吳俊波 楊杰 肖鋒 李金亮
(1.萍鄉(xiāng)市第二人民醫(yī)院,萍鄉(xiāng) 337000; 2.萍鄉(xiāng)市第三人民醫(yī)院,萍鄉(xiāng) 337099)
腦出血多見于中老年人,其病因復(fù)雜,可由高血壓、情緒起伏大等因素引起[1-2]。腦出血病情發(fā)展迅速,血管破裂后,出血灶血液壓迫周圍腦組織,并發(fā)腦水腫、腦移位、腦疝等,治療不及時會造成半身不遂、身體麻痹、癡呆等后遺癥[3-5]。目前腦出血后炎癥損傷是臨床研究熱點。腦出血發(fā)生后,病灶附近小膠質(zhì)細(xì)胞被激活,引發(fā)炎癥反應(yīng),TLR4作為模式識別受體在小膠質(zhì)細(xì)胞中表達(dá),參與機(jī)體免疫及炎癥反應(yīng),TLR4被激活后促進(jìn)炎癥因子過表達(dá)[6]。NF-κB位于TLR4下游,被激活后加重炎癥反應(yīng),不利于改善腦出血后繼發(fā)性損傷[7]。研究表明,大鼠腦缺血再灌注后伴有腦組織TLR4、NF-κB陽性表達(dá)增加[8]。目前研究指出,miRNAs可減輕腦缺血動物模型炎癥反應(yīng),減少神經(jīng)元細(xì)胞凋亡[9]。研究還指出,miR-146a通過調(diào)控其相關(guān)靶基因發(fā)揮抗炎作用,通過抑制靶基因水平緩解炎癥反應(yīng)[10]。本研究旨在探索miR-146a對腦出血模型大鼠神經(jīng)功能及炎癥因子的影響并研究其作用機(jī)制。
1.1 材料 清潔級成年SD雄性大鼠,12周齡,體質(zhì)量220~250 g,于鼠籠中飼料喂養(yǎng),飲水自由,光照充足,室溫20~25 ℃,相對濕度45%~55%(倫理批號:ACU20-396)。
1.2 方法
1.2.1 實驗分組及腦出血模型大鼠構(gòu)建 選取40只大鼠,隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型組、過表達(dá)miR-146a腺病毒注射組(腺病毒組)及陰性病毒注射組(陰性病毒組),每組10只。腹腔注射10%水合氯醛麻醉大鼠,右側(cè)股動脈采血,將大鼠俯臥位固定,切開皮膚,暴露前囟,微量注射器于前囟前0.2 mm、右側(cè)中線旁開3.0 mm、冠狀縫前0.2 mm鉆孔,孔直徑3.0 mm;翻轉(zhuǎn)分離尾動脈,微量進(jìn)樣器穿刺抽血50 μl,50 μl自體血于5 min內(nèi)勻速注射,留針15 min緩慢退出,無菌骨臘封閉顱骨小孔。假手術(shù)組步驟相同,注射等量生理鹽水。過表達(dá)miR-146a腺病毒注射組取3×1013U/ml病毒滴度腺病毒50 μl,與自體血一次性注射至基底節(jié)部位。
1.2.2 大鼠神經(jīng)功能評分 Garcia評分包括體態(tài)對稱性、自主運動狀況、前肢伸展運動能力、網(wǎng)屏實驗、本體感覺、兩側(cè)的觸須反應(yīng)、兩側(cè)身體的觸覺反應(yīng)等[11],總分3~18分,分?jǐn)?shù)越低,神經(jīng)功能越差。
1.2.3 大鼠血腫周圍病理組織改變 0.35 ml/100 g 1%水合氯醛麻醉后處死大鼠,解剖大鼠血腫周圍(2.0~3.0 mm)腦組織于4%多聚甲醛固定48 h,脫鈣,石蠟包埋,制成切片,厚度5 μm,脫蠟,梯度乙醇水洗后復(fù)染,沖洗,0.5%鹽酸乙醇分化3 s,沖洗,復(fù)染,95%乙醇脫水2 min,重復(fù),二甲苯透明5 min,重復(fù),中性樹膠封片。
1.2.4 大鼠炎癥因子表達(dá) 取大鼠腦組織,添加RIPA裂解液(1 ml/100 mg)勻漿,1 000 r/min離心20 min,留上清,ELISA檢測IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α表達(dá),操作步驟嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行。
1.2.5 大鼠腦組織TLR4、NF-κB蛋白表達(dá) 取留存大鼠腦組織,添加RIPA裂解液(1 ml/100 mg)勻漿,收集腦組織總蛋白,BCA試劑盒檢測蛋白濃度,取30 μl處理后的蛋白樣品,SDS-PAGE電泳,PVDF轉(zhuǎn)膜,以GAPDH為內(nèi)參。配制5%脫脂奶粉封閉液,添加TLR4、NF-κB一抗4 ℃孵育過夜,室溫孵育二抗2 h,ECL顯色,計算和分析蛋白相對灰度值。
1.2.6 大鼠腦組織TLR4、NF-κB mRNA表達(dá) 取5.0 mm3大鼠腦組織研磨,添加Trizol(50 mg/ml)裂解細(xì)胞,提取總RNA,加入Trizol與樣品(3∶1),混勻,靜置5 min,加入200 μl氯仿,靜置,離心,取上層RNA,加入異丙醇,靜置,離心,留沉淀,加入75%無水乙醇離心,棄上清,室溫干燥RNA 10 min,加DEPC水溶解RNA,測定RNA濃度及純度。取1 μg總RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,得到cDNA進(jìn)行實時熒光定量PCR,以GAPDH為內(nèi)參,2-ΔΔCt計算目的基因表達(dá)。引物序列見表1。

