胡艷波 高 峰 劉尚奇 張慧明 王敏杰
肥胖是一個日益受到全球關注的健康問題,與許多慢性疾病的發展有關[1]。例如心血管疾病、血脂異常、高血糖、炎癥、高血壓、糖尿病等[2]。肥胖主要與脂肪細胞增多和組織內脂質積累有關[3]。脂肪形成是前脂肪細胞分化并向成熟脂肪細胞轉化的結果[4]。而近年來研究表明,激活AMPK會抑制成脂轉錄因子過氧化物酶體增殖物激活受體γ、CCAAT/增強子結合蛋白α和甾醇調節元件結合蛋白1的表達,從而抑制了前脂肪細胞的分化[5,6]。此外,AMPK的激活會使與脂肪酸和膽固醇合成有關的關鍵代謝酶失活,包括乙酰輔酶A羧化酶和3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶,影響脂質的合成[7]。
AMPK被認為是治療肥胖和相關代謝性疾病的靶點[8]。例如,近年來有很多相關研究,民間藥物馬齒莧中的hm -色酮通過激活AMPK來抑制脂肪細胞分化和脂肪形成[9];中華狼尾草提取物sinensol-C通過調節脂肪轉錄因子和AMPK活性抑制3T3-L1細胞脂肪生成[10];竹節參總皂苷通過AMPK減少NF-κB的表達來減輕炎癥[11];川芎嗪通過AMPK/NF-κB途徑減輕過敏性氣道炎癥和氧化應激等通過以上研究,可以看出AMPK在前脂肪細胞成熟為脂肪細胞的過程中發揮著重要作用[12]。
CRISPR/Cas9是古細菌在長期演化過程中形成的一種適應性免疫防御,用來對抗入侵的病毒及外源DNA[13,14]。CRISPR/Cas9基因編輯技術的應用獲得了2020年諾貝爾化學獎,這項技術是用于基因編輯中前沿的方法[15]。該技術成果已廣泛地應用于各個物種的基因組精確修飾,展現出其極大的應用潛力。
本研究利用CRISPR/Cas9技術,使被剪切的基因用同源修復和非同源末端連接途徑造成移碼突變,成功構建了AMPKα1基因敲除的3T3-L1細胞系[16]。將3T3-L1細胞誘導成成熟的脂肪細胞,即可研究AMPKα1基因與脂肪細胞的炎癥、米色化、能量代謝等一系列實驗[17~19]。也可以在細胞水平上初步驗證AMPK與高血壓、高血脂、心血管等一系列與肥胖相關的疾病之間的關聯,為后續實驗提供一定的研究基礎。
1.細胞、質粒及菌株:RAW264.7 細胞、3T3-L1細胞、HEK293T細胞、載體質粒與輔助質粒均購自湖南豐暉生物科技有限公司。STBL3感受態細胞購自北京莊盟國際生物基因科技有限公司。
2.主要試劑:Esp3Ⅰ酶、T4 DNA 連接酶購自美國Thermo公司,T4多聚核苷酸激酶購自美國NEB公司,無內毒素質粒中提試劑盒購自北京康為世紀生物科技有限公司,瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒購自北京天根生化科技有限公司,慢病毒濃縮試劑盒購自中國愛必夢科技有限公司,陽離子轉染試劑購自北京碼因科技有限公司,DMEM培養基、胎牛血清購自美國Gibco公司,氨芐青霉素、硫酸鏈霉素購自上海源葉生物科技有限公司,嘌呤霉素購自北京索萊寶科技有限公司。
3.質粒構建:設計sg RNA:NCBI查找AMPKα1的基因序列,利用張鋒實驗室網站設計sg RNA,得到兩條sg RNA寡核苷酸序列。將兩條寡核苷酸序列退火克隆到lenti CRISPR載體質粒中。
4.慢病毒包被:構建好的載體質粒與輔助質粒psPAX2、PCMV-VSV-G按照4∶3∶1共同轉染HEK293T細胞中,轉染24h后換液,48h收集第一批慢病毒液,0.22μm濾膜過濾病毒液,4℃保存,備用。
5.構建AMPKα1敲除的3T3-L1細胞系:3T3-L1細胞長到80%~90%時,將4℃保存的慢病毒液與正常完全培養基1∶1加入到3T3-L1細胞中,6h后更換正常培養基。繼續培養72h,加入嘌呤霉素進行篩選,篩選14天。存活的細胞即為構建的AMPKα1敲除的3T3-L1細胞,更換正常培養基培養,傳代,凍存。
6.蛋白質印跡法:使用100mm 培養皿培養細胞,24h后收集細胞,加入500μl細胞裂解液,冰上裂解 30min,離心取上清。BCA蛋白定量后,將蛋白標到同一濃度,取 20μl 蛋白上清液加入4μl 5×蛋白上樣緩沖液,100℃金屬浴5min,進行蛋白 SDS-PAGE 電泳,轉膜,5%脫脂奶粉封閉。一抗4℃孵育過夜,1×TBST洗4次,每次10min,辣根過氧化物酶標記的二抗在室溫條件下孵育1h,1×TBST洗4次,每次10min,ECL超敏顯色劑顯色。
7.統計學方法:采用Graphpad Prism6.0 軟件進行統計作圖,組間差異進行Oneway-ANOVA參數方差分析,兩組之間采用t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。
1.lenti CRISPR v2質粒載體簡介:lenti CRISPR v2質粒14873bp,帶有氨芐青霉素抗性,是張鋒團隊改良的病毒的新載體,改良后增加了病毒效價,被廣泛應用于生物科學實驗中(圖1)。克隆sg RNA時多選用BsmBⅠ進行酶切。

