曹宇杰,沈志森,葉棟,陳佳意
有研究發現IgG-Fc 片段結合蛋白(FCGBP)在多種腫瘤發生、進展中起著重要作用,且與多種腫瘤的免疫細胞浸潤相關。在結直腸癌中,特別是在轉移性組織中,FCGBP 被發現高表達,并且FCGBP 的表達增加顯著降低了結直腸癌患者的整體生存率[1]。而在膽囊癌中,FCGBP的表達相較于正常組織降低,并且是腫瘤生長因子1(TGF-1)誘導的上皮間充質轉換的關鍵調節因子[2]。還有研究發現FCGBP在前列腺癌中低表達,且與疾病進展有關[3]。然而FCGBP 在頭頸鱗狀細胞癌(HNSC)中的作用和機制尚不清楚,本研究評估了FCGBP 在HNSC中的表達情況及其與預后的相關性,并初步探究FCGBP 與HNSC 免疫細胞浸潤的關系?,F報道如下。
1.1 材料 從癌癥基因組圖譜(TCGA)數據庫(https:/cancergenome.nih.gov//)下載基因轉錄組測序數據共544 例,其中499 例HNSC腫瘤組織數據,45 例正常組織數據。對每例腫瘤樣本下載對應相關臨床數據進行分析,包括年齡、性別、腫瘤分級、T 分期、N 分期和臨床分期。人HNSC 標本15 例(在距腫瘤病灶邊緣>0.5 cm 處解剖)均來自在寧波大學附屬李惠利醫院住院并接受手術的患者,由病理醫師盲檢后確認為腫瘤或癌旁正常組織,并獲得本院醫學倫理委員會批準。
1.2 方法
1.2.1 FCGBP表達水平、臨床預后和通路富集分析 采用R 軟件(3.5.1 版本)分析FCGBP 在499 例HNSC 腫瘤組織和45 例正常組織中的表達水平差異并作圖,使用R 軟件“survival”包進行Cox風險回歸分析和生存曲線分析。使用“clusterProfiler”包的gseKEGG 函數進行基因集富集分析(GSEA)。
1.2.2 免疫組織化學染色與分析 采用甲醛固定手術切除的HNSC腫瘤及鄰近組織,石蠟包埋后切成4 m 厚的切片,再用二甲苯和乙醇脫蠟。將切片在檸檬酸鈉緩沖液(pH值6.0)中120℃煮沸20min,進行抗原修復,然后在3% H2O2中室溫孵育10 min 以阻斷內源性過氧化物酶。再將切片與FCGBP 兔單克隆抗體[Ab cam(Ab121202),Cambridge,UK]進行免疫反應,然后與二抗一同孵育。切片用二氨基聯苯胺(Sigma,Cat No.ZLI-9018)溶液顯色,蘇木精復染,用各種濃度的酒精脫水后封片。在顯微鏡下觀察FCGBP 免疫反應切片并由病理學醫師解釋。
1.2.3 免疫細胞浸潤分析 采用由Newman 等[4]開發的CIBERSORT 軟件計算基于基因表達數據的特定組織中的細胞組成,并評估目標細胞豐度。本研究利用R 軟件對下載的HNSC 腫瘤組織數據進行篩選和矯正,然后使用CIBERSORT軟件評估22 種免疫細胞浸潤水平。利用R 軟件統計FCGBP 表達量和免疫細胞浸潤水平的相關性并繪圖。
1.3 統計方法 采用R 軟件及CIBERSORT 軟件進行數據分析,計數資料采用2檢驗和Fisher 精確檢驗,并采用單因素及多因素Cox 回歸分析。P <0.05為差異有統計學意義。
2.1 FCGBP 在HNSC 中的表達分析FCGBP 在HNSC 腫瘤組織中低表達(封四彩圖1),FCGBP 低表達水平的HNSC患者OS 較差(P <0.001),預后不佳(封四彩圖2)。進一步選擇了3 種類型的HNSC腫瘤組織(舌癌5 例、喉癌5 例、下咽癌5例)和配對癌旁組織進行免疫組化實驗,結果顯示FCGBP在HNSC腫瘤組織中染色強度顯著降低(封四彩圖3)。

圖1 正常組織和HNSC 腫瘤組織的FCGBP 表達水平

圖2 不同FCGBP 表達水平的HNSC 生存率

圖3 舌癌、喉癌、下咽癌腫瘤組織和癌旁正常組織的免疫組化染色結果(envision 二步法,×20)

