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慢加急性肝衰竭動(dòng)物模型研究現(xiàn)狀

2024-03-13 02:54:49韋,白
臨床肝膽病雜志 2024年1期
關(guān)鍵詞:動(dòng)物模型小鼠劑量

劉 韋,白 浪

四川大學(xué)華西醫(yī)院感染性疾病中心,成都 610041

慢加急性肝衰竭(acute-on-chronic liver failure,ACLF)是指在慢性肝病基礎(chǔ)上,短期內(nèi)出現(xiàn)肝功能急性失代償?shù)呐R床綜合征。ACLF 發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,病情兇險(xiǎn),進(jìn)展迅速,伴發(fā)多器官功能衰竭,短期病死率高,尚無具體有效的治療措施[1]。因此建立一個(gè)合適的、穩(wěn)定的并且高度模擬臨床的ACLF 動(dòng)物模型對(duì)于闡明ACLF 發(fā)病機(jī)制具有重要的價(jià)值和意義,有助于臨床制訂更加有效的早期診斷和治療策略,從而提高臨床ACLF 的救治成功率。然而,由于ACLF 病因復(fù)雜、并發(fā)癥眾多,其動(dòng)物模型研發(fā)一直存在較大挑戰(zhàn)。本文就目前常用的ACLF動(dòng)物模型建立方法進(jìn)行綜述。

1 ACLF概述

目前ACLF 的定義在國內(nèi)外尚無統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)。我國將ACLF定義為:在慢性肝病基礎(chǔ)上,由各種誘因引起的以急性黃疸加深(總膽紅素≥10 倍正常值上限或每日上升≥17.1 μmol/L)、凝血功能障礙(凝血酶原活動(dòng)度≤40%或國際標(biāo)準(zhǔn)化比值≥1.5)為肝衰竭表現(xiàn)的綜合征,可合并包括HE、腹水、電解質(zhì)紊亂、感染、肝腎綜合征、肝肺綜合征等并發(fā)癥,以及肝外器官功能衰竭。根據(jù)不同慢性肝病基礎(chǔ)分為3型,A 型:在慢性非肝硬化肝病基礎(chǔ)上發(fā)生的慢加急性肝衰竭;B型:在代償期肝硬化基礎(chǔ)上發(fā)生的慢加急性肝衰竭,通常在4 周內(nèi)發(fā)生;C 型:在失代償期肝硬化基礎(chǔ)上發(fā)生的慢加急性肝衰竭[2]。目前ACLF 的發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明,可能與易患體質(zhì)、誘發(fā)因素、炎癥反應(yīng)、器官衰竭等有關(guān)[3]。常見的危險(xiǎn)因素主要有細(xì)菌感染、酒精、靜脈曲張破裂出血、肝毒性藥物、肥胖和血脂異常等。ACLF 尚缺乏具體有效的治療方案,主要依賴于藥物治療、人工肝支持治療以及肝移植等[1,4]。

2 建立ACLF動(dòng)物模型方法

目前建立ACLF 動(dòng)物模型的思路均是通過各種方法先誘導(dǎo)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物肝臟的慢性損傷,然后在慢性損傷的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步實(shí)施急性攻擊,從而導(dǎo)致肝臟發(fā)生急性肝衰竭。

目前在誘導(dǎo)肝臟慢性損傷階段采用的方法不同,主要有CCl4注射、硫代乙酰胺注射、血清白蛋白注射以及膽管結(jié)扎等方法。在急性攻擊階段,可采用不同急性攻擊方式,包括單用CCl4或D-氨基半乳糖胺(D-Gal Nactosamine,D-GaL N)LPS 聯(lián)合D-GaL N 等方法。Hassan 等[5]對(duì)目前所建立ACLF 動(dòng)物模型的方法進(jìn)行了較全面的總結(jié),本文主要對(duì)CCl4法、硫代乙酰胺法、血清白蛋白法以及膽管結(jié)扎法4種常用的方法進(jìn)行總結(jié)、對(duì)比及思考。

ACLF 動(dòng)物模型首選嚙齒類動(dòng)物,尤其是老鼠,由于體型小,壽命短,妊娠期短,容易在圈養(yǎng)環(huán)境中飼養(yǎng)和繁殖,而且與人類在基因上的顯著相似性,加上基因操縱的便利性,因此老鼠成為目前模擬ACLF 的最常用的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物[6]。另外,建立大型動(dòng)物模型可選擇豬、兔、非人靈長類動(dòng)物等,其中非人靈長類動(dòng)物如猴、猩猩、狒狒等與人類十分相似,但其價(jià)格和造模的方法更為嚴(yán)格,導(dǎo)致其很難大規(guī)模開展,因此少有研究者以此建立ACLF動(dòng)物模型。