圖1 lenti CRISPR v2載體質粒圖譜
2.酶切質粒載體:將5μg的lenti CRISPR v2載體質粒利用酶BsmBⅠ和熱敏感性堿性磷酸酶進行酶切,酶切時加入DTT防止氧化,37℃孵育30min。進行瓊脂糖凝膠電泳(圖2),可以清晰地看到lenti CRISPR v2載體質粒被切開,將需要的片段利用瓊脂糖凝膠回收試劑盒回收。

圖2 lenti CRISPR v2載體質粒BsmBⅠ酶切后瓊脂糖凝膠電泳
3.退火寡核苷酸:利用張峰實驗室網站設計兩條sgRNA。AMPKα1上游引物:5′-CACCGACGTGGTGGGAAAAATCCGC-3′,下游引物:5′-AAACGCGGATTTTTCCCACCAC-GTC-3′。利用T4多聚核苷酸激酶將兩條sg RNA聚合成雙鏈 DNA,反應條件:37℃,30min;95℃,5min,之后以5℃/min緩慢降溫至 25℃。將得到的產物按照1∶200比例稀釋,4℃或者-20℃保存,用于下一步的克隆。
4.連接質粒載體與sg RNA:將膠回收的載體質粒與稀釋后的sg RNA按照1∶3摩爾比利用快速連接酶進行連接,37℃下孵育10min。
5.轉化:將連接后的體系取出5μl進行轉化,按照感受態細胞的轉化步驟進行轉化后,放在37℃細菌培養箱中培養12~16h,長出為數不多的菌落,挑取單克隆菌落進行一下步驟的質粒擴增。
6.質粒擴增:將單克隆菌落接種到5~10ml的加入了氨芐青霉素的LB液體培養基中,瓶口注意透氣,37℃、220r/min震蕩12h。利用康為世紀無內毒素質粒中提試劑盒提取質粒。
7.瓊脂糖凝膠初步驗證:利用0.75%的瓊脂糖凝膠進行電泳40min,結果如圖3所示,擴增后的片段在13000bp左右,初步判斷是克隆成功的質粒,送北京睿博興科生物技術有限公司測序。

圖3 sg RNA與質粒連接瓊脂糖凝膠驗證
8.測序:測序結果顯示,設計的sg RNA已成功克隆到lenti CRISPR v2載體質粒中。大量擴增后即可進行后續實驗(圖4)。

