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白蒺藜皂苷對系統性紅斑狼瘡模型小鼠免疫功能和腎功能的影響*

2022-08-09 04:50:52王晶孟祖東方勇阿彩嶺許雪
中國藥業 2022年15期
關鍵詞:小鼠劑量水平

王晶,孟祖東,方勇,阿彩嶺,許雪

(湖北省十堰市人民醫院·湖北醫藥學院附屬人民醫院,湖北 十堰 442000)

系統性紅斑狼瘡(SLE)是一種難治性自身免疫性疾病,涉及多個器官和系統,臨床表現復雜[1]。SLE 易引起全身或局部組織和器官損傷[2]。糖皮質激素可有效治療SLE,但長期使用會引起代謝紊亂、組織愈合延遲等不良反應[3]。自身免疫系統在SLE的發病機制中非常重要,Janus 激酶(JAK)起主導作用,其異常表達或過度激活均可能導致SLE發生[4]。JAK是參與Toll樣受體(TLR)信號傳導的重要蛋白激酶,抑制JAK 信號通路有利于減少炎性級聯反應介導的組織損傷[5]。信號轉導及轉錄激活因子(STAT)是一種氧化還原敏感的轉錄因子,可調節免疫反應和炎性反應,STAT的異常表達已在SLE 中得到證實[6]。此外,JAK 是STAT 通路的關鍵調節因子,在自身免疫性疾病的發病中起重要作用[7]。生化實驗和臨床證據表明,白蒺藜皂苷具有調節免疫、控制炎癥、減少西藥副作用、降低感染發生率等作用[8-10]。本研究中探討了白蒺藜皂苷對SLE 模型小鼠免疫功能與腎功能的改善作用,以及對JAK/STAT 通路的影響,為其臨床治療提供參考。現報道如下。

1 材料與方法

1.1 儀器、試藥與動物

儀器:AU-480 型全自動生化分析儀(貝克曼庫爾特生命科學有限公司);ZeissLSM880 型熒光顯微鏡(德國徠卡有限公司)。

試藥:醋酸潑尼松原料藥(上海施貴寶制藥有限公司,批號為MN-569696.3);抗雙鏈DNA(dsDNA)抗體、抗SM、補體C3、補體C4、24 h 尿蛋白定量(24 h pro)、血肌酐(SCr)、血尿素氮(BUN)試劑盒(貝克曼庫爾特生命科學有限公司,批號分別為SD-48596.6,41529.5,52149.3,48972.7,89546.6,23984.3,51269.5);10%蘇木精染色(北京索拉爾生物科技有限公司,批號為1526963);0.5%曙紅染色(北京索拉爾生物科技有限公司,批號為5263963),Tissue-TekOCT 復合物(美國賽默飛世有限公司,批號為XD-41589.36);0.3%Tri?tonX-100(美國Sigma 生物有限公司,批號為YU-526986.36);異硫氰酸熒光素(FITC)偶聯的山羊抗小鼠IgG(1∶1 000,批號為ab23836),兔抗小鼠C3(1∶2 000,批號為ab23836),購于英國Abcam生物有限公司;4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI,中生北控生物科技有限公司,批號425969),Trizol試劑(美國Invitrogen有限公司,批號為CD-599696.65);RevertAidTMM-MuLV 逆轉錄酶(日本Fermentas 有限公司,批號為MB-596563.36);蛋白酶抑制劑緩沖液(美國Cell Signaling Technology 有限公司,批號為MN-658963.63);硝酸纖維素膜(德國Schleicher&Schuell BioScience Inc 有限公司,批號為5896369);JAK3、STAT5、GAPDH 一抗(美國SantaCruz有限公司,批號分別為CD-59693.33、XC-74856.69、KI-58741.36);偶聯辣根過氧化物酶的二抗(美國Cell Signaling Technology 有限公司,批號為56987.69);增強化學發光試劑盒(ECL,美國Cell Signaling Technol?ogy 有限公司,批號為DC-574896.65);白細胞介素2(IL -2)、腫瘤壞死因子-α(TNF -α)、白細胞介素4(IL -4)酶聯免疫吸附(ELISA)試劑盒(北京索拉爾生物科技有限公司,批號分別為B2021034、B2021095、B2021018)。