表1 引物序列Tab.1 Primer sequences
1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS21.0軟件分析數(shù)據(jù),計量資料以記錄,組間比較采用單因素方差分析及LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 各組大鼠神經(jīng)功能評分比較 與假手術(shù)組相比,模型組、腺病毒組、陰性病毒組大鼠神經(jīng)功能評分降低(P<0.05);與模型組相比,腺病毒組大鼠神經(jīng)功能評分升高(P<0.05),陰性病毒組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,表2)。
表2 神經(jīng)功能評分(,n=10)Tab.2 Neurological function scores (,n=10)

表2 神經(jīng)功能評分(,n=10)Tab.2 Neurological function scores (,n=10)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group.
Neurological function score/score 16.10±1.20 6.80±0.631)12.50±1.582)6.60±0.70 177.677 0.000 Groups Control Model Adenovirus Negative virus F P
2.2 各組大鼠血腫周圍病理組織改變 假手術(shù)組大鼠腦組織細(xì)胞形態(tài)結(jié)構(gòu)完整,排列整齊,無水腫及炎癥細(xì)胞浸潤;模型組大鼠腦組織細(xì)胞形態(tài)異常,間隙增大,部分神經(jīng)細(xì)胞壞死,出現(xiàn)水腫及炎癥細(xì)胞浸潤;腺病毒組大鼠腦組織水腫范圍變小、程度減輕,炎癥細(xì)胞浸潤減輕,細(xì)胞周圍間隙變小;陰性病毒組腫脹程度仍較明顯,可見明顯炎癥浸潤(圖1)。

圖1 血腫周圍病理組織改變Fig.1 Pathological changes around hematoma
2.3 各組大鼠炎癥因子表達(dá) 與假手術(shù)組相比,模型組大鼠炎癥因子水平均升高(P<0.05);與模型組相比,腺病毒組大鼠炎癥因子水平均下降(P<0.05,表3)。
表3 各組大鼠IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α表達(dá)(,n=10,pg/ml)Tab.3 Expressions of IL-1β, IL-6, IL-8 and TNF-α of rats in each group (,n=10,pg/ml)

