袁向科, 江 瑞
(1.河南省中醫院周圍血管科,河南 鄭州 450002;2.河南中醫藥大學第三附屬醫院老年病科,河南 鄭州 450003)
動脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)是心腦血管疾病的共同病理基礎,可由高血壓、高血糖、高血脂等多種因素引發,嚴重危害人類健康[1-2]。氧化型低密度脂蛋白(oxidized low-density lipoprotein,ox-LDL)是早期動脈粥樣硬化發生和發展的重要因素,其誘導的血管內皮損傷能促進泡沫細胞的形成,釋放大量炎性反應因子,進而加重該病病程[3]。因此,減少ox-LDL誘導的內皮損傷是預防和治療動脈粥樣硬化的有效途徑。
目前,黃酮類化合物因其抗炎、抗氧化等功能[4-5]在防治動脈粥樣硬化方面受到廣泛的關注[6-7]。葛根素6″-O-木糖苷是葛根中的主要異黃酮[8],具有顯著的抗腫瘤[9-10]、抗骨質疏松[11]活性,但該成分對血管內皮損傷的作用尚未見報道。因此,本研究采用ox-LDL誘導人臍靜脈內皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)損傷,探討葛根素6″-O-木糖苷對HUVECs活性、凋亡、炎性損傷及NF-κB信號通路的影響。
HUVECs購自美國典型培養物保藏中心。DMEM培養液、胎牛血清、胰蛋白酶購自美國Gibco公司;ox-LDL、維生素E購自美國Sigma公司。葛根素6″-O-木糖苷(純度大于98%)購自上海同田生物科技有限公司。MTT試劑盒、IL-1β、TNF-α ELISA試劑盒購自江蘇凱基生物有限公司;caspase-3活性檢測試劑盒、RIPA細胞裂解液、PMSF、BCA蛋白定量試劑盒購自上海碧云天生物技術有限公司;cleaved caspase-3、ICAM1、VCAM1、p-p65、p-IκB-α、GAPDH等一抗購自英國Abcam公司和武漢博士德生物工程有限公司;二抗購自北京中衫金橋生物有限公司。
2.1 細胞培養、分組及給藥 將HUVECs置于含10%胎牛血清的DMEM培養基中,在37 ℃、5% CO2培養箱中培養。當細胞生長至80%~90%時,用0.25%胰酶進行消化傳代培養。將HUVECs隨機分為6組,分別為對照組,正常培養48 h;ox-LDL組,正常培養基培養24 h后,100 μg/mL ox-LDL處理24 h;葛根素6″-O-木糖苷10、20、40 μmol/L組,10、20、40 μmol/L葛根素6″-O-木糖苷處理24 h后,100 μg/mL ox-LDL處理24 h;維生素E組,200 μg/L維生素E處理24 h后,100 μg/mL ox-LDL處理24 h。
2.2 MTT檢測細胞活性 將細胞接種到96孔板上,按“2.1”項下方法處理,每孔加入10 μL MTT(0.5 mg/mL),在37 ℃培養箱中孵育4 h,棄去培養基,每孔加入150 μL二甲基亞砜溶液,振蕩15 min, 在490 nm波長處檢測光密度(OD)值,計算細胞活性。
2.3 試劑盒檢測細胞caspase-3活性 將細胞接種到6孔板上,按“2.1”項下方法處理,胰酶消化貼壁細胞,4 ℃離心5 min收集細胞,按caspase-3活性檢測試劑盒說明書進行操作,在405 nm波長處檢測OD值,計算caspase-3相對活性。
2.4 ELISA法檢測細胞上清液IL-1β、TNF-α水平 按“2.1”項下方法處理細胞,離心收集細胞上清液,按ELISA試劑盒說明書檢測IL-1β、TNF-α水平。
2.5 Western blot 檢測細胞相關蛋白表達 將細胞接種到24孔板上,按“2.1”項下方法處理,每孔加入RIPA裂解液與PMSF的混合液(100∶1)裂解細胞15 min,離心收集上清,即為總蛋白,采用BCA蛋白定量試劑盒進行蛋白定量,取適量樣本進行SDS-PAGE凝膠電泳,采用半干轉方法將蛋白質轉移到硝酸纖維素膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,加入一抗,在4 ℃下過夜孵育,再加入二抗,室溫孵育1 h,采用紅外激光成像系統掃描。以GAPDH為內參,分析蛋白相對表達。