動物:12 只C57BL/ 6 小鼠,6~8 周齡,雌雄各半,體質量(25.2±2.5)g,實驗動物生產許可證號為SCXK(滬)2018-0035,實驗動物許可證號為SYXK(浙)2016-0158,購自西普爾可凱實驗動物有限公司。飼養于本院實驗中心的屏障環境(室溫20 ℃,相對濕度40%~60%,日光12 h),隔離于全封閉清潔狀態,自由飲水進食。48 只MRL/ lpr 狼瘡小鼠(MRL/ lpr 小鼠第19 號染色體Faslps 突變,可自發產生系統性免疫性自身疾病,淋巴結腫大、T 細胞增生、關節炎和免疫復合物型腎小球腎炎),6~8 周齡,體質量(25.3±2.4)g,實驗動物生產許可證號為SCXK(滬)2017-0005,實驗動物許可證號為SYXK(浙)2019-0012,購自上海Slac 實驗動物有限公司。飼養于浙江中醫藥大學動物實驗中心屏障環境(室溫20 ℃,相對濕度40%~60%,日光12 h),隔離于常閉無特定病原體(SPF)狀態,自由飲水和進食。本研究已通過我院動物倫理協會批準。

1.2 方法

給藥與分組:醋酸潑尼松組(45 mg/ kg),白蒺藜皂苷低、高劑量組(100,200 mg/ kg)MRL/ lpr 狼瘡小鼠給予相應藥物灌胃,正常對照組(C57BL/ 6 小鼠)和模型對照組小鼠灌胃等量生理鹽水,各12只,均持續8 周。

抗dsDNA、抗SM、補體C3、補體C4、24 h 尿蛋白、SCr、BUN 測定:末次治療后,所有小鼠空腹隔夜取血,靜置30 min,離心(轉速為3 000 r/min)10 min,分離取血清,同時收集小鼠24 h 尿液;采用貝克曼AU-480 型全自動生化分析儀測定抗dsDNA、抗SM、補體C3、補體C4、24 h尿蛋白、SCr、BUN水平。

小鼠腎臟病理、熒光切片制作:腎臟在4%甲醛中固定24 h,常規脫鈣,脫水,用切片機切成5μm 厚的切片。二甲苯Ⅰ、二甲苯Ⅱ脫蠟,無水乙醇水化,10%蘇木精染色,鹽酸和乙醇分化,用0.5%曙紅染色1 min,乙醇、二甲苯脫水。使用LeicaDM4000B 型光學顯微鏡觀察腎臟組織的病理變化。將速凍的腎組織用于IgG、補體C3 的免疫熒光檢查,將冷凍腎組織包埋在Tissue -TekOCT 復合物中,用4% 多聚甲醛固定30 min,用0.3%TritonX-100 透化30 min,用3%牛血清白蛋白在室溫下封閉30 min,用FITC 偶聯的山羊抗小鼠IgG、兔抗小鼠C3 在4 ℃下孵育過夜,用DAPI 染色5 min,用熒光顯微鏡觀察染色情況。

小鼠腎臟JAK3及STAT5基因水平檢測:Trizol試劑提取腎臟中的總RNA,使用RevertAidTMM -MuLV 逆轉錄酶將RNA逆轉錄成cDNA,對JAK3,STAT5,GAPDH進行反轉錄聚合酶鏈式反應(RT -PCR)。95 ℃預變性30 s后,將Rotor -Gene TM6000 PCR 系統的循環程序設置為在95 ℃下進行40次循環5 s,在56 ℃下進行30 s。當最后的循環結束時,將樣品在65 ℃保持5 s,以進一步延長。序列如下,JAK3,正向5'-TACGTAGTCGATC?GTAGCTAGCTAGCTAGCTAGTCGATCGATCGATCGCT?AGT -3',反向5' -TGTCGTAGCTAGTCGATCGTAGC?TAGCTAGCTAGCTGATCGATCGTAGCTCG-3';STAT5,正向5'-TGCTAGTCGTAGTCGTAGCTAGTAGTCGTAGT?GTCGATCGTG -3',反向5' -TGTGATGTAGCTGATC?GATGTCGTAGTAGTGATGTCGTACTG-3';GAPDH,正向5' -TGTGCTGATGATGCTAGTCGTAGCTAGTCGAT?GCTAGCTGA -3',反 向5' -TGTCGTATCGATCG?TAGCTAGTCGATCGTAGTGTAGTGTAGT -3'。每個反應重復3 次。JAK3 和STAT5 mRNA 的相對水平分別為JAK3和STAT5吸光度與GAPDH吸光度之比。