表3 各組大鼠IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α表達(dá)(,n=10,pg/ml)Tab.3 Expressions of IL-1β, IL-6, IL-8 and TNF-α of rats in each group (,n=10,pg/ml)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group.
TNF-α 4.58±0.20 9.26±0.981)5.47±0.282)8.81±0.87 120.943 0.000 Groups Control Model Adenovirus Negative virus F P IL-1β 3.82±0.25 14.69±1.551)4.91±0.332)13.88±1.41 289.817 0.000 IL-6 2.96±0.23 9.44±1.401)3.55±0.382)8.96±1.22 129.884 0.000 IL-8 1.06±0.05 2.63±0.151)1.33±0.062)2.43±0.10 632.311 0.000
2.4 各組大鼠腦組織TLR4、NF-κB蛋白表達(dá) 與假手術(shù)組相比,模型組大鼠TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)均增加(P<0.05);與模型組相比,腺病毒組大鼠TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)均下降(P<0.05),陰性病毒組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖2、表4)。

圖2 各組大鼠腦組織TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)Fig.2 Expressions of TLR4 and NF-κB proteins in brain tissues of rats in each group
表4 各組大鼠腦組織TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)(,n=10)Tab.4 Expressions of TLR4 and NF-κB proteins of rat brain tissues in each group (,n=10)

表4 各組大鼠腦組織TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)(,n=10)Tab.4 Expressions of TLR4 and NF-κB proteins of rat brain tissues in each group (,n=10)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group.
NF-κB 0.48±0.17 1.03±0.341)0.53±0.202)0.99±0.30 12.611 0.000 Groups Control Model Adenovirus Negative virus F P TLR4 0.21±0.09 0.69±0.181)0.23±0.102)0.58±0.15 33.593 0.000
2.5 大鼠腦組織TLR4、NF-κB mRNA表達(dá) 與假手術(shù)組相比,模型組大鼠TLR4、NF-κB mRNA表達(dá)均增加(P<0.05);與模型組相比,腺病毒組大鼠TLR4、NF-κB mRNA表達(dá)均下降(P<0.05),陰性病毒組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,表5)。
表5 大鼠腦組織TLR4、NF-κB mRNA表達(dá)(,n=10)Tab.5 mRNA expressions of TLR4 and NF-κB in rat brain tissues (,n=10)