2.1 CCl4聯(lián)合LPS/D-Gal N法 CCl4是一種能引起肝細(xì)胞壞死的化合物,常作為誘發(fā)各種肝損傷的造模劑[7]。CCl4通過肝細(xì)胞的細(xì)胞色素P450的激活,生成自由基物質(zhì)CCl3·和CCl3OO·,這些自由基會(huì)對(duì)膜結(jié)構(gòu)上的多不飽和脂肪酸產(chǎn)生攻擊,促使細(xì)胞膜、線粒體膜等生物膜發(fā)生脂質(zhì)過氧化,從而導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化物的產(chǎn)生,后者反過來還能對(duì)各種生物膜造成進(jìn)一步的損傷,使其穩(wěn)定性和完整性降低、通透性增加,造成細(xì)胞內(nèi)各種酶的溢出以及其他細(xì)胞損傷,最終導(dǎo)致肝細(xì)胞的凋亡與壞死[8]。脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)又稱內(nèi)毒素,是革蘭陰性菌細(xì)胞壁表面的一種成分,通過刺激免疫細(xì)胞釋放炎癥因子,導(dǎo)致肝細(xì)胞發(fā)生凋亡與壞死[9]。D-Gal N可通過抑制mRNA合成和部分抑制糖復(fù)合物的轉(zhuǎn)移后修飾導(dǎo)致肝細(xì)胞損傷,同時(shí)激活巨噬細(xì)胞和粒細(xì)胞,促進(jìn)炎癥反應(yīng)的發(fā)生,從而導(dǎo)致肝細(xì)胞凋亡。而毒性劑量的D-Gal N 主要是通過耗竭ATP、抑制大分子合成導(dǎo)致肝細(xì)胞壞死。在LPS 和D-Gal N 的協(xié)同作用下,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的肝細(xì)胞在短時(shí)間內(nèi)大量死亡,肝臟生理功能嚴(yán)重受損[8]。

CCl4聯(lián)合LPS/D-GaL N誘導(dǎo)的ACLF動(dòng)物模型,可用于模擬人類化學(xué)毒性物質(zhì)所致的肝損傷,是目前比較常用的方法,該方法常采用腹腔內(nèi)注射作為給藥方式,一方面操作簡便,便于掌握注射劑量,一方面藥物吸收較皮下注射快避免局部皮膚產(chǎn)生炎癥,而較血管注射慢避免導(dǎo)致急性藥物中毒。但研究者們?cè)趯?shí)驗(yàn)動(dòng)物選擇、誘導(dǎo)方式、誘導(dǎo)劑量等方面存在一定的差異。

目前CCl4聯(lián)合LPS/D-GaL N 建立的ACLF 動(dòng)物模型可分為大鼠模型和小鼠模型。目前多數(shù)研究已經(jīng)證實(shí),在誘導(dǎo)肝臟慢性損傷階段,無論是選擇大鼠或者小鼠建模,12周左右的建模時(shí)間可以導(dǎo)致大鼠或者小鼠的肝臟發(fā)生明顯的慢性損傷。在12周的造模過程中,為使肝功能維持損傷狀態(tài)并防止其完全恢復(fù),同時(shí)又不會(huì)因?yàn)榻o藥頻繁,劑量過大導(dǎo)致其死亡,最合適的給藥頻率建議為2次/周[10]。根據(jù)用于建模的鼠的種類不同,CCl4的注射劑量有所不同。張慧蕓等[11]將3~4周齡BALB/C的雄性小鼠腹腔注射20% CCl4油溶液5 mL/kg;高安等[12]將3~4周齡的SPF級(jí)雄性C57BL/6小鼠作為實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,腹腔注射20% CCl4(橄欖油稀釋)5 mL/kg,2次/周,共12周。而誘導(dǎo)大鼠慢性肝損傷步驟相對(duì)繁瑣,研究[13-14]發(fā)現(xiàn)若選擇雄性SD大鼠(體質(zhì)量160~170 g),雖然同樣是通過腹腔注射50% CCl4植物油溶液,連續(xù)12 周,每3 天1 次,但是和小鼠不同,劑量需要做相應(yīng)的調(diào)整,其中第1個(gè)月劑量為1.5 mL/kg,第2、3 個(gè)月劑量為2.0 mL/kg。另外,為防止大鼠對(duì)CCl4產(chǎn)生耐藥性,需在4周后加大劑量,通常加至起始劑量的0.3 倍左右,而誘導(dǎo)小鼠肝硬化的給藥劑量相對(duì)穩(wěn)定。

