綠球藻多糖抗氧化和復(fù)合保鮮液對冷鮮豬肉保鮮效果研究

李 昕, 楊 月, 姜成哲

(1.吉林職業(yè)技術(shù)學(xué)院,吉林 龍井 133400;2.延邊大學(xué)農(nóng)學(xué)院,吉林 延吉 133002)

綠球藻為天然堿性供人食用的原材料,對身體健康具有極大益處,此外,綠球藻的作用還十分廣泛,不僅在食品、藥品領(lǐng)域中具有重要作用,在化妝品、保鮮制劑、廢水處理中也具有良好性能[1]。綠球藻多糖在醫(yī)療藥物研發(fā)方面,如調(diào)節(jié)免疫、降血糖血脂等已然成為熱點(diǎn)[2-3]。

綠球藻在保鮮方面具有較好的抗氧化功能,有延長保質(zhì)期的功效[4]。此外,綠球藻還能去除廢水中的重金屬離子,因?yàn)榫G球藻的細(xì)胞膜上存在一種特殊物質(zhì),經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),這種特殊的物質(zhì)就是多糖,蛋白質(zhì)中的官能團(tuán)可以與重金屬離子結(jié)合,在結(jié)合之后,就可以吸附金屬離子,綠球藻細(xì)胞膜跟其他質(zhì)膜具有高度選擇透過性,這種特性從某種程度上決定了綠球藻細(xì)胞膜能去除重金屬離子[5]。

殼聚糖(Chitosan,CTS)又稱為殼多糖、脫乙酰基甲殼素、可溶性甲殼質(zhì)、殼糖胺、幾丁聚糖等,化學(xué)名稱為2-氨基-β-1,4-葡聚糖,是由甲殼素(Chitin)經(jīng)脫乙酰作用的產(chǎn)物,也是目前生物界中發(fā)現(xiàn)的唯一的天然堿性多糖[6]。含有游離的氨基和羥基的天然高分子聚合物,具有較好的成膜性能和抑菌效果[7]。化學(xué)反應(yīng)比較強(qiáng)烈,可與多種物質(zhì)反應(yīng),因此具有更多的生物學(xué)作用,可在多領(lǐng)域中得到應(yīng)用。劉利萍等[8]利用殼聚糖降解后的肉樣進(jìn)行了涂膜,結(jié)果表明,降解后的殼聚糖比未降解的殼聚糖具有更好的抑菌作用,熟豬肉6 d仍能保持較好的顏色和香味,而且菌落總數(shù)均符合國家規(guī)定。Desvit等[9]研究表明,在室溫下,殼聚糖和稻殼煙液混合處理的肉丸對大腸桿菌的抑制范圍為6.49～7.07 mm,對沙門氏菌的抑菌圈為6.52～7.26 mm。

海藻糖是一種還原性雙糖[10],是由2個(gè)吡喃型葡萄糖單體通過α,α-1,1-糖苷鍵連接而成的雙糖[11],具有穩(wěn)定生物大分子的作用,因其優(yōu)異的穩(wěn)定性、安全性、低吸濕性被廣泛應(yīng)用于食品行業(yè)。

該研究以綠球藻為原材料,結(jié)合殼聚糖和海藻糖作為復(fù)合保鮮液對冷鮮豬肉的保鮮效果進(jìn)行研究。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

綠球藻:由延邊大學(xué)生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)。

三氟乙酸、氯化鈉、氯仿、無水乙醇、甲醇、水楊酸、過氧化氫、鄰苯三酚、過硫酸鉀、DPPH(2,2-聯(lián)苯基-1-苦基肼基)、Vc、ABTS[2 ,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽]、殼聚糖等均為分析純,購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;海藻糖,購自青島東孚美倫生物科技有限公司;冷鮮豬肉,購自億品生鮮超市。

1.2 儀器與設(shè)備

UV759紫外-可見分光光度計(jì)(上海佑科儀器儀表有限公司);K9840自動凱式定氮儀(濟(jì)南海能儀器股份有限公司);HCB-1300V潔凈工作臺(青島海爾特種電器有限公司);SHA-B恒溫振蕩器(常州國華電器有限公司);MLS-3780高壓蒸氣滅菌鍋(日本三洋電機(jī)株式會社);PHS-25數(shù)顯pH計(jì)(上海儀電儀器股份有限公司)。

