葉染楓
(華中農業大學理學院 湖北 武漢 430070)
蘇云金桿菌(Bacillus,thuringiensis,Bt)產生的蛋白質,即Bt蛋白,是世界上應用最廣泛的微生物殺蟲劑之一[1]。與此同時,轉Bt蛋白基因相關產品的安全性評價也受到廣泛關注[2-3],所以建立一套針對Bt蛋白的檢測方法是極其必要的。目前檢測Bt蛋白的方法主要包括兩類,一類是基于核酸類的檢測方法,如聚合酶鏈式反應[4]、基因芯片[5]等,此類方法一般需要專業的儀器和設備操作過程相對復雜、不太適用于現場大規模的快速檢測。另一類是基于蛋白類的檢測方法,如酶聯免疫吸附試驗(ELISA)和蛋白質印跡[6-8],其中ELISA 由于操作相對簡單,適合大批量樣品的檢測。但環境中殘留的Bt蛋白含量一般較低[9-10],傳統的ELISA 方法中,由于結合于分析物上的酶分子數量有限,往往不能滿足其靈敏度的檢測要求[11]。
納米材料由于其超高的比表面積,使得它適合用于固載大量酶分子來實現信號放大[12-13]。如zhang 等[14]將多壁碳納米管作為載體,固載了大量的辣根過氧化物酶(HRP)和一定量的抗體,并結合ELISA 方法來檢測共濟失調毛細血管擴張突變蛋白,檢出限為0.2 fg/mL。Ambrosi 等[15]用納米金作為載體,固載了大量帶有HRP 酶標記的抗體,并應用于ELISA 方法檢測乳腺癌腫瘤標志物CA15-3,靈敏度可達0.012 OD·mL/U。雖然一般的納米材料都能夠進行大量酶分子的固定,但是酶的固定一般都需要在納米材料的合成完成之后才能進行[16]。也就是說,納米材料的合成與酶的固定是分步進行的,這給操作增加了復雜性。
本研究利用仿生合成法,合成了一種辣根過氧化物酶-抗體-磷酸氫鈣的有機-無機雜化納米材料(HAC)。該方法不僅能讓納米材料合成與酶和抗體的固定,同時且一步完成,而且沒有苛刻的反應條件和繁瑣的純化步驟,合成過程綠色溫和,無需任何有害的化學試劑,讓材料合成與酶和抗體的固定一體化。將HAC 納米材料應用于ELISA方法,可以高效檢測Bt蛋白Cry1Ab。
辣根過氧化酶(HRP)購自美國sigma 公司;氯化鈣、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉購自國藥集團化學試劑有限公司;Cry1Ab 蛋白及其抗體購自佑隆生物有限公司。
在離心管中依次加入0.2 M 磷酸-氫鈉溶液15 μL、0.2 M磷酸二氫鈉溶液15 μL、 Cry1Ab多克隆抗體0.02 mg、HRP 0.18 mg 以及超純水950 μL,混勻后,再加入0.2 M 氯化鈣溶液20 μL,混勻后室溫靜置6 h。將離心管內沉淀物進行離心分離并用超水洗滌3 次。所純化的產物溶解在PBS 溶液中。用掃描電子顯微鏡(型號JSM-6390LV,日本NTC 公司)、透射電子顯微鏡(型號:Philips CM200 UT,荷蘭飛利浦公司)、X 射線衍射儀(型號:D8 Advance,德國布魯克公司)對冷凍干燥后的HAC 納米材料進行表征。
1.3.1 條件優化
(1)抗體和HRP 的總用量和投料比??疾旌铣蒆AC納米材料所需Cry1Ab 抗體和HRP 的總用量為0.1、0.2、0.3 mg,抗體和HRP 的量的比例范圍為1 ∶3、1 ∶5、1 ∶7、1 ∶9、1 ∶11,在不同總用量和比例范圍下分別合成HAC 材料,將合成后HAC 納米材料分別應用于ELISA檢測Bt蛋白Cry1Ab,測量其吸光度值,吸光度值最大的位置所對應的抗體和HRP 的總用量以及投料比即為最佳合成HAC 納米材料的條件。
(2)HAC 納米材料稀釋倍數。選取不同的HAC 納米材料的稀釋倍數,依次為5、10、15、20、30 倍。在這些稀釋倍數下分別應用于ELISA 檢測Bt蛋白Cry1Ab,測量其吸光度值,在吸光度值最大的位置對應的稀釋倍數即為HAC 納米材料的最佳稀釋倍數。
1.3.2 檢測方法