在急性攻擊階段,可采用不同急性攻擊方式,分為單用CCl4或D-GaL N、LPS 聯(lián)合D-GaL N 三種方法,張海燕等[13]模擬了以上三種急性攻擊方法,以比較不同的方法是否能成功誘導(dǎo)慢性肝損傷基礎(chǔ)上急性肝衰竭的發(fā)生,在成功誘導(dǎo)大鼠慢性肝損傷后,將實(shí)驗(yàn)大鼠分為A、B、C三組,實(shí)驗(yàn)組A:2 g/kg D-Gal N;實(shí)驗(yàn)組B:100 μg/kg LPS聯(lián)合0.5 g/kg D-Gal N;實(shí)驗(yàn)組C:5 mL/kg 50% CCl4植物油溶液,給藥途徑均為腹腔注射。結(jié)果顯示三組實(shí)驗(yàn)大鼠肝臟均出現(xiàn)肝細(xì)胞大塊或亞大塊壞死,符合急性肝衰竭表現(xiàn),其中實(shí)驗(yàn)組B肝細(xì)胞壞死程度大于A、C組,C組最輕。該研究表明三種方法均可成功誘導(dǎo)肝硬化基礎(chǔ)上的急性肝衰竭。其中單獨(dú)D-Gal N注射誘導(dǎo)生存時(shí)間最長提示該模型有較長的治療窗,更適合藥物篩選的實(shí)驗(yàn)研究,而單獨(dú)CCl4注射誘導(dǎo)的急性肝衰竭的發(fā)生雖然也迅速,但其肝細(xì)胞壞死程度不如LPS 聯(lián)合D-Gal N 誘導(dǎo)的急性肝衰竭明顯。LPS 聯(lián)合D-Gal N 誘導(dǎo)的急性肝衰竭發(fā)生時(shí)間快、肝細(xì)胞壞死程度最為嚴(yán)重,因此相對(duì)于其他兩種處理方式,LPS聯(lián)合D-Gal N誘導(dǎo)在慢性肝損傷基礎(chǔ)上的急性肝衰竭發(fā)生,可能更適合ACLF病理機(jī)制的實(shí)驗(yàn)研究。但是不同的研究也會(huì)采用不同的LPS 和D-Gal N劑量誘導(dǎo)急性肝衰竭發(fā)生。張慧蕓等[11]在12周末次給藥3 d后腹腔聯(lián)合注射D-Gal N 1 g/kg、LPS 10 μg/kg建立ACLF 小鼠模型。高安等[12]在12 周末次給藥10 d后,給予一次性腹腔聯(lián)合注射(LPS 0.5 mg/kg、D-Gal N 400 mg/kg),建立ACLF 小鼠模型。可見,在使用LPS 聯(lián)合D-GaL N急性攻擊方式時(shí),研究者們?cè)贚PS和D-GaL N的劑量選擇上存在差異,考慮到LPS的毒性作用較強(qiáng),因此急性攻擊時(shí)所需LPS的劑量通常都遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于D-GaL N,但是聯(lián)合這兩種藥物進(jìn)行急性攻擊時(shí),其最優(yōu)劑量還值得進(jìn)一步探索。