1.3 方法

1.3.1 綠球藻多糖的制備

準(zhǔn)確稱取一定量的綠球藻粉→加適量的去離子水→熱水浸提→離心(3 500 r/min,15 min)→取上清→離心(3 500 r/min,15 min)→取上清用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀70 ℃下濃縮至原體積的 1/3→按3∶1體積比加入氯仿-正丁醇溶液(4∶1,體積比),沉淀蛋白2次→按體積比1:3加入85%乙醇醇沉→4 ℃過夜→離心(3 500 r/min,15 min)→沉淀冷凍干燥→綠球藻多糖[12]。

1.3.2 綠球藻多糖含量的測定

1.3.2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

準(zhǔn)確稱取0.1 g葡萄糖于100 mL燒杯中,將標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖工作液加入水中,定容到1 000 mL,分別吸取0、0.2、0.4、0.6、0.8、1 mL,將其置于20 mL具塞式玻璃試管中,各以蒸餾水補(bǔ)至1 mL。然后向試液中加入1 mL 5%苯酚溶液,然后快速加入濃硫酸5 mL(沿試管壁緩緩加入,以防混合液濺出),蓋好蓋子上下反復(fù)搖勻冷卻10 min,然后將試管放置于30 ℃水浴顯色20 min后,于490 nm測吸光度,采用蒸餾水作為空白對照,以葡萄糖為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),建立了一條標(biāo)準(zhǔn)曲線[13]。回歸方程分析如圖1所示為標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=1.024 4x+0.020 7,R2= 0.999 1。

圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

1.3.2.2 多糖提取率

采用1.3.2的方法,對所提取的綠球藻多糖的吸光值進(jìn)行測定。利用吳憲玲等[14]的公式:

式中,C為樣液中的多糖濃度,mg/g;N為樣液稀釋倍數(shù);V為提取液的總體積,mL;M為綠球藻多糖的質(zhì)量,mg。

1.3.3 抗氧化性試驗(yàn)

1.3.3.1 綠球藻多糖DPPH清除能力測定

用Nattinee等[15]方法對綠球藻多糖DPPH清除能力進(jìn)行研究。將2 mmol/L DPPH-乙醇溶液移入100 mL棕色量瓶中等待備用,避光保存(0～4 ℃),分別精密量取不同質(zhì)量濃度(1,5,10,15,20 mg/mL)的樣液以及空白樣液2 mL于具塞管中,分別接入2 mL 2 mmol/L DPPH-乙醇溶液,充分混勻后放置在黑暗環(huán)境中避光,反應(yīng)時(shí)間為30 min,在517 nm波長下對其吸光度值進(jìn)行檢測,同濃度Vc做對照,每組試驗(yàn)測量重復(fù)3次。按照下列公式計(jì)算:

清除率/%=[1-(A1-A2)/A0]×100,

式中,A1為綠球藻多糖樣品的吸光度值;A2無水乙醇代替DPPH溶液檢測吸光度值為;A0為無水乙醇代替綠球藻多糖溶液檢測吸光度值。

1.3.3.2 綠球藻多糖還原能力測定

參照黃仁術(shù)等[16]方法對綠球藻多糖的還原能力進(jìn)行測定。將2.5 mL不同質(zhì)量濃度(1,5,10,15,20 mg/mL)的樣液分別與2.5 mL 0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH值6.6)及2.5 mL鐵氰化鉀(1%)混勻,將混合物在50 ℃水浴中靜止20 min,然后加入2.5 mLTCA(10%)終止反應(yīng),3 000 r/min離心10 min,取上清液2.5 mL,依次加入2.5 mL無水乙醇和0.5 mL FeCl3(0.1%),混勻后靜置10 min,在700 nm處測定吸光度,同濃度Vc做對照,每組實(shí)驗(yàn)測量重復(fù)3次。按照下列公式計(jì)算:

