

表6 玉米、青玉米、玉米秸稈、青玉米秸稈中撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的最終殘留量
為了準確評估NEDI,應考慮中國的飲食攝入方式以及在中國注冊并使用撲草凈、乙草胺、異 唑草酮的農作物及其在各國的相應最大殘留限量。表7列出了我國國民對部分食物的膳食量(Fi)。按照中國、CAC、美國、歐盟、澳大利亞、韓國、日本的順序選擇最大殘留量(MRL)[22]。此外,在計算相應的NEDI時,僅選擇確保給定食品中NEDI最高的參考殘留限量。根據不同食品的殘留數據得出撲草凈的總NEDI為0.048 2 mg/(kg bw),RQ為1.91%;乙草胺的總NEDI為0.023 0 mg/(kg bw),RQ為3.65%;異唑草酮的總NEDI為0.000 437 mg/(kg bw),RQ為0.035%。

表7 玉米中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮的膳食風險評估結果
本文結合了改良的QuEChERS方法和UPLCMS/MS檢測技術,同時定量測定玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈中撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的殘留量。該方法檢測的基質更為廣泛,涵蓋了春玉米生長的全過程,且具有回收率高,準確性高和可重復性強等優點。所提出的方法適用于監測田間和市場上的玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈中的撲草凈、乙草胺、異 唑草酮和異 唑草酮-二酮腈的殘留量。在田間條件下,施用復配藥劑78%撲草凈·乙草胺·異 唑草酮SE后,玉米、青玉米、玉米秸稈和青玉米秸稈中撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的最終殘留量均未檢出,低于其相應規定。玉米中撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的膳食風險評估結果顯示,成熟期收獲的玉米RQ值均低于100%。這些數據表明,玉米播種后,出苗前以2 340 g a.i./hm278%撲草凈·乙草胺·異 唑草酮SE對土壤噴施1次,不會對健康造成潛在的危害。本研究為在玉米上合理使用撲草凈、乙草胺和異 唑草酮的復配農藥提供了數據支撐,并為玉米食用安全性的初步評估提供參考。