圖4 sg RNA克隆測序結果
9.3T3-L1殺滅曲線的建立:將3T3-L1細胞制成細胞懸液后,24孔板內以5×104個/孔的密度鋪板,37℃細胞孵育過夜。準備篩選培養基:含不同濃度嘌呤霉素的新鮮培養基(2、4、6、8和10μg/ml 5個濃度梯度);往孵育過夜后的細胞內更換新鮮配制的篩選培養基;37℃孵育細胞。更換新鮮的篩選培養基,并觀察細胞存活率。根據細胞的生長狀態,2~3天更換新鮮的篩選培養基;每日監測細胞,觀察存活細胞率,從而確定抗生素篩選開始4天內有效殺死非轉染細胞的藥物最低濃度。殺滅曲線如圖5所示,最終確定嘌呤霉素篩選濃度為4μg/ml。

圖5 3T3-L1細胞嘌呤霉素殺滅曲線
10.構建3T3-L1細胞系:將包被好的病毒液轉染3T3-L1細胞,6h換成正常培養基,72h后用4μg/ml嘌呤霉素進行篩選。篩選14天后,更換正常培養基培養細胞,此時活下來的細胞即為AMPKα1敲除的細胞,將剩余細胞培養長滿培養皿,進行傳代,WB法檢測AMPKα1敲除效率,結果如圖6中A、B所示,Q-PCR檢測AMPKα1敲除效率,結果如圖6C所示。構建的3T3-L1細胞系中,AMPKα1蛋白和mRNA幾乎不表達(P<0.01),成功構建了AMPKα1敲除的細胞系。

圖6 各組AMPKα1相對表達量
11.脂肪分泌因子對RAW264.7細胞中NF-κB表達的影響:將3T3-L1誘導成成熟的脂肪細胞后,取其培養基與RAW264.7細胞共培養48h后,WB法檢測結果顯示,AMPKα1基因敲除組NF-κB表達增加(P<0.01,圖7)。

圖7 各組NF-κB蛋白相對表達量
肥胖主要是由卡路里攝入和消耗之間的失控引起,是代謝紊亂的危險因素。肥胖會導致全身性慢性炎性反應,并加劇細胞功能障礙[20]。肥胖患者的C反應蛋白水平顯著升高,其可以通過激活血管周圍脂肪中的炎性反應誘發動脈內皮功能障礙[21]。肥胖還會通過增加氧化應激、脂肪組織內缺氧等導致PVAT釋放脂肪因子功能失調,從而導致PVAT抗收縮作用減弱甚至喪失[22]。
根據《中國心血管健康與疾病報告2020》顯示,心血管疾病的病死率占總病死率的40%以上,而且心血管疾病的病死率一直在上升。其中代謝性心血管病所占比例較高,是指代謝異常與心血管損害之間有較為明確的因果關系,通過干預代謝紊亂可有效改善預后的一種臨床綜合征。雖然目前尚無統一的定義,但在我國心血管患病人數高達3.3億的大背景下,肥胖、糖尿病、血脂異常等已成為代謝性心血管病的重要風險因素。
肥胖與心腦血管疾病關聯緊密,AMPK又是廣泛表達的能量調節關鍵分子。本實驗通過CRISPR/CAS9技術成功構建了AMPKα1敲除的3T3-L1細胞系。為后續研究脂肪組織中AMPK基因與心腦血管疾病提供幫助。還初步驗證了敲除AMPKα1基因后的脂肪細胞分泌的脂肪因子會促進巨噬細胞NF-κB的表達。為后續研究AMPK與炎癥等提供一定的參考價值。
近年來,CRISPR/CAS9技術應用越來越廣泛,為研究者提供了理想的基因敲除手段,本研究詳細地描寫了利用CRISPR/CAS9技術構建基因敲除細胞系的構建方法,從sg RNA的設計到最后的細胞系篩選,為后續構建基因敲除細胞系的研究者提供了可靠的方法,節約其他相關研究人員時間成本。