3.1 葛根素6″-O-木糖苷對ox-LDL誘導的HUVECs細胞活性的影響 如圖1A所示,0、10、20、30、40 μmol/L葛根素6″-O-木糖苷處理HUVECs后,細胞活性無明顯變化(P>0.05),表明該成分無細胞毒性。如圖1B所示,與對照組比較,ox-LDL可導致HUVECs的細胞活性下降(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的HUVECs細胞活性下降(P<0.05)。
3.2 葛根素6″-O-木糖苷對ox-LDL誘導的HUVECs細胞caspase-3表達的影響 如圖2A所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞caspase-3活性升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷組呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的caspase-3活性升高(P<0.05)。如圖2B所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞cleaved caspase-3蛋白表達升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的cleaved caspase-3表達升高(P<0.05)。

注:與對照組比較,*P<0.05;與ox-LDL組比較,#P<0.05。圖2 各組HUVECs細胞caspase-3表達
3.3 葛根素6″-O-木糖苷對ox-LDL誘導的HUVECs細胞上清液中炎性因子的影響 如圖3所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞上清液中IL-1β(圖3A)、TNF-α(圖3B)水平升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的IL-1β、TNF-α水平升高(P<0.05)。

注:與對照組比較,*P<0.05;與ox-LDL組比較,#P<0.05。圖3 各組HUVECs細胞上清液中炎性因子水平
3.4 葛根素6″-O-木糖苷對ox-LDL誘導的HUVECs細胞中黏附分子的影響 如圖4所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞中ICAM1(圖4A)、VCAM1(圖4B)蛋白表達升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的ICAM1、VCAM1表達升高(P<0.05)。

注:與對照組比較,*P<0.05;與ox-LDL組比較,#P<0.05。圖4 各組HUVECs細胞中黏附分子的表達
3.5 葛根素6″-O-木糖苷對ox-LDL誘導的HUVECs細胞NF-κB通路的影響 如圖5A所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞p-p65蛋白表達升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的p-p65蛋白表達升高(P<0.05)。如圖5B所示,與對照組比較,ox-LDL組細胞p-IκB-α表達升高(P<0.05);與ox-LDL組比較,葛根素6″-O-木糖苷呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的p-IκB-α蛋白表達升高(P<0.05)。

注:與對照組比較,*P<0.05;與ox-LDL組比較,#P<0.05。圖5 各組HUVECs細胞NF-κB通路蛋白表達
血管內皮損傷是導致動脈粥樣硬化發展的始動環節[12],在該病病灶部位中ox-LDL水平升高。HUVEC具有與動脈血管內皮細胞相似的生物學特征,用ox-LDL體外誘導HUVECs,可以模擬體內血管內皮損傷。本研究發現,葛根素6″-O-木糖苷能夠抵抗ox-LDL 誘導的HUVECs細胞損傷,提高細胞活性,抑制細胞凋亡和炎性反應。
在動脈粥樣硬化斑塊中存在廣泛的內皮細胞凋亡,損傷的內皮細胞能夠誘導IL-1β、IL-6和TNF-α等炎性因子和VCAM1、ICAM1等黏附分子的產生,加速白細胞向內皮細胞的黏附和級聯炎性反應[13]。通過ox-LDL誘導HUVECs,使得HUVEC細胞活性下降,caspase-3活性和表達提高,且IL-1β、TNF-α、VCAM1和ICAM1表達升高。Bhaskar等[14]發現槲皮素降低ox-LDL誘導的HUVECs中VCAM1、ICAM1、MCP-1和IL-6等炎性介質表達。槲皮素和蘆丁調節JAK2通路抑制ox-LDL誘導的內皮細胞凋亡[15]。芳香新塔花總黃酮抑制炎癥反應來保護內皮細胞[16]。本研究中葛根素6″-O-木糖苷能夠呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的HUVECs細胞損傷,包括提高細胞活性,降低caspase-3表達,且下調IL-1β、TNF-α、VCAM1和ICAM1表達。
NF-κB是一種重要的轉錄因子,廣泛參與癌癥、炎癥和免疫疾病的發展[17-18],其信號通路的激活與動脈粥樣硬化的發展進程密切相關[19-21]。Bhaskar等[14]發現槲皮素通過調控NF-κB信號通路減少動脈粥樣硬化炎性和黏附分子的表達。Deng等[22]發現葛根素通過抑制NF-κB信號通路可抵抗LPS誘導的血管內皮損傷。本研究發現ox-LDL處理導致HUVECs細胞中p-p65和p-IκB-α表達升高,激活NF-κB信號通路;而葛根素6″-O-木糖苷處理能夠呈劑量依賴性地抑制ox-LDL誘導的p-p65和p-IκB-α表達升高。
綜上所述,本研究證實了葛根素6″-O-木糖苷在ox-LDL誘導的HUVECs細胞中發揮重要的作用,包括提高細胞活性,抑制細胞凋亡,降低炎性因子和黏附分子水平,與抑制NF-κB信號通路有關。