馬思宇,肖芳斌,羅雪,韋飄,宋莉
貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院/農(nóng)業(yè)生物工程研究院/山地植物資源保護(hù)與種質(zhì)創(chuàng)新教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/貴州省農(nóng)業(yè)生物工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴陽(yáng)550025
植物根系具有固持地上組織和吸收水分、養(yǎng)分的雙重功能[1],在植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮重要作用[2]。根系的生長(zhǎng)狀態(tài)和分化速度直接影響牧草的長(zhǎng)勢(shì)和產(chǎn)量[3-4]。牧草根系的發(fā)育受多種內(nèi)外環(huán)境因子的影響,由蛋白激酶(protein kinases, PK)介導(dǎo)的激素信號(hào)途徑是其中的主要調(diào)控途徑[5-6]。蛋白激酶是催化蛋白質(zhì)磷酸化反應(yīng)的酶,廣泛參與細(xì)胞信號(hào)感知[7]、傳導(dǎo)[8]、基因表達(dá)[9]、生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控[10]等過(guò)程。根據(jù)催化域氨基酸序列的不同,蛋白激酶分為AGC、CaMK、CMGC、PTK和其他共5個(gè)類型[11]。CaMK中的C2鈣依賴蛋白激酶(C2 calciumdependent protein kinase, C2CDPK)是一類含有C2結(jié)構(gòu)域的蛋白。鈣依賴蛋白激酶(CDPK)依賴于Ca2+催化磷酸化反應(yīng)[12],參與細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程[13]。研究表明,CDPK參與植物根系的生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控,定位于細(xì)胞膜的擬南芥CDPK編碼基因CPK29參與側(cè)根形成調(diào)控[9],苜蓿MtCDPK1表達(dá)促進(jìn)根毛的正常生長(zhǎng)[14],水稻OsCDPK5在淹水條件下能保證根系通氣組織的正常形成[15]。C2結(jié)構(gòu)域蛋白主要定位于人類和動(dòng)物的細(xì)胞膜系統(tǒng),具有參與磷脂第二信號(hào)產(chǎn)生、GTP酶激活和控制蛋白質(zhì)磷酸化等重要功能[16-17]。近年來(lái),植物C2CDPK的研究已逐漸受到關(guān)注[18-19]。研究發(fā)現(xiàn)小麥的C2CDPK基因TaC2DP1在干旱、低溫和熱脅迫中發(fā)揮重要作用[20],旋蒴苣苔的BhC2DP1基因參與脫落酸(ab?scisic acid, ABA)信號(hào)途徑調(diào)控根的生長(zhǎng)[21]。盡管如此,人們對(duì)植物C2CDPK的了解仍極為有限。
百脈根(Lotus corniculatusL.)是一種優(yōu)質(zhì)的多年生豆科牧草,也是一種良好的蜜源和護(hù)坡固土植物,其由匍匐莖發(fā)生的不定根所構(gòu)成的根系系統(tǒng)十分發(fā)達(dá)。本研究通過(guò)RACE擴(kuò)增法克隆Leo百脈根C2CDPK編碼基因LcC2DP1,利用qRT-PCR技術(shù)檢測(cè)該基因的組織表達(dá)特異性,通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時(shí)表達(dá)系統(tǒng)對(duì)其不定根分化調(diào)控功能進(jìn)行初步分析,以期為揭示百脈根根系發(fā)育調(diào)控機(jī)制提供依據(jù)。
所用植物材料為百脈根(Lotus corniculatus‘Leo’),種植于貴州大學(xué)貴州省農(nóng)業(yè)生物工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室試驗(yàn)田。農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)菌株GV3101和pSH737植物表達(dá)載體均保存于筆者所在實(shí)驗(yàn)室。
筆者所在課題組前期分析百脈根不定根發(fā)育轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)[22]中發(fā)現(xiàn),12個(gè)C2結(jié)構(gòu)域激酶基因家族成員在不定根發(fā)育過(guò)程中持續(xù)上調(diào)表達(dá),其中的LcC2DP1(Lc1g3v0026680)表達(dá)最為顯著,本研究對(duì)該基因進(jìn)行進(jìn)一步研究,克隆引物(表1)采用Prim?er Premier 5.0軟件設(shè)計(jì),提取百脈根莖、葉、根的總RNA混合反轉(zhuǎn)錄成cDNA后作為模板,按照5′RACE和3′RACE試劑盒(TaKaRa, 大連)提供的操作方法進(jìn)行兩輪巢式PCR擴(kuò)增,首輪PCR產(chǎn)物稀釋50倍后取1 μL作為第二輪PCR的模板。50 μL反應(yīng)體系為:cDNA模板1 μL、引物各2 μL、Taq酶0.5 μL、Buffer 5 μL、2H2O補(bǔ)足體系;PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35次循環(huán)后再72 ℃ 延伸10 min,之后對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行凝膠分離和回收測(cè)序。根據(jù)已知序列和5′ RACE、3′ RACE測(cè)序結(jié)果,拼接目的基因全長(zhǎng)序列,分析起始和終止密碼子位置。根據(jù)RACE擴(kuò)增序列設(shè)計(jì)2條全長(zhǎng)擴(kuò)增特異性引物(表1),以百脈根cDNA為模板擴(kuò)增LcC2DP1基因,擴(kuò)增條件為:94 ℃ 預(yù)變性2 min;94 ℃ 變性30 s,55 ℃ 退火30 s,68 ℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán);68 ℃ 延伸10 min。PCR擴(kuò)增片段與pMD18T載體連接,熱激法轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α后送生工生物一程(上海)公司測(cè)序。