小鼠腎臟JAK3 和STAT5 蛋白水平檢測:采用蛋白質印跡(Western blotting)法測定,腎組織在蛋白酶抑制劑緩沖液中裂解并勻漿,離心(15 000g)。將提取的蛋白質用7%凝膠進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS -PAGE),并將蛋白質轉移到硝酸纖維素膜上。用含5%脫脂奶粉的TBST(含0.1%Tween-20的TBS,pH 7.4)封閉后,將膜與JAK3,STAT5,GAPDH 于4 ℃溫度下過夜。洗滌后,印跡與偶聯辣根過氧化物酶的二抗一起孵育。膜上的蛋白印跡通過ECL 試劑盒檢測。使用Quantity One(德國慕尼黑BioRad 實驗室)對測定結果進行定量。

小鼠腎組織炎性因子IL -2,TNF -α,IL -4 水平檢測:取細胞培養液100μL 于96 孔板內,覆膜,37 ℃孵育2 h。棄去孔內液體,每孔加IL-2、TNF-α、IL-4 生物素抗體工作液100μL,覆膜,37 ℃孵育1 h,棄去孔內液體,每孔加酶結合物工作液100μL,37 ℃孵育1 h。棄去孔內液體,洗板5 次。每孔用200 μL 的洗滌液洗滌,浸泡2 min,棄去酶標板內的液體,在吸水紙上將酶標板拍干。每孔加入TMB 顯色底物溶液90μL,37 ℃避光孵育15~20 min。每孔加入終止液50μL,終止反應,立即用酶標儀測量。采用ELISA法測定小鼠腎組織炎性因子IL-2,TNF-α,IL-4的水平。

1.3 統計學處理

采用SPSS 23.0 統計學軟件分析。計量資料以X±s表示,采用單因素方差分析,多重比較采用LSD -t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 抗dsDNA、抗SM、補體C3、補體C4 水平

由表1可見,模型對照組小鼠抗dsDNA、抗SM 水平均顯著高于正常對照組,補體C3、補體C4 水平均顯著低于正常對照組(P<0.05);醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠抗dsDNA、抗SM 水平均顯著低于模型對照組,補體C3、補體C4 水平均顯著高于模型對照組(P<0.05);隨著白蒺藜皂苷劑量的增加,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠抗dsDNA、抗SM 水平逐漸降低,補體C3、補體C4水平逐漸升高(P<0.05),且上述指標水平均較醋酸潑尼松組變化顯著(P<0.05)。

表1 各組小鼠抗dsDNA、抗SM、補體C3、補體C4水平比較(,n=12)Tab.1 Comparison of anti-dsDNA,anti-SM,complement C3 and complement C4 levels of mice in each group(,n=12)

表1 各組小鼠抗dsDNA、抗SM、補體C3、補體C4水平比較(,n=12)Tab.1 Comparison of anti-dsDNA,anti-SM,complement C3 and complement C4 levels of mice in each group(,n=12)

注:與正常對照組比較,aP <0.05;與模型對照組比較,bP <0.05;與醋酸潑尼松組比較,cP <0.05;與白蒺藜皂苷低劑量組比較,dP <0.05。表2至表4同。Note:Compared with those in the normal control group,aP <0.05;Compared with those in the model control group,bP <0.05;Compared with those in the prednisone acetate group,cP <0.05;Compared with those in the STT low-dose group,dP <0.05(for Tab.1-4).