還原力=A1-A2,

式中,A1為綠球藻多糖樣品的吸光度值;A2為去離子水代替樣品的混合液作為參比溶液的吸光度值。

1.3.3.3 綠球藻多糖羥自由基清除能力測定

參照劉宇琪等[17]水楊酸法進(jìn)行綠球藻多糖的羥基自由基清除能力的測定。在10 mL試管中依次加入1 mL不同質(zhì)量濃度(1,5,10,15,20 mg/mL)的樣液,加入6 mmol/L硫酸亞鐵 2 mL,6 mmol/L水楊酸2 mL,2 mL濃度為4.4 mmol/L的過氧化氫溶液,2 mL過氧化氫為起始反應(yīng),在510 nm處對吸收度進(jìn)行測定,用去離子水取代空白組。同濃度Vc做對照,重復(fù)3次。按照下列公式計(jì)算:

清除率/%=[(A0-A1)/A0]×100,

式中,A0為空白組吸光度值;A1為綠球藻多糖樣品吸光度值。

1.3.3.4 綠球藻多糖超氧陰離子自由基清除能力測定

參照華寧燁等[18]鄰苯三酚自氧化法測定綠球藻多糖清除自由基的能力,在10 mL試管中加入500 μL不同質(zhì)量濃度(0.2,0.4,0.6,0.8,1 mg/mL)的樣液,依次加入1 mL 0.1 mol/L磷酸緩沖液,pH值為8.3。加入濃度為25 mmol/L鄰苯三酚100 μL充分混勻后,在20 ℃水浴條件下放置時(shí)間為6 min(試管需加塞),隨后立即用0.5 mL濃鹽酸終止反應(yīng)。在420 nm波長下對其吸光度進(jìn)行檢測,用去離子水取代空白組,用磷酸緩沖劑替代試樣,以同等濃度Vc作為對照,每個(gè)試驗(yàn)測量3次,按照下列公式計(jì)算:

清除率/%=[1-(A0-A1)/A2]×100,

式中,A0為綠球藻多糖樣品吸光度值;A1為磷酸緩沖溶液替代樣液吸光值;A2為去離子水替代綠球藻多糖的吸光度值。

1.3.3.5 綠球藻多糖ABTS自由基清除能力測定

參照駱娟等[19]等的方法測定ABTS自由基清除率。用去離子水配制ABTS溶液(ABTS 7 mmol/L,10 mL)和過硫酸鉀溶液(2.45 mmol/L,10 mL)混合,在室溫條件下避光16 h后制成ABTS自由基溶液,使混合液在734 nm處吸光度為(0.7±0.03),備用(使用80%乙醇稀釋大概31倍得到)。配制不同質(zhì)量濃度(0.2,0.4,0.6,0.8,1 mg/mL)的樣液1 mL,再用ABTS自由基溶液3.9 mL與樣液混勻,進(jìn)行避光反應(yīng)10 min,在734 nm下測量吸收光度值。用1 mL去離子水替代空白,用相同濃度的Vc作為對照組,每個(gè)試驗(yàn)組重復(fù)測量3次。根據(jù)以下公式來計(jì)算:

清除率/%=(A0-A1)/A0]×100,

式中,A0為空白組吸光值;A1為綠球藻多糖樣品吸光度值。

1.3.4 復(fù)合保鮮處理

使用3 mL復(fù)合保鮮劑[20](前期通過單一保鮮液單因素試驗(yàn)及響應(yīng)面試驗(yàn)最終確定配方比例為:綠球藻多糖1.50%、殼聚糖1.10%、海藻糖0.95%),用無菌一次性手套將試液涂布均勻,11.5 cm×7.5 cm×4.5 cm的透明一次性保鮮盒內(nèi),標(biāo)注,置于4 ℃冰箱內(nèi)冷藏。

1.3.5 指標(biāo)測定

1.3.5.1 菌落總數(shù)的測定

按照《食品微生物學(xué)檢驗(yàn)菌落總數(shù)測定》(GB4789.2-2016)對其進(jìn)行了檢測。無菌操作稱取樣品5 g,用滅菌剪刀剪碎,放入裝有90 mL 0.85%無菌生理鹽水錐形瓶中,封口后搖床振搖3 min,然后取1 mL上清液,進(jìn)行10倍遞增稀釋,選擇合適的稀釋度,傾注平板,倒入PCA培養(yǎng)基,在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中恒溫培養(yǎng)48 h后計(jì)數(shù)。

