魯進恒 東瑩瑩 袁 謙 范志業 張中州 吳 浩 王秋嶺
(1.漯河市農業科學院 河南漯河 462000;2.河南省修武縣農業技術推廣中心 河南修武 454350)
馬鈴薯是一種重要的糧菜兼用農作物, 因其營養全面,產品開發鏈長,有著巨大的市場需求。 隨著我國農業產業結構調整和馬鈴薯主糧化加速,其種植區分布逐漸趨于合理[1],產品也實現了周年化供給[2],整個產業呈現穩步向好的局面。
早疫病是馬鈴薯生產上僅次于晚疫病的第2 大病害,近年來,國內的發病狀況呈逐漸加重的趨勢[3]。該病可影響植株葉片、莖稈及塊莖的生長,顯著降低馬鈴薯的產量和品質,嚴重時減產可達39%[4]。 關于早疫病的研究,在各種植區皆有大量的報道,張建平等[5]研究了關于馬鈴薯早疫病孢子傳播方式、病害發生規律及其與氣象因子的關系,谷青等[6]報道了北方一作區馬鈴薯早疫病病菌不同地理群體的遺傳結構,吳志會等[7]篩選出了適合冀東地區防治馬鈴薯早疫病的藥劑,何凱等[8]明確了重慶地區的馬鈴薯早疫病致病菌種類及其生物學特性,趙雨佳等[9]篩選了適合重慶地區防治馬鈴薯早疫病的藥劑。
豫中地區作為國家重要的糧食和蔬菜生產基地,馬鈴薯的播種面積在逐年增加,早疫病幾乎連年發生。 但本地區關于早疫病的研究較少,致病菌種類尚未明確,缺乏有針對性的防治方法。 為此,本研究通過組織分離法對豫中5 地的馬鈴薯早疫病的病原菌進行分離純化, 采用形態學的方法進行了菌株鑒定,并用室內毒力測定法篩選出了防治藥劑,為有針對性地開展馬鈴薯早疫病的防治提供科學依據。
供試材料:于2022 年4-6 月,采集漯河、南陽、開封、周口、駐馬店豫中5 地市的馬鈴薯患病葉片。
供試藥劑:75%百菌清可濕性粉劑,由先正達(蘇州) 作物保護有限公司生產, 商品名稱為好迪施;500 g/L 氟啶胺懸浮劑, 由日本石原產業株式會社生產,商品名稱為福帥得;70%丙森鋅可濕性粉劑,由拜耳作物科學(中國)有限公司生產,商品名稱為安泰生;50%啶酰菌胺可濕性粉劑,由巴斯夫(中國)有限公司生產, 商品名稱凱澤;250 g/L 嘧菌酯懸浮劑,由先正達(南通)作物保護有限公司生產,商品名稱為阿米西達。
1.2.1 病原菌的分離與純化 采用組織分離法對病葉進行病原菌分離。 用無菌水反復沖洗病葉,剪取葉片病健交界處2~3 mm2組織塊,75%乙醇溶液處理3~4 s,0.1%氯化汞消毒15~20 s, 取出后用無菌水反復沖洗3~5 遍,晾干置于PDA 平板上,在26℃的培養箱中黑暗培養,48 h 后挑取菌落邊緣的菌絲進行純化, 在26℃下培養5 d 后對純化菌落再次進行單孢純化[10],獲得純化菌株后保存于PDA 斜面上,置于4℃冰箱保存備用。
1.2.2 致病性測定 采用菌絲塊接種法進行致病性測定[11]。 取葉齡大小一致的離體健康馬鈴薯葉片,用無菌水沖洗1~2 遍,用75%乙醇表面消毒1 min 后,用無菌水沖洗2~3 遍,置于培養皿中備用,皿底鋪無菌紗布保濕。先將已分離菌株在PDA 上活化,后用直徑為5 mm 的打孔器在菌落邊緣打取菌餅,并用滅菌后的接種針對葉片作刺傷處理, 將菌餅接種到傷口處。 以無菌PDA 塊作為對照,置于26℃光照培養箱培養(光周期12L∶12D),每24 h 觀察1 次。 待發病后再次從病斑處分離病原菌, 并與首次分離的病原菌作對比。