2.2 BUN,SCr,24 h 尿蛋白水平

由表2 可見,模型對照組小鼠BUN、SCr、24 h 尿蛋白水平均顯著高于正常對照組(P<0.05);醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠上述指標水平均顯著低于模型對照組(P<0.05);隨著白蒺藜皂苷劑量的增加,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠上述指標水平逐漸降低(P<0.05),且顯著高于醋酸潑尼松組(P<0.05)。

表2 各組小鼠BUN、SCr、24 h尿蛋白水平比較(,n=12)Tab.2 Comparison of BUN,SCr and 24 h urinary protein levels of mice in each group(,n=12)

表2 各組小鼠BUN、SCr、24 h尿蛋白水平比較(,n=12)Tab.2 Comparison of BUN,SCr and 24 h urinary protein levels of mice in each group(,n=12)

2.3 腎組織蘇木精-伊紅(HE)染色

由圖1 可見,正常對照組小鼠腎小球結構正常,模型對照組小鼠腎小球體積變大,可見炎性細胞浸潤;醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠腎小球體積變小,炎性細胞浸潤減輕。

2.4 腎組織免疫熒光染色

由圖2可見,正常對照組小鼠IgG和補體C3染色為陰性,模型對照組小鼠可見IgG 沿毛細血管袢呈不連續的顆粒樣沉積,熒光強度為++++;醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠腎小球IgG 和補體C3 沉積情況變弱。

2.5 腎組織JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平

由表3 可見,模型對照組小鼠JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平均顯著高于正常對照組(P<0.05);醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠JAK3 及STAT5mRNA和蛋白水平均顯著低于模型對照組(P<0.05);隨著白蒺藜皂苷劑量的增加,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平均逐漸降低(P<0.05),且均顯著高于醋酸潑尼松組(P<0.05)。各組小鼠腎組織JAK3 及STAT5 蛋白表達水平電泳圖見圖3。

表3 各組小鼠腎組織JAK3及STAT5 mRNA和蛋白水平比較(,n=12)Tab.3 Comparison of the levels of JAK3,STAT5 mRNA and pro?tein in the kidney tissue of mice in each group(,n=12)

表3 各組小鼠腎組織JAK3及STAT5 mRNA和蛋白水平比較(,n=12)Tab.3 Comparison of the levels of JAK3,STAT5 mRNA and pro?tein in the kidney tissue of mice in each group(,n=12)

2.6 腎組織炎性因子IL-2,TNF-α,IL-4 水平

由表4可見,模型對照組小鼠IL-2,TNF-α,IL-4水平均顯著高于正常對照組(P<0.05);醋酸潑尼松組和白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠上述指標水平均顯著低于模型對照組(P<0.05);隨著白蒺藜皂苷劑量的增加,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠上述指標水平均逐漸降低(P<0.05),且均顯著高于醋酸潑尼松組(P<0.05)。

表4 各組小鼠腎組織炎性因子IL-2,TNF-α,IL-4水平比較(,mol/mL,n=12)Tab.4 Comparison of the inflammatory factors IL-2,TNF-α and IL-4 levels in the kidney tissue of mice in each group(,mol/mL,n=12)

表4 各組小鼠腎組織炎性因子IL-2,TNF-α,IL-4水平比較(,mol/mL,n=12)Tab.4 Comparison of the inflammatory factors IL-2,TNF-α and IL-4 levels in the kidney tissue of mice in each group(,mol/mL,n=12)

3 討論

隨著免疫抑制方案和一般醫療保健措施的改進,增殖性和膜性狼瘡性腎炎長期治療結果已無差異,但SLE患者腎炎完全緩解率仍低于12%,且40%的Ⅲ~Ⅴ期狼瘡性腎炎患者仍存在一定程度的腎功能損害[11]。即使在良好的情況下,免疫抑制劑對SLE腎炎的治療效果仍遠不能令人滿意。因此,有必要為SLE 尋找新的藥物靶點。