圖4 不同FCGBP 表達水平的HNSC 患者年齡、性別、病理分級、T 分期、N 分期、臨床分期的分布情況
2.2 FCGBP 表達水平及其與HNSC 患者臨床病理因素的相關性 FCGBP 的表達水平與HNSC 患者的T 分期及臨床分期有關(封四彩圖4)。相較于FCGBP 高水平表達組,在FCGBP 低水平表達組中,更高級別T 分期的HNSC患者比例明顯增加(P=0.02),更高級別臨床分期的HNSC患者比例也明顯增加(P=0.009)(圖1)。單因素Cox 回歸分析顯示,FCGBP 表達量、年齡及臨床分期是影響預后的危險因素,見表1。多因素Cox 回歸分析顯示,FCGBP 表達量、年齡及臨床分期是影響HNSC 患者預后的獨立危險因素,見表2。

圖1 FCGBP 表達水平與HNSC 患者T 分期和臨床分期相關

表1 影響HNSC 患者生存的預后因素的單因素Cox 回歸分析

表2 影響HNSC 患者生存的預后因素的多因素Cox 回歸分析
2.3 FCGBP 在HNSC 中的GSEA 分析
在前10 條富集通路中發現有多條通路可能與免疫細胞相關,如細胞黏附分子、T細胞受體信號通路、B細胞受體信號通路、細胞因子及細胞因子受體相互作用通路。
2.4 FCGBP 與HNSC 中免疫細胞浸潤相關性 與FCGBP 低表達組相比,在FCGBP 高表達組中,幼稚B 細胞、漿細胞、濾泡輔助性T 細胞(Tfh)、調節性T細胞(Tregs)、靜息樹突狀細胞及靜息肥大細胞浸潤水平較高,而CD8+T 細胞、靜息NK 細胞、M0 巨噬細胞、M2 巨噬細胞、嗜酸性粒細胞及中性粒細胞浸潤水平較低。見圖2。

圖2 FCGBP 與HNSC 中免疫細胞浸潤相關性
相較于正常組織,FCGBP 在HNSC腫瘤組織中低表達,并利用免疫組化實驗證實了這一發現。據報道,在結腸癌中,與非轉移性組織相比,FCGBP 在轉移性組織中表達下調[5]。在骨肉瘤中,FCGBP 也被發現在腫瘤組織中表達下調。Wang 等[6]關于FCGBP 的泛癌研究發現,FCGBP在HNSC等7 種腫瘤組織中低表達,而在乳腺癌等14 種腫瘤中高表達,不同腫瘤類型中FCGBP的表達水平差異可能反映了不同的作用機制。本研究進一步發現 FCGBP 低表達與HNSC 患者的不良預后有關。臨床病理因素分析表明,FCGBP 表達水平、年齡和臨床分期與HNSC 患者預后相關,并且是獨立的預后影響因子。這些結果提示FCGBP具有生物標志物的潛力,并可能作為HNSC 的保護因子。還有研究發現在HPV 感染的HNSC 患者中FCGBP表達水平上調,推測FCGBP 還與HPV感染有關,并且其上調與患者較長的生存時間相關[7]。GSEA 的KEGG 通路分析結果顯示FCGBP 參與了多種免疫相關信號通路,這提示FCGBP可能在調節腫瘤免疫中起關鍵作用。
B細胞(也稱B淋巴細胞)可生成抗體,充當抗原呈遞細胞,并分泌細胞因子。Naive B 細胞可發育成為其他成熟B 細胞。漿細胞是終末分化的B 淋巴細胞,可構成性地分泌抗體,提供針對病原體的保護[8-9]。漿細胞可生成IgM、IgG 和IgE等高親和力的抗體,提供免疫記憶[10]。Tfh 可以促進生發中心(GC)內B 細胞分化成漿細胞和記憶性B 細胞[11-13]。樹突狀細胞可以誘導T 細胞活化和分化,從而啟動適應性反應,并且可以增強并調節免疫反應,增強外周T 細胞的耐受性[14-15]。肥大細胞經IgE 介導后活化,可能在抗腫瘤免疫中起重要作用[16]。本研究進一步評估了HNSC 腫瘤組織中22種免疫細胞的浸潤水平,發現上述有利于免疫抑制作用的免疫細胞在高FCGBP表達組中浸潤水平增加。M2 巨噬細胞主要參與降低炎癥反應,與免疫抑制有關。一項前列腺癌的研究顯示,相較于M2 巨噬細胞低表達組,高表達組患者生存率明顯降低,且M2 巨噬細胞被認為是獨立的危險因素[17]。M0 巨噬細胞又稱非活性巨噬細胞,可以被細胞因子誘導從而向M1 或M2 表型轉化。有研究發現M0 巨噬細胞浸潤比例高的膀胱癌患者預后差[18]。在本研究中,M2、M0 巨噬細胞浸潤水平在高FCGBP 表達組中顯著降低,這提示FCGBP 可能降低了M0 巨噬細胞的表達水平,抑制M2 型巨噬細胞的轉化。