表1 RACE和全長(zhǎng)基因克隆擴(kuò)增引物序列Table 1 RACE and full length gene cloning amplification primer sequence
使用相關(guān)的生物信息分析在線工具進(jìn)行LcC2DP1基因的分子特征分析,其中,理化性質(zhì)(蛋白質(zhì)分子質(zhì)量、等電點(diǎn)、分子式)采用ExPASy Prot?Param tool(https://web.expasy.org/protparam/)、編碼蛋白的親疏水性采用Protscale(https:∥web.ex?pasy.org/protscale/)、蛋白結(jié)構(gòu)分析采用SOPMA(https:∥npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/)和SWISSMODEL(https://swissmodel.expasy.org/)進(jìn)行。利用Plant-mPLoc(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bio?inf/plant-multi/)對(duì)LcC2DP1基因進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)。利用BEDTools[23]獲得LcC2DP1基因上游2 000 bp序列(Lotus corniculatusgenome assembly build 3.0)[24],利用在線網(wǎng)站PlantCARE對(duì)獲得的序列和順式作用元件進(jìn)行分析。使用NCBI的BLAST工具篩選出LcC2DP1同源序列后用MEGA X中鄰位相連法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹。
為探究LcC2DP1在百脈根不同組織和不同時(shí)期中的表達(dá)情況,分別收集Leo百脈根的根、莖、葉以及不定根形成過(guò)程中0、3、6、9、12 d根部組織為樣本。以百脈根UBI(DQ249171.1)作為內(nèi)參基因,通過(guò)IDT(https://sg.idtdna.com/site/home/home/ses?siontimeout)在線軟件設(shè)計(jì)LcC2DP1和UBI的擴(kuò)增引物(表2)。使用實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(CFX96)檢測(cè)LcC2DP1基因的時(shí)空表達(dá)特性,反應(yīng)體系和反應(yīng)程序根據(jù)TIANGEN miRcutemiRNA試劑盒的說(shuō)明進(jìn)行。采用2-△△Ct方法[25]分析基因相對(duì)表達(dá)量。