綜上,多種研究證明CCl4聯(lián)合LPS/D-Gal N 法建立ACLF 動(dòng)物模型簡單易行、穩(wěn)定性好,適用于多種臨床研究。但有研究[15]表明CCl4模型在誘導(dǎo)因素停止后,肝纖維化程度、炎癥等逐漸減輕。特別是有學(xué)者[16]認(rèn)為細(xì)菌感染在ACLF患者中極為常見,急性細(xì)菌感染是亞洲ACLF最常見的誘發(fā)事件之一,通常與全身炎癥、不良的臨床結(jié)局和高病死率密切相關(guān)[17]。而僅僅通過CCl4或者D-Gal N 等藥物注射并沒有很好的模擬感染在肝衰竭發(fā)生中的作用以及肝外器官的損害。因此CCl4聯(lián)合LPS/D-Gal N 法在模擬ACLF 的進(jìn)展過程中仍然存在局限和不足。近年來有研究建立了更加完整模擬ACLF 病程及臨床特征的ACLF 小鼠模型,所采用的方法分為誘導(dǎo)慢性肝損傷、急性肝損傷、細(xì)菌感染三個(gè)階段,具體如下:首先將雄性C57BL/6J 小鼠腹腔內(nèi)注射CCl4(0.2 mL/kg),每周2 次,持續(xù)8 周,以誘導(dǎo)小鼠慢性肝損傷;在急性攻擊階段,再次注射雙倍劑量的CCl4(0.4 mL/kg),然后腹腔注射克雷伯氏菌肺炎菌株或行盲腸結(jié)扎穿刺術(shù)[18]。該方法通過誘導(dǎo)細(xì)菌感染成功構(gòu)建了一種嚴(yán)重肝損傷的ACLF小鼠模型,更佳地模擬了ACLF的臨床核心病程以及病程中易出現(xiàn)的肝外臟器損傷。該模型不僅具有合適的生存周期用于干預(yù)研究。同時(shí),該模型造模方法能夠很好地標(biāo)準(zhǔn)化,取材容易,簡便快速,易于推廣,為ACLF 的相關(guān)機(jī)制研究和新治療靶點(diǎn)篩選提供了可靠的平臺(tái)。

2.2 硫代乙酰胺(thioacetamide,TAA)聯(lián)合LPS 法 TAA是一種肝毒性藥物,被人體攝取后,可經(jīng)肝細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞色素P450 混合功能氧化酶代謝為TAA-硫氧化物,后者進(jìn)一步代謝為中間代謝產(chǎn)物及其他極性分子,并與肝臟大分子物質(zhì)結(jié)合,引起肝細(xì)胞功能的改變繼而壞死。一次性腹腔注射TAA 可導(dǎo)致急性肝炎,反復(fù)腹腔注射可導(dǎo)致肝細(xì)胞壞死、再生結(jié)節(jié)形成、毛細(xì)膽管增生、門靜脈高壓而導(dǎo)致肝硬化[19]。TAA 誘導(dǎo)慢性肝損傷的機(jī)制是影響蛋白合成及肝細(xì)胞中酶的代謝,在組織學(xué)和生化代謝的變化上與各種病因引起的人類肝硬化改變很相似,誘導(dǎo)所產(chǎn)生的肝纖維化更為穩(wěn)定和持久[20]。

de Mesquita 等[21]在TAA 注射前約1 h,將其溶解于0.9%生理鹽水中,給予雄性Wistar大鼠腹腔注射200 mg/kg TAA,每周2次,持續(xù)12周,用于建立慢性肝病動(dòng)物模型。Tripathi 等[22]將雄性大鼠(150~200 g)腹腔注射生理鹽水溶解的TAA,劑量為250 mg/kg,2 次/周,持續(xù)10 周,建立無腹水發(fā)生的慢性肝病大鼠模型,再給予代償期的大鼠腹膜內(nèi)或靜脈內(nèi)注射LPS(1 mg/kg),以建立ACLF 大鼠模型。

TAA 誘導(dǎo)的TAA 動(dòng)物模型也可用于模擬人類化學(xué)毒性物質(zhì)所致的肝損傷,與CCl4模型相比,其誘導(dǎo)的肝損傷穩(wěn)定性更好更持久,不易逆轉(zhuǎn)。但由于TAA 的毒性較強(qiáng),對(duì)人體危害性較大,不利于研究者操作,因此目前不常用于建立ACLF動(dòng)物模型。

2.3 血清白蛋白法 Bhunchet 等[23]研究認(rèn)為,當(dāng)機(jī)體反復(fù)接受異體血清時(shí),會(huì)導(dǎo)致體內(nèi)大量生產(chǎn)的免疫復(fù)合物,從而促使血管內(nèi)皮細(xì)胞、Kupffer 細(xì)胞產(chǎn)生大量細(xì)胞因子,作用于肝貯脂細(xì)胞,最終導(dǎo)致肝纖維化。目前主要通過牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)、人血清白蛋白(human albumin serum,HSA)、豬血清(porcine serum,PS)誘導(dǎo)免疫損傷性肝損傷模型,在此基礎(chǔ)上再進(jìn)一步聯(lián)合使用D-Gal N、LPS 以建立ACLF 動(dòng)物模型。該方法通常選擇大鼠作為實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,不同研究應(yīng)用血清白蛋白法建立ACLF 模型的區(qū)別主要在于白蛋白的種類,給藥劑量,給藥途徑以及給藥時(shí)間不同。