1.3.5.2 揮發(fā)性鹽基氮值(TVB-N)的測定

采用半微量定氮法,按 GB5009.228-2016 《食品中揮發(fā)性鹽基氮的測定》進(jìn)行研究。取5 g肉切碎攪勻,置于錐形瓶中,加100 mL水,不停震搖,浸漬30 min后過濾,濾液置冰箱備用。預(yù)先將盛有10 mL 2%硼酸吸收液并加有5～6滴混合指示液的錐形瓶置于冷凝管下端,并使其下端插入錐形瓶內(nèi)吸收液的液面下,吸取5.0 mL上述樣品濾液于蒸餾器反應(yīng)室內(nèi),加5 mL 1%MgO混懸液,迅速蓋塞,并加水以防漏氣,通入蒸氣,待蒸氣充滿蒸餾器內(nèi)時(shí)關(guān)閉蒸氣出口管,由冷凝管出現(xiàn)第1滴冷凝水開始計(jì)時(shí),蒸餾5 min即停止,吸收液用0.01 mol/L鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度來進(jìn)行滴定,終點(diǎn)至藍(lán)紫色。同時(shí)做試劑空白試驗(yàn)。

1.3.5.3 pH值的測定

采用《食品pH的測定》(GB5009.237-2016)對其進(jìn)行了檢測。用pH值直測儀測定pH值,在測定前首先需要對設(shè)備進(jìn)行校準(zhǔn),然后把其插入到肉樣中進(jìn)行pH值檢測,需要讓探頭插入肌肉中,深度為2 cm左右,待數(shù)值穩(wěn)定之后,對顯示的數(shù)值進(jìn)行讀取。平行3次減少試驗(yàn)誤差。

1.3.5.4 汁液流失率的測定

參照張俐勤等[21]方法,準(zhǔn)確稱量樣品貯藏前質(zhì)量M1,每次對肉樣進(jìn)行稱量的時(shí)候,將汁液吸干,貯藏后質(zhì)量為M2。

汁液流失率/%=(M1-M2)/M1×100.

1.3.5.5 感官評價(jià)

抽取10名感官評定人員,讓其評價(jià)肉湯、肉樣的色澤等。參照楊春婷等[22]的感官評定方法,采用0～4 ℃冷鮮豬肉進(jìn)行感官評定。評價(jià)的標(biāo)準(zhǔn)見表1,8～10分較好,6～8分中等,4～6分為差,低于2分為已經(jīng)變質(zhì)。

表1 感官評價(jià)表

1.4 數(shù)據(jù)分析

采用SPSS20.0對數(shù)據(jù)的顯著性進(jìn)行分析(P<0.05),采用Origin 2018繪作制圖。每組試驗(yàn)重復(fù)3次取平均值。

2 結(jié)果與分析

2.1 綠球藻多糖對抗氧化指標(biāo)的影響

2.1.1 綠球藻多糖對DPPH清除能力的影響

由圖2可以看出,隨著質(zhì)量濃度的提高2個(gè)試驗(yàn)組的DPPH清除率也跟著提高,濃度為1 mg/mL時(shí), 綠球藻多糖和Vc的DPPH自由基清除率分別為17.20%和100%,當(dāng)濃度為15 mg/mL時(shí),綠球藻多糖達(dá)到56.93%,當(dāng)濃度為20 mg/mL時(shí),綠球藻多糖的DPPH自由基清除率達(dá)到98.69%。

圖2 綠球藻多糖DPPH自由基清除率

2.1.2 綠球藻多糖對還原能力的影響

由圖3可知,綠球藻多糖的還原能力隨濃度的增大而增大。

圖3 綠球藻多糖還原能力

Vc對照組的還原力一直優(yōu)于綠球藻多糖組。當(dāng)濃度為1 mg/mL時(shí), 綠球藻多糖還原力為0.07,Vc還原能力為0.72,當(dāng)濃度達(dá)到20 mg/mL時(shí),綠球藻多糖的還原能力達(dá)到0.64,對照的還原能力達(dá)到1.17,雖然沒有Vc組的還原能力強(qiáng),但結(jié)果表明,綠球藻多糖組具有一定的抗氧化能力。