1.2.3 形態學鑒定 將純化后的病原菌菌株在PDA培養基上26℃光照培養7 d,觀察并描述菌落形態及顏色、 培養基質顏色和分生孢子形態, 作為鑒定的主要依據。參照張天宇[12]的真菌鑒定方法進行形態學鑒定。
1.2.4 殺菌劑室內毒力測定 采用菌絲生長速率法測定5 種殺菌劑對病原菌菌絲生長的抑制效果[13]。用無菌水將殺菌劑配制成母液, 每種殺菌劑按有效成分稀釋成5 個濃度梯度, 將不同濃度的殺菌劑加入PDA 中制成含藥平板, 以不加殺菌劑的PDA 為對照,每個濃度設4 次重復(表1)。 先將儲存的病原菌接種到PDA 上進行活化,在26℃的培養箱中黑暗培養5 d 后, 用5 mm 打孔器在菌落邊緣打取菌餅,并分別接到制備好的含藥PDA 平板和對照PDA 平板上,在26℃下黑暗培養7 d,用十字交叉法測量菌落直徑。

表1 5 種殺菌劑的濃度梯度
計算殺菌劑對菌絲生長的相對抑制率,抑制率=[對照菌落直徑-處理菌落直徑/(對照菌落直徑-0.5)]×100%。 將抑菌率換算成生物統計概率值(y),殺菌劑濃度換算成以10 為底的對數(x),根據濃度對數與概率值回歸法,做毒力回歸方程,計算5 種殺菌劑的抑制中濃度(EC50)及95%置信區間。利用DPS軟件進行數據分析。
通過對5 地采集的32 份患病葉片的組織分離,剔除雜菌,單孢純化后共得到93 份純化菌株。 其中培養基呈褐色的共64 株,培養基呈黃色或紅褐色共29 株,二者大致比例為7∶3。 在顯微鏡下觀察,64 株褐色菌株的菌絲形態基本一致,判定為同一種菌株,標記為A;29 株黃色菌株的菌絲和孢子形態也基本一致,判定為同一種致病菌,標記為B(圖1)。

圖1 病原菌菌落形態和孢子形態
將分離純化的2 種菌株活化培養5 d 后,分別取菌落邊緣的菌絲塊接種在健康的刺傷馬鈴薯葉片上,在光周期12 L∶12D 下26℃保濕培養4 d 發現,接種葉片與田間患病葉片癥狀基本相同, 應為兩者復合感染, 其中B 菌株接種后的葉片具有黑色較小的輪紋狀病斑,而A 則以褐色干枯為主(圖2)。 將接種發病的病斑分別進行再次分離, 獲得的病原菌與田間分離的病原菌一致。 依據柯赫氏法則,確定分離獲得的2 種菌株均為早疫病致病菌。

圖2 馬鈴薯早疫病田間癥狀及回接后的發病癥狀
將2 種菌株分別接種在PDA 平板上,置于26℃下黑暗培養7 d,可形成圓形或近圓形菌落。 A 菌株的菌落為圓形(圖1A 菌落),菌絲初期為白色或灰白色,后轉為暗褐色,氣生菌絲發達。 后期培養基為黑褐色,說明菌絲可產生黑色色素。 分生孢子頂生,形態差異較大,有橢球形、倒棒狀或手雷形(圖1A 孢子),大小為(15~43)μm×(8~9)μm,有短喙,多數有隔膜,橫膈1~7 個,縱膈0~4 個。 B 菌株的菌落呈圓形或不規則橢圓形(圖1B 菌落)菌絲早期為白色,后轉為褐色,氣生菌絲不發達,能產生黃褐色色素,后期培養基呈黃色或磚紅色。孢子為倒棒狀(圖1B 孢子),量少,大小為(70~150)μm×(6~18)μm,有長喙,喙與孢身等長或略長,孢子有橫膈8~15 個,縱膈4~7 個。根據《中國真菌志》的記述,結合致病性鑒定,判定A 為鏈格孢、B 為茄鏈格孢。