表2 qRT-PCR檢測(cè)引物序列Table 2 Primer sequence used in qRT-PCR detection
利用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和XbaⅠ(TaKaRa, 大連)分別酶切pSH737和pMD18T- LcC2DP1質(zhì)粒,酶切片段回收后用T4DNA連接酶(TaKaRa,大連)4 ℃連接過(guò)夜,構(gòu)建LcC2DP1基因的植物表達(dá)載體,該基因由35S啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)表達(dá),以GUS::NPTII作為報(bào)告基因和篩選基因。采用YEP液體培養(yǎng)基培別采用GUS組織化學(xué)染色和RT-PCR進(jìn)行轉(zhuǎn)化鑒定。采用視顯微鏡(OOX-86)進(jìn)行拍照,利用根系掃描儀(Epson)和根系分析軟件(Win Rhizo)對(duì)總根長(zhǎng)、根尖數(shù)、根系總表面積、根體積和根平均直徑等根系指標(biāo)進(jìn)行觀察及統(tǒng)計(jì)分析。
數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)和顯著性分析分別采用Excel 2016軟件和DPS 7.05軟件,并采用GraphPad Prism 8.2軟件進(jìn)行作圖。
養(yǎng)所獲得的陽(yáng)性工程菌至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。參照楊少彤等[26]的方法,通過(guò)真空滲透法進(jìn)行百脈根枝條瞬時(shí)轉(zhuǎn)化。轉(zhuǎn)化條件為在12 kPa處理10 min,快速釋放壓力,再次重復(fù)處理1次。每組15株樣品,重復(fù)3次。以攜帶GV3101-pSH737質(zhì)粒轉(zhuǎn)化植株作為對(duì)照,分
基于百脈根不定根分化轉(zhuǎn)錄組篩選的Lc1g3v00 26680序列,對(duì)LcC2DP1基因進(jìn)行RACE擴(kuò)增,獲得的LcC2DP1全長(zhǎng)為705 bp,編碼235個(gè)氨基酸,該序列上游有起始密碼子ATG,下游有終止密碼子TGA。為了驗(yàn)證拼接序列的正確性,設(shè)計(jì)引物對(duì)LcC2DP1編碼區(qū)進(jìn)行擴(kuò)增,得到1條約700 bp的特異性條帶,序列測(cè)定結(jié)果表明LcC2DP1編碼區(qū)與拼接結(jié)果序列完全一致(圖1)。

圖1 LcC2DP1基因克隆及拼接翻譯Fig.1 LcC2DP1 gene amplification and mosaic translation
對(duì)LcC2DP1基因結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,結(jié)果顯示,其編碼蛋白含235個(gè)氨基酸,相對(duì)分子質(zhì)量為25 952.03,理論等電點(diǎn)為7.17,分子式為C1185H1737N305O344S6,脂肪指數(shù)為53.91,不穩(wěn)定性指數(shù)為85.47,是一種不穩(wěn)定蛋白。對(duì)LcC2DP1蛋白質(zhì)進(jìn)一步分析,發(fā)現(xiàn)其親水性氨基酸較疏水性氨基酸多(圖2A),推測(cè)該蛋白屬于親水性蛋白。在LcC2DP1蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)中,α螺旋有19個(gè)氨基酸(占8.15%),無(wú)規(guī)卷曲有175個(gè)氨基酸(占75.11%),延伸鏈有39個(gè)氨基酸(占16.74%)(圖2B),可確定該蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)主要以無(wú)規(guī)卷曲為主。利用Plant-mPLoc在線分析軟件,對(duì)LcC2DP1進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè),結(jié)果顯示,LcC2DP1定位在細(xì)胞核和細(xì)胞膜上(圖2C)。用Swiss model對(duì)LcC2DP1蛋白進(jìn)行三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè),結(jié)果顯示,LcC2DP1蛋白結(jié)構(gòu)包含大量的無(wú)規(guī)卷曲(圖2D),這與預(yù)測(cè)的二級(jí)結(jié)構(gòu)結(jié)果一致。對(duì)LcC2DP1的全長(zhǎng)蛋白序列進(jìn)行Blast比對(duì)并構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,結(jié)果顯示,LcC2DP1與蒺藜苜蓿蛋白同源性最高,為82%(圖2E),暗示C2結(jié)構(gòu)域在豆科植物中進(jìn)化較為保守。

圖2 LcC2DP1 基因分子特性Fig.2 Molecular characteristics of LcC2DP1 gene
提取百脈根LcC2DP1基因上游2 000 bp序列進(jìn)行順式作用元件分析,結(jié)果(表3)顯示,百脈根LcC2DP1基因除了含有啟動(dòng)子和增強(qiáng)子區(qū)域最基本的CAAT-box元件以外,還含有光響應(yīng)元件(Box-4、AT1-motif、GT1-motif)、轉(zhuǎn)錄起始核心啟動(dòng)子元件(TATA-box)以及干旱誘導(dǎo)相關(guān)(MBS)的多種順式作用元件。
擴(kuò)增LcC2DP1基因片段,與pSH737植物表達(dá)載體連接,雙酶切鑒定結(jié)果顯示,重組質(zhì)粒酶切后出現(xiàn)705 bp的目的基因條帶(圖3A)。GV3103農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化菌株的PCR擴(kuò)增檢測(cè)顯示,菌體中能擴(kuò)增出705 bp的LcC2DP1基因條帶(圖3B),表明植物表達(dá)載體pSHLcC2DP1和攜帶LcC2CDP1基因的工程菌構(gòu)建成功。