目前常用的血清白蛋白包括BSA、HSA 和PS。我國劉旭華等[24]首先利用HSA 聯(lián)合D-GalN/LPS 建立大鼠ACLF 模型。BSA 和HSA 誘導(dǎo)肝臟慢性損傷通常分為兩個(gè)階段,一是免疫階段,血清白蛋白用生理鹽水稀釋與等體積的完全福氏佐劑乳化,每次皮下注射0.5 mL(內(nèi)含白蛋白4 mg),共4次(第1、15、25、35天)。二是免疫攻擊階段,即靜脈注射血清白蛋白。劉子倩等[25]將SPF 級(jí)雄性大鼠皮下多點(diǎn)注射含4 mg的BSA乳化液0.5 mL,分別于第1、15、25、35 天時(shí)皮下多點(diǎn)注射致敏(共4 次);再向大鼠尾靜脈注射BSA 溶液,每周2 次,共計(jì)6 周(12 次),BSA含量從每次2 mg開始,每次增加0.5 mg注射,逐次增加至每次4 mg 后維持此劑量。劉旭華等[23]給予雌性Wistar大鼠皮下注射4次0.5 mL的HSA乳化液后,向大鼠尾靜脈注射2.5 mg的HSA,逐次增加0.5 mg直至4.5 mg,并維持次劑量,每周2次,共6周。Wang等[26]給予Wistar雄性大鼠皮下多點(diǎn)注射4 次含有4 mg 的HSA 乳化液0.5mL。HSA 致敏后,向大鼠尾靜脈注射4 mg HSA,每周2 次,持續(xù)6 周,導(dǎo)致大鼠肝臟慢性損傷。BSA 或者HSA 法的主要區(qū)別在于致敏后靜脈注射白蛋白的劑量,HSA法既可采用2.5 mg起始,逐次增加0.5 mg,至4.5 mg后維持該劑量,也可直接采用維持劑量4 mg,而BSA法則多選擇從2 mg起始,逐次增加0.5 mg,至4 mg后維持該劑量。采用逐次遞增劑量的方式可能使大鼠的死亡率降低,提高建模成功率,但對(duì)于更好地模擬人類ACLF而言,兩者孰優(yōu)孰劣需要進(jìn)一步探索。相對(duì)于BSA或者HSA誘導(dǎo)肝臟慢性損傷相對(duì)繁瑣的步驟,Li 等[27]給予雄性Wistar 大鼠腹腔注射0.5 mL 的PS,每周2 次,持續(xù)11 周,建立肝纖維化模型。PS誘導(dǎo)肝臟慢性損傷則更為簡便,利于操作,可重復(fù),同時(shí)PS 法所選擇的給藥途徑為腹腔注射,相對(duì)于皮下注射、靜脈注射更為安全,成模率高。

在急性攻擊階段,BSA 法、HSA 法和PS 法均采用聯(lián)合使用D-Gal N、LPS 的方式,但是由于誘導(dǎo)慢性肝損傷的白蛋白種類不同,D-Gal N、LPS 的給藥劑量、給藥途徑存在差異。其中,BSA 法、HSA 法可采用相同的急性攻擊方式,在大鼠慢性肝損傷的基礎(chǔ)上,于第6 周末,聯(lián)合給予腹腔注射100 μg/kg 的LPS 和400 mg/kg 的D-Gal N以誘導(dǎo)急性肝衰竭[24-26]。而通過PS 誘導(dǎo)的大鼠,將于11 周后給予其靜脈注射劑量為50 μg/kg 的LPS,30 min后再腹腔注射劑量為600 mg/kg 的D-Gal N 以誘導(dǎo)急性肝衰竭[27]。

綜上,BSA 法、HSA 法和PS 法均可成功建立ACLF大鼠模型。目前利用免疫誘導(dǎo)法建立ACLF動(dòng)物模型的常見造模方式,是HSA 法建立的ACLF 大鼠模型[28],但其建立的模型死亡率相對(duì)較高,為23%[29]。與BSA 和HSA 法建立的ACLF 大鼠模型相比,PS 模型的死亡率更低,更容易操作,同時(shí)該模型與人類ACLF更加相似[27]。

2.4 膽管結(jié)扎術(shù)(bile duct ligation,BDL)法 BDL通過結(jié)扎膽管使膽汁反流造成肝細(xì)胞損傷來誘導(dǎo)肝纖維化。BDL誘導(dǎo)后的大鼠對(duì)內(nèi)毒素敏感性增加,通常使用D-Gal N或LPS使大鼠發(fā)生急性肝損傷。