由表2 可知,5 種藥劑對2 種菌株均有一定的抑制作用。 其中5 種藥劑對鏈格孢的EC50在3.262 7~13.457 4 mg/L; 啶酰菌胺的抑制效果最好,EC50為3.262 7 mg/L;嘧菌酯效果次之,EC50為3.480 2 mg/L,百菌清效果最差,EC50為13.457 4 mg/L。 5 種藥劑對茄鏈格孢的EC50在1.155 3~9.507 0 mg/L;嘧菌酯的抑制效果最好,EC50為1.155 3 mg/L;啶酰菌胺次之,EC50為1.951 2 mg/L,居于末位的依然是百菌清,EC50為9.507 0 mg/L。

表2 5 種殺菌劑對2 種病原菌的抑制作(單位:mg/L)
早疫病是馬鈴薯生產上的主要病害, 可在葉片上引起黑色輪紋狀病斑, 嚴重時導致大量葉片過早枯萎,此病害在豫中地區幾乎連年發生,嚴重制約馬鈴薯產業的健康發展。 本研究通過形態學的方法,將該地馬鈴薯早疫病致病菌確定為鏈格孢和茄鏈格孢,并明確了二者的比例為7∶3。
鏈格孢可致馬鈴薯早疫病的報道最早見于1984 年[14],其 后Boiteux L S 等[15]對 其 致 病性 進 行 了更深入的闡述。 據Lourenco V 等報道茄鏈格孢為早疫病致病菌的優勢菌株[16],而Kapsa J[17]和張福光[18]則分別比較了A. solani和A. alternata的致病性, 結果表明二者都可單獨致病。 但本試驗表明,在豫中地區馬鈴薯田A. alternata和A. solani的比例為7∶3,從數量上說,A. alternata為本地區的優勢菌株。
據已發表的報道來看, 除本試驗分離出的2 種致病菌外,尚有多種病原可致馬鈴薯早疫病。2009 年,Ardestani S T 報道在伊朗A. interrupta可導致馬鈴薯早疫病[19], Rodrigues T T 報道了在巴西A. grandis也可導致馬鈴薯早疫病[20], 2013 年鄭慧慧等總括報道了致馬鈴薯早疫病的病原菌可達8 種之多[21]。大量研究表明,在不同地域或生態條件下,馬鈴薯早疫病的致病菌存在著差異。 多種病原引起同一種病害,客觀上為早疫病的防治帶來了困難。
為了有針對性地防治豫中地區的馬鈴薯早疫病,本試驗選取了5 種常用殺菌劑,對分離出的2 種致病菌進行了毒力測定。 結果表明,對鏈格孢抑制效果最好的是啶酰菌胺,嘧菌酯次之;對茄鏈格孢抑制效果最好的是嘧菌酯,啶酰菌胺次之。 啶酰菌胺是一種線粒體呼吸鏈抑制劑,通過抑制線粒體琥珀酸酯脫氫酶活性,阻礙三羧酸循環,進而阻礙ATP 合成[22],干擾能量傳遞,致菌體死亡;而嘧菌酯為一種內吸性殺菌劑,兼具保護和治療作用,其作用機制是通過阻止特定細胞色素, 導致線粒體電子傳遞受到抑制以干擾能量傳遞[23],使細胞致死。 這2 種殺菌劑都具有廣譜、高效的特點,且都對人體安全,易于消解[24-26],建議這2 種藥交替使用,以減緩病原抗藥性。