2.1.3 綠球藻多糖對羥自由基清除率的影響

由圖4可知,隨著質(zhì)量濃度的上升,2個(gè)試驗(yàn)組的羥自由基清除率都呈現(xiàn)上升的趨勢,當(dāng)濃度達(dá)到1 mg/mL時(shí),試驗(yàn)組與Vc對照組清除率差別不大,綠球藻多糖清除率為21.80%,Vc清除率為22.54%,但當(dāng)濃度達(dá)到5 mg/mL時(shí),試驗(yàn)組的清除率明顯高于對照組,羥基自由基清除率分別為64.99%和 29.25%,這說明綠球藻多糖羥自由基清除效果非常顯著。

圖4 綠球藻多糖羥自由基清除率

2.1.4 綠球藻多糖對超氧陰離子自由基清除能力的影響

由圖5可知,當(dāng)綠球藻多糖和Vc對照組濃度為1 mg/mL時(shí),2組都達(dá)到最高清除率,分別是90.15%和100%,從試驗(yàn)結(jié)果可以看出,實(shí)驗(yàn)室自養(yǎng)綠球藻多糖的超氧陰離子的清除效果較好。

圖5 綠球藻多糖超氧陰離子自由基清除率

2.1.5 綠球藻多糖對ABTS自由基清除能力的影響

由圖6可知,隨著濃度的升高,綠球藻多糖與對照組Vc的清除能力都在增強(qiáng),但很明顯綠球藻多糖組效果要顯著低于Vc組(P<0.05)。當(dāng)濃度達(dá)到1 mg/mL時(shí),綠球藻多糖與陽性對照組ABTS 自由基清除率分別可達(dá)80.10%和100.00%。盡管其清除效果遠(yuǎn)不及 Vc,但仍顯示出綠球藻多糖抗氧化性。

圖6 綠球藻多糖ABTS自由基清除率

2.2 復(fù)合保鮮液對保鮮效果的影響

2.2.1 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉菌落總數(shù)的影響

由圖7可知,冷鮮肉菌落總數(shù)隨貯存時(shí)間的延長顯著性增加(P<0.05),冷鮮肉0 d時(shí)菌落總數(shù)為(2.50±0.17) CFU/g,第6天對照組的菌落總數(shù)為(6.12±0.11) CFU/g,此時(shí)冷鮮肉已腐敗變質(zhì),而綠球藻多糖處理組和復(fù)合處理組的菌落總數(shù)分別為(5.24±0.07) CFU/g和(5.01±0.12) CFU/g,顯著低于對照組(P<0.05),且在冷鮮肉國標(biāo)范圍內(nèi)。

圖7 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉菌落總數(shù)的影響

但第10天復(fù)合保鮮處理組的菌落總數(shù)仍在鮮肉范圍內(nèi),對照組、綠球藻多糖處理組和復(fù)合處理組的菌落總數(shù)分別為(7.50±0.04)、(5.69±0.05)和(5.34±0.04)CFU/g,表明復(fù)合保鮮劑比單獨(dú)使用綠球藻多糖具有更好的保鮮作用,復(fù)合處理組與單一試驗(yàn)組有顯著性差異(P<0.05)。

2.2.2 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉TVB-N值的影響

由圖8可知,相對于對照組而言,綠球藻多糖和復(fù)合處理組的TVB-N值逐漸升高,對照組0 d時(shí)TVB-N值為(5.60±0.06) mg/100 g,第6天為(15.08±0.05) mg/100 g,超過國家標(biāo)準(zhǔn),第10天對照組、綠球藻多糖處理組和復(fù)合處理組的TVB-N值分別為(23.90±0.13) mg/100 g、(13.20±0.11) mg/100 g和(10.50±0.07) mg/100 g,對照組超過國家標(biāo)準(zhǔn),而復(fù)合涂膜處理的冷鮮肉仍然在新鮮肉類范圍之內(nèi),復(fù)合處理組的TVB-N值顯著低于其他組(P<0.05),說明復(fù)合保鮮劑的保鮮效果顯著優(yōu)于綠球藻多糖試驗(yàn)組。

圖8 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉TVB-N值的影響

2.2.3 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉pH值的影響

由圖9可知,對照組的 pH值在0～10 d隨冷藏時(shí)間的延長,從0 d的(5.50±0.54)上升至第10天的(6.58±0.11),相對于對照組而言,綠球藻多糖處理組和復(fù)合處理組的pH值增加緩慢,說明綠球藻多糖和復(fù)合處理組在一定程度上抑制冷鮮肉的 pH值升高。