表5 大鼠腦組織TLR4、NF-κB mRNA表達(dá)(,n=10)Tab.5 mRNA expressions of TLR4 and NF-κB in rat brain tissues (,n=10)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group.
NF-κB 1.06±0.11 1.88±0.361)1.08±0.142)1.85±0.30 33.508 0.000 Groups Control Model Adenovirus Negative virus F P TLR4 1.15±0.10 2.24±0.481)1.23±0.142)2.01±0.45 26.246 0.000
腦出血患者顱內(nèi)血腫部分易壓迫周圍完好腦組織,給腦細(xì)胞帶來嚴(yán)重?fù)p害,患者可能出現(xiàn)半身不遂、身體麻痹、癡呆等后遺癥,具有較高的致殘率和病死率,給患者及其家庭帶來較大負(fù)擔(dān)[12]。研究指出,腦出血患者紅細(xì)胞裂解、炎癥反應(yīng)增加,一定程度增加腦水腫發(fā)生風(fēng)險,給患者造成更嚴(yán)重?fù)p害,從而引起患者預(yù)后不良[13]。腦出血患者血腫部分炎癥反應(yīng)是預(yù)后的重要影響因素,也是現(xiàn)階段臨床研究熱點。腦出血炎癥反應(yīng)與信號通路、基因表達(dá)、炎癥因子水平等相關(guān),作用機(jī)制復(fù)雜。研究表明,NF-κB信號通路參與腦出血患者腦組織炎癥反應(yīng)發(fā)生發(fā)展,NF-κB可與相對應(yīng)靶基因相結(jié)合,調(diào)控其表達(dá),在對應(yīng)mRNA作用下,調(diào)控Th1、Th2相關(guān)炎癥因子水平,影響炎癥反應(yīng)進(jìn)程[14]。miRNAs也與腦出血發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),其中,過表達(dá)miR-146a可降低腦出血后炎癥介質(zhì)水平,如IL-6、IL-8等,減輕腦出血后炎癥反應(yīng),減少細(xì)胞死亡,保護(hù)神經(jīng)[15]。本研究旨在探索miR-146a對腦出血模型大鼠神經(jīng)功能及炎癥因子的影響并研究其作用機(jī)制。
miR-146a在機(jī)體病毒入侵、免疫紊亂、炎癥反應(yīng)中具有重要作用。miR-146a調(diào)控對應(yīng)靶基因影響相關(guān)因子表達(dá),活化IRAK1及TNF受體相關(guān)因子TRAF6,使NF-κB移位入核,促進(jìn)炎癥因子激活,呈過表達(dá)[16]。近年越來越多的研究發(fā)現(xiàn)miR-146a在炎癥反應(yīng)、免疫應(yīng)答、神經(jīng)系統(tǒng)、癌癥、腦出血等中異常表達(dá),成為臨床研究重點[17]。TLR4/NF-κB通路參與腦出血后炎癥損傷進(jìn)程,其中NF-κB是通路關(guān)鍵靶點,腦出血患者出現(xiàn)NF-κB活化,促進(jìn)炎癥因子過表達(dá),加重炎癥反應(yīng),另外,炎癥因子又能激活NF-κB,使炎癥嚴(yán)重程度進(jìn)一步加重,損害腦組織[18]。TLR4也與機(jī)體炎癥反應(yīng)密切相關(guān),與對應(yīng)配體結(jié)合將信號轉(zhuǎn)導(dǎo)至Toll樣受體/白介素-1受體同源域,激活NF-κB,促進(jìn)炎癥因子過表達(dá),放大炎癥效應(yīng),長此以往,惡性循環(huán),加重腦出血引發(fā)的繼發(fā)性炎癥損傷[19]。由此猜測抑制TLR4/NF-κB信號通路活化可能減輕腦出血患者炎癥反應(yīng),改善預(yù)后,延長生存時間。
通過Garcia評分研究miR-146a對腦出血模型大鼠神經(jīng)功能的影響,發(fā)現(xiàn)腦出血大鼠神經(jīng)功能嚴(yán)重受損,而過表達(dá)miR-146a腺病毒組大鼠Garcia評分較模型組出現(xiàn)明顯回升,證實miR-146a過表達(dá)干預(yù)可改善腦出血后大鼠神經(jīng)功能損傷。本研究還發(fā)現(xiàn),模型組大鼠細(xì)胞形態(tài)異常,間隙增加,出現(xiàn)水腫及炎癥細(xì)胞浸潤,過表達(dá)miR-146a腺病毒注射組大鼠腦組織水腫、炎癥細(xì)胞浸潤減輕,細(xì)胞間隙變小,證實miR-146a可改善腦出血模型大鼠炎癥反應(yīng)。張浩等[20]研究指出,TLR4基因敲除小鼠體內(nèi)炎癥因子水平顯著下降,組織損傷也相對減輕。本研究還發(fā)現(xiàn),腦出血模型大鼠均存在不同程度TLR4、NF-κB蛋白、基因及炎癥因子表達(dá)增加,過表達(dá)miR-146a腺病毒干預(yù)后,大鼠TLR4、NF-κB蛋白、基因及炎癥因子水平均有所回落,提示miR-146a對TLR4/NF-κB通路及相關(guān)炎癥因子具有調(diào)控作用。
綜上,miR-146a可減輕腦出血模型大鼠神經(jīng)功能及炎癥損傷,可能通過抑制腦出血模型大鼠腦組織TLR4/NF-κB信號通路激活,降低炎癥因子水平,但鑒于miR-146a靶點較多,本研究僅從蛋白、基因水平證實miR-146a抑制TLR4/NF-κB信號通路減輕神經(jīng)功能損傷及炎癥反應(yīng),還需深入研究。