(1)將Cry1Ab 單克隆抗體(1 μg/mL)加入酶標板中,每孔100 μL,37 ℃孵育2 h,用PBS 洗板3 次。
(2)加入1%牛血清蛋白BSA,每孔300 μL,在37 ℃下孵育30 min,用PBS 洗板3 次。
(3)加入不同濃度的Cry1Ab 蛋白,每孔100 μL,在37 ℃下孵育40 min,用PBS 洗板3 次。
(4)將HAC 納米材料溶液稀釋至合適倍數后,每孔加入100 μL,在37 ℃下孵育20 min,用PBS 洗板3 次后,加入底物顯色劑TMB 溶液,室溫避光反應15min。
(5)加入硫酸終止液,每孔100 μL,用酶標儀(型號:M3,美谷分子儀器上海有限公司)在波長450 nm 處檢測每個孔的吸光度。根據檢測結果,繪制吸光度值與Cry1Ab蛋白濃度之間的標準曲線,根據origin 軟件和3σ 法則分別計算出其線性范圍和靈敏度。
如圖1 所示,HAC 納米材料用掃描電鏡和透射電鏡表征其大小和形貌,結果顯示所合成的HAC 納米材料的大小在2 μm 左右,形狀呈花狀。用X 射線衍射儀分析了HAC 納米材料晶型,結果顯示HAC 納米材料的峰位置與CaHPO4·2H2O 的特征峰所對應,表明該材料的無機成分為CaHPO4·2H2O。
如圖2(a)所示,抗體和HRP 的總量分別為0.1 mg、0.2 mg 和0.3 mg 的條件下,隨著抗體和HRP 的投料比值的減小,對應檢測吸光度逐漸增加。在抗體和HRP 總量為0.2 mg、投料比為1 ∶9 時,吸光度達到了最大值,說明該條件下所合成的HAC 納米材料的檢測效果最佳。如圖2b 所示,當材料稀釋倍數5 ~20 倍時,檢測信號隨之增大,材料稀釋倍數增至20 倍時,吸光度達到了最大值,檢測效果最佳。所以HAC 納米材料的最佳稀釋倍數是20 倍。
2.3.1 線性范圍和靈敏度
檢測方法基于傳統的雙抗夾心ELISA 方法,將HAC 納米材料替換原來的酶標抗體用于檢測Bt蛋白Cry1Ab。配制不同濃度的Cry1Ab 蛋白標準溶液0.1、0.2、1、2、5、10 ng/mL,用于建立標準曲線。如圖3 所示,該方法的線性范圍是0.1 ~10 ng/mL(線性方程為:Y= 0.04X +0.143 69,相關系數R=0.995),根據3σ 法則計算出檢出限為0.021 ng/mL。
2.3.2 特異性分析
選擇Cp4-EPSPS 蛋白、CryIe 蛋白、BSA 蛋白作為干擾物來驗證所建立方法的特異性。如圖4 所示,只有當樣品中存在Cry1Ab 蛋白時,才會有較強的吸光度信號,其他非檢測目標物的信號強度與空白樣品強度類似,說明該方法具有良好的特異性。同時HRP-NP 和Ab-NP 分別代表單個固定HRP 或者Cry1Ab 抗體的HAC 材料,其信號強度也與空白樣品類似,結果表明HRP 和抗體是同時固定在HAC 材料上的。
2.3.3 加標回收實驗
為了驗證該方法的準確性和可行性。選擇3 個不同的加標濃度8.0、5.0、1.5 ng/mL,添加至自來水樣品中進行加標回收實驗,結果見表1,在自來水中,Cry1Ab 蛋白的加標回收率在92.0%~101.8%之間,表明此方法對于Cry1Ab 蛋白的檢測具有較高的準確性。

表1 自來水中Cry1Ab 蛋白的加標回收率
本文通過仿生合成法,一步綠色合成了HAC 納米材料,所制備的HAC 納米材料大小在2 μm 左右,形狀呈花狀。本研究對合成HAC 納米材料的抗體與酶之間的投料比以及HAC 納米材料的稀釋倍數進行了優化實驗,確定了最佳抗體和辣根過氧化物酶的總用量為0.2 mg,最佳投料比為1 ∶9。HAC 納米材料的最佳稀釋倍數是20 倍。本研究成功將HAC 納米材料應用于ELISA 檢測Bt蛋白Cry1Ab,所建立的方法線性范圍為0.1 ~10 ng/mL,檢出限為0.021 ng/mL,并具有良好的選擇性、準確性。本研究中所設計的基于磷酸氫鈣的有機-無機雜化納米材料除了可應用在生物分析外,還有望應用在環境科學、生物醫學以及催化等相關領域。