白蒺藜皂苷具有抗氧化、抗炎和鎮痛作用,肝炎、高血壓、關節炎、支氣管炎、惡性腫瘤等多種疾病具有潛在的治療作用[12]。白蒺藜皂苷誘導鼠和人CD4+T 淋巴細胞擴增為Foxp3+調節性T(Treg)細胞,可用于緩解急性結腸炎[13]。白蒺藜皂苷還可調節外周單核細胞的活性,抑制SLE相關致病細胞因子的產生,如TNF-α,IL -1β,IL -12,IL -6[14]。近期的研究表明,白蒺藜皂苷能與模式識別受體如dectin-1發生潛在相互抑制作用。Dectin -1 是一種c 型凝集素,可與TLR2 協同觸發抗原呈遞細胞中的先天免疫反應,誘導促炎作用。此外,TLR2 信號可能具有潛在增強體外和體內Treg 細胞增殖的作用,導致Foxp3 表達的瞬時增加[15]。本研究結果顯示,模型對照組小鼠抗dsDNA、抗SM、BUN、SCr、24 h尿蛋白水平均顯著高于正常對照組,補體C3、補體C4水平均顯著低于正常對照組;醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠抗dsDNA、抗SM、BUN、SCr、24 h 尿蛋白水平均顯著低于模型對照組,補體C3、補體C4 水平均顯著高于模型對照組。結果表明,白蒺藜皂苷能明顯抑制SLE 模型小鼠的免疫功能,并改善腎功能。由病理、熒光染色結果可知,經醋酸潑尼松、白蒺藜皂苷治療后,各組小鼠腎小球減少,炎性細胞浸潤減輕,腎小球IgG 和補體C3 沉積情況變弱。結果表明,白蒺藜皂苷可抑制SEL模型小鼠腎臟的炎性反應。

有研究表明,抑制JAK3可改善核因子-κB抑制因子α(IκBα)磷酸化,抑制免疫活性細胞中核因子-κB(NF-κB)信號傳導和下游促炎細胞因子產生,減少狼瘡相關的腎功能損傷[16]。STAT5 是一種廣泛表達的核轉錄因子,在調節各種炎性介質中起重要作用,通常存在于細胞質中。IKBα的磷酸化使STAT5易位到細胞核,并誘導轉錄[17]。JAK3 是SLE 發展的危險因素,JAK3 抑制劑可減弱易患狼瘡的MRL/lpr 小鼠和具有外周血單個核細胞(PBMC)的SLE 患者脾單核細胞中的NF-κB信號傳導,同時減少小鼠中促炎細胞因子的產生。因此,抑制JAK3 活性可能有助于發現SLE 和其他炎性疾病的新療法[18]。另有研究表明,脂多糖刺激MRL/lpr小鼠腹腔巨噬細胞后,炎性信號通路JAK3/ STAT5 和炎性因子TNF-α 及IL-6 的表達顯著增加[19]。這表明脂多糖與JAK 受體,特別是JAK3 的特異性結合,異常激活STAT5 信號通路,啟動免疫相關基因的轉錄并誘導各種炎性反應。在細胞試驗中,JAK3 通過shRNA 慢病毒轉染過表達,作用于MRL/ lpr 小鼠腹腔巨噬細胞,JAK3 過表達后STAT5 表達顯著增加,下游炎性分子的表達增加;而抑制JAK3 表達后,JAK3 下游分子中STAT5、IKBα、IKB 激酶(IKK)和NF-κB 的表達水平降低,磷酸化水平顯著降低[20]。IL -2,TNF -α,IL -4 是JAK3/STAT5 通路的下游因子。本研究結果顯示,模型對照組小鼠JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平均顯著高于正常對照組(P<0.05);醋酸潑尼松組,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平均顯著低于模型對照組(P<0.05),且隨著白蒺藜皂苷劑量的增加,白蒺藜皂苷低、高劑量組小鼠的JAK3 及STAT5 mRNA 和蛋白水平均顯著降低(P<0.05),均顯著高于醋酸潑尼松組(P<0.05);同時,IL-2,TNF-α,IL-4水平也被抑制。

綜上所述,白蒺藜皂苷能明顯抑制SLE模型小鼠的免疫功能,改善腎功能,其作用機制可能與白蒺藜皂苷能抑制JAK3/STAT5通路的激活有關。

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