圖9 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉pH值的影響

2.2.4 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉汁液損失率值的影響

由圖10可知,冷鮮肉在2～6 d 的汁液流失率增長較慢,6～10 d 時(shí),汁液損失率明顯低對照組(P<0.05), 6～8 d對照組的汁液流失率有顯著性提高。綠球藻多糖和復(fù)合處理組的汁液流失率顯著低于對照組(P<0.05),第10天對照組、綠球藻多糖和復(fù)合處理組的汁液流失率值分別為(10.60±0.08)%、(7.91±0.02)%和(7.71±0.10)%。

圖10 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉汁液流失率的影響

2.2.5 復(fù)合保鮮液對冷鮮肉感官評價(jià)的影響

此感官評價(jià)參照劉渝港等[23]的方法進(jìn)行,感官評價(jià)人員在色澤、氣味、組織形態(tài)、黏性等方面對各試驗(yàn)組進(jìn)行評分(表2)。

表2 感官評價(jià)分?jǐn)?shù)結(jié)果

由表2可知,復(fù)合組各方面結(jié)果為最優(yōu)組,試驗(yàn)過程中,2 d時(shí)所有組整體差異性不顯著,綠球藻多糖處理組在8 d時(shí)開始出現(xiàn)和對照組6 d時(shí)一樣的情況,開始出現(xiàn)異味,黏性增加且生肉表面呈現(xiàn)暗紅色,肉湯較渾濁,雜質(zhì)多,空白組在8 d時(shí)明顯異味,組織黏性大,肉湯渾濁,雜質(zhì)多,10 d實(shí)驗(yàn)結(jié)束,復(fù)合處理組與其他單一試驗(yàn)組有顯著性差異(P<0.05),說明復(fù)合處理組感官綜合評價(jià)最好。

3 討論與結(jié)論

綠球藻多糖具有較好的抗氧化活性,在20 mg/mL濃度下羥自由基清除能力達(dá)到98.00%;還原能力為0.64;DPPH自由基清除率達(dá)到98.69%,孫建瑞等[24]在60 mg/mL條件下,小球藻多糖清除率接近43.00%,綠球藻多糖對DPPH的清除能力強(qiáng)于小球藻多糖。當(dāng)濃度為1 mg/mL時(shí),超氧陰離子自由基清除率達(dá)到90.15%;在相同最高濃度1 mg/mL試驗(yàn)下,李旭東[25]綠球藻多糖和史瑞琴等[26]小球藻多糖口服液的超氧陰離子的清除分別是42.00%和20.00%,在相同試樣濃度下,該試驗(yàn)研究的對超氧陰離子的清除能力優(yōu)于上述2位試驗(yàn)結(jié)果50.00%左右,說明實(shí)驗(yàn)室自養(yǎng)綠球藻多糖的清除率與同類微藻類超氧陰離子的清除能力高很多,效果較好。當(dāng)濃度為1 mg/mL時(shí),ABTS自由基清除率達(dá)到80.10%,這與孫佳玉等[27]研究的金線蓮不同植物材料提取物抗氧化能力結(jié)果一致,當(dāng)組培苗提取物濃度達(dá)到4 mg/mL時(shí),ABTS清除率為59.09%,說明綠球藻多糖ABTS自由基清除效果較好。

孫彥峰等[28]將綠球藻多糖與殼聚糖混合,制成了一種可食用的生物活性薄膜,結(jié)果表明,綠球藻多糖具有良好的自然活性成分,可以在一定程度上與殼聚糖結(jié)合,從而形成一種具有良好結(jié)構(gòu)的包裝薄膜。可見綠球藻多糖可望成為天然的抗氧化劑,試驗(yàn)結(jié)果說明,經(jīng)復(fù)合保鮮液處理過的冷鮮肉第10天時(shí)菌落總數(shù)為(5.34±0.04)CFU/g,TVB-N值為(10.50±0.07) mg/100 g,pH值為(6.10±0.06),汁液損失率為(7.71±0.10)%,感官評分值(除第2天外)均顯著低于對照組 (P<0.05),仍處于鮮肉標(biāo)準(zhǔn)范圍,可將冷鮮肉的貨架期延長至第10天。