圖3 植物表達(dá)載體雙酶切及農(nóng)桿菌PCR電泳檢測(cè)Fig.3 The electrophoretic detection on double enzyme digestion of plant expression vector and PCR of Agrobacterium tumefaciens liquid

表 3 LcC2DP1基因的主要順式調(diào)控元件Table 3 The main cis-regulatory elements of LcC2DP1 gene
通過(guò)qRT-PCR分析LcC2DP1基因在百脈根不同組織及不定根分化期間的差異表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)相較于內(nèi)參基因UBI,LcC2DP1基因在根、莖、葉中均有表達(dá),但主要表達(dá)部位為根(1.00±0.00)和莖(7.57±0.36),在葉中表達(dá)量(0.15±0.03)最低(圖4A)。當(dāng)瞬時(shí)轉(zhuǎn)化后,LcC2DP1基因在百脈根根(相對(duì)表達(dá)量為6.51±0.32)、莖(相對(duì)表達(dá)量為9.65±0.35)、葉(相對(duì)表達(dá)量為0.34±0.06)中表達(dá)量均增加,以根中表達(dá)變化量最為顯著(P<0.01)(圖4A);不定根分化的0~9 d,野生型植株(WT)和轉(zhuǎn)LcC2DP1植株(TP)的LcC2DP1基因表達(dá)量均逐漸上升,但TP相較于WT變化顯著(P<0.05),其中3 d時(shí)為1.26±0.09,9 d時(shí)表達(dá)量最高(2.68±0.35),之后表達(dá)量下降,TP同期表達(dá)量均高于WT(圖4B)。

圖4 LcC2DP1 基因表達(dá)特異性Fig.4 LcC2DP1 gene expression specificity
采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的真空滲透法將植物表達(dá)載體pSHLcC2DP1轉(zhuǎn)化到百脈根中。GUS組織化學(xué)染色顯示,外源基因轉(zhuǎn)化后3~15 d均可觀察到百脈根葉片顯示藍(lán)色,外源基因瞬時(shí)轉(zhuǎn)化百脈根后可在葉片和根部組織有效表達(dá),隨著時(shí)間的延長(zhǎng)藍(lán)色逐漸加深,到第9天時(shí)藍(lán)色最深(圖5A),之后藍(lán)色逐漸變淺,外源基因功能鑒定可在轉(zhuǎn)化后15 d內(nèi)進(jìn)行。形態(tài)學(xué)觀察發(fā)現(xiàn)第6天時(shí)不定根形成,之后根系逐漸增多(圖5B),利用RT-PCR對(duì)轉(zhuǎn)化后9 dLcC2DP1基因轉(zhuǎn)錄情況進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)外源基因有表達(dá)(圖5C)。

圖5 不定根分化9天時(shí)的轉(zhuǎn)基因植株觀察與鑒定Fig. 5 Observation and identification of transgenic plants after adventitious root differentiation for 9 days
由圖6可見(jiàn),TP植株在第6天時(shí)觀察到不定根開(kāi)始分化,比野生型親本(WT)提前1~2 d形成根系。在第12~15天TP植株根系總根長(zhǎng)、根尖數(shù)、根體積均顯著高于WT植株。12 d時(shí)TP植株根系總根 長(zhǎng)為(4.28±0.22) cm,是WT的168%,15 d為(7.74±0.23) cm,是WT的155%(圖6A);12 d時(shí)TP植株根體積為(0.016 7±0.001 2) cm3,是WT的249%,15 d時(shí) 為(0.040 3±0.003) cm3,是WT的161%(圖6B);12 d時(shí)TP植株根尖數(shù)為(8.30±0.88) ,是WT的156%,15 d天時(shí)為(12.33±0.88),是WT的137%(圖6C)。同一時(shí)期的TP與WT的根系總表面積(圖6D)和根平均直徑(圖6E)差異不顯著。TP百脈根在總根長(zhǎng)(P<0.01)、根體積(P<0.05)和根尖數(shù)(P<0.05)上表現(xiàn)出一定的根系發(fā)育優(yōu)勢(shì),LcC2DP1基因的表達(dá)可能與百脈根的不定根發(fā)育有關(guān)。

圖6 百脈根不定根分化9~15 d期間的根系發(fā)育指標(biāo)比較Fig.6 Comparison of root development indicators of the Lotus corniculatus during 9-15 days
C2結(jié)構(gòu)域蛋白作為與鈣離子結(jié)合的一類功能型蛋白,在調(diào)控植物生長(zhǎng)發(fā)育、抗逆性以及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)方面起著重要的作用。本研究從Leo百脈根中克隆了LcC2DP1基因,序列分析發(fā)現(xiàn)該基因具有典型的C2結(jié)構(gòu)域,屬于C2域蛋白家族基因[22,27]。亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,LcC2DP1蛋白定位于細(xì)胞膜和細(xì)胞核中,符合大多數(shù)C2結(jié)構(gòu)域蛋白的亞細(xì)胞定位情況[10],這是由C2結(jié)構(gòu)域蛋白的結(jié)構(gòu)所決定的,當(dāng)C2結(jié)構(gòu)域蛋白的N端發(fā)生酰基化修飾時(shí),其棕櫚酰化位點(diǎn)可與細(xì)胞膜形成一種可逆的穩(wěn)定結(jié)合,而其豆蔻酰化位點(diǎn)則形成一種不可逆的松散結(jié)合[28]。
系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn)LcC2DP1基因與狹葉羽扇豆、蒺藜苜蓿、刺毛黧豆等豆科植物具有較高的同源性,其中與蒺藜苜蓿的同源性最高為82%,說(shuō)明LcC2DP1在豆科植物中具有較高的保守性。對(duì)該基因進(jìn)行的組織特異性表達(dá)分析表明,LcC2DP1基因在百脈根牧草的根、莖和葉片組織中均有表達(dá),但這種組織表達(dá)存在著明顯的差異,以根和莖組織中的表達(dá)量較高,而葉片中的表達(dá)量較低。馬佛明等[29]研究表明,巴西橡膠樹的C2結(jié)構(gòu)域蛋白編碼基因HbC2在被檢植物組織中均有表達(dá);但辣椒C2結(jié)構(gòu)域蛋白編碼基因CaSRC2-1Kim卻具有顯著的組織特異性,僅在根組織中表達(dá)[30]。可以看出,C2結(jié)構(gòu)域蛋白在植物生長(zhǎng)發(fā)育中有著不同的表達(dá)模式,暗示C2結(jié)構(gòu)域蛋白在植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中功能的多樣性,包括可能參與根系發(fā)育調(diào)控過(guò)程。
張?zhí)m軍等[21]研究發(fā)現(xiàn),復(fù)蘇植物旋蒴苣苔的C2CDPK蛋白基因BhC2DP1參與激素途徑調(diào)控根系發(fā)育。本研究利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時(shí)表達(dá)系統(tǒng)對(duì)LcC2DP1基因功能進(jìn)行初步分析,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)LcC2DP1基因植株的不定根分化比野生型早1~2 d,且根系總根長(zhǎng)(P<0.01)、根體積(P<0.05)、根尖數(shù)(P<0.05)均高于野生型,LcC2DP1基因表達(dá)使宿主植物產(chǎn)生一定的根系發(fā)育優(yōu)勢(shì),這加深了人們對(duì)植物C2CDPK基因功能的認(rèn)識(shí)。C2結(jié)構(gòu)域蛋白可以通過(guò)生長(zhǎng)素途徑調(diào)控根系發(fā)育[10,31],本研究中的根系發(fā)育優(yōu)勢(shì)可能與激素途徑有關(guān)。光是植物生長(zhǎng)發(fā)育的重要環(huán)境因素之一,光通過(guò)調(diào)節(jié)基因的表達(dá)和酶的活性等方式影響了植物的生長(zhǎng)發(fā)育和根系分化過(guò)程[32],LcC2DP1基因順式作用元件中含有光響應(yīng)元件Box-4、AT1-motif和GT1-motif,該基因也有可能是通過(guò)響應(yīng)或改變光的敏感性調(diào)控植株生長(zhǎng)發(fā)育,進(jìn)而影響根系分化。
本研究通過(guò)對(duì)LcC2DP1基因的克隆、生物信息學(xué)分析、組織特異性表達(dá)、瞬時(shí)表達(dá)分析,發(fā)現(xiàn)LcC2DP1基因?qū)儆贑2蛋白基因,可能參與百脈根不定根發(fā)育調(diào)控過(guò)程,在后續(xù)的研究中,將進(jìn)一步驗(yàn)證LcC2DP1是否具有鈣依賴蛋白激酶相應(yīng)的生理功能,進(jìn)行百脈根穩(wěn)定遺傳轉(zhuǎn)化和創(chuàng)制突變體植株,明確LcC2DP1基因在不定根發(fā)育過(guò)程中的生物學(xué)功能。