叢偉[30]通過此方法成功建立了ACLF 大鼠模型,首先將雄性SD 大鼠(體質(zhì)量250~280 g),術(shù)前禁食12 h,結(jié)扎膽總管,4 周后可建立膽汁淤積性肝硬化模型。然后取膽管結(jié)扎4 周后存活的大鼠(已建立膽汁淤積性肝硬化模型),禁食12 h,按1.4 g/kg 給藥劑量配置D-Gal N(配置濃度0.2~0.4 g/mL),腹腔注射24 h 后可誘導(dǎo)肝硬化基礎(chǔ)上的急性肝損傷。

Tripathi 等[22]使用BDL 建立ACLF 動(dòng)物模型,首先結(jié)扎雄性大鼠(200~225 g)膽總管,誘導(dǎo)繼發(fā)性膽汁性肝硬化(共28 天)。在血流動(dòng)力學(xué)研究前4 h,給予肝硬化失代償期的大鼠腹膜內(nèi)或靜脈內(nèi)注射1 mg/kg的LPS,以建立ACLF大鼠模型。

BDL 模型可用于模擬人類膽管阻塞而造成的肝損傷,但BDL模型手術(shù)復(fù)雜,模型較不穩(wěn)定。

3 建立ACLF動(dòng)物模型的挑戰(zhàn)與展望

綜上所述,CCl4聯(lián)合LPS/D-Gal N 法、TAA 聯(lián)合LPS法、血清白蛋白法、膽管結(jié)扎術(shù)法是目前建立ACLF 動(dòng)物模型常用的方法,CCl4模型、TAA模型均為化學(xué)毒物的損傷,操作簡單便利,但對(duì)于劑量的選擇有一定要求,劑量過大易導(dǎo)致動(dòng)物死亡,過小則達(dá)不到診斷要求。血清蛋白法主要模擬免疫性的肝損傷,模型穩(wěn)定,可重復(fù)。BDL法模擬人類膽管阻塞而造成的肝損傷操作復(fù)雜,對(duì)動(dòng)物損傷大,較不穩(wěn)定。可見,建立ACLF 動(dòng)物模型有多種方法,研究者可以根據(jù)具體研究目的選擇一種合適的方法。但ACLF 的病因、病理機(jī)制復(fù)雜多樣,同時(shí)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與人類之間存在異質(zhì)性,而臨床情況更加復(fù)雜,將同時(shí)或依次出現(xiàn)多種誘發(fā)因素和并發(fā)癥,導(dǎo)致多種疾病和器官衰竭,因此無法準(zhǔn)確地模擬人類ACLF發(fā)生發(fā)展過程[31]。

ACLF發(fā)生于慢性肝病的基礎(chǔ)上,通常包括病毒性肝病、酒精性肝病、藥物性肝病、自身免疫性肝病等,其病因多種多樣,不同病因所致的肝損傷機(jī)制各有不同。HBV的再激活是亞洲地區(qū)ACLF 的主要原因,其患病率高,HBV 相關(guān)的急性慢性肝衰竭占ACLF 的70%以上[32-34]。但是目前所建立的ACLF 動(dòng)物模型,包括可模擬化學(xué)毒物性損傷、免疫性肝損傷、膽汁淤積性肝損傷,均無法模擬病毒性肝損傷,因此建立HBV相關(guān)的急性慢性肝衰竭動(dòng)物模型是目前的一大難題和挑戰(zhàn)。另外,為建立合適的ACLF動(dòng)物模型,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的選擇也很重要,根據(jù)不同的研究目的,選擇最適合的動(dòng)物模型,考慮到嚙齒類動(dòng)物的優(yōu)勢,目前通常選擇大鼠或者小鼠作為實(shí)驗(yàn)動(dòng)物。

理想的ACLF 動(dòng)物模型應(yīng)盡量模擬人類的肝損傷發(fā)病機(jī)制,雖然此過程可通過使用不同藥物、毒物或其他有創(chuàng)操作而實(shí)現(xiàn),也可調(diào)整給藥劑量或其他方式盡可能模擬人類ACLF的死亡率、生存率,但目前由于動(dòng)物本身與人類之間存在異質(zhì)性以及外界因素的不可控性,暫時(shí)無法完整復(fù)制人類ACLF。因此選擇更符合人類發(fā)病機(jī)制的動(dòng)物、更佳的毒物藥物、合適的藥物劑量等,需要研究者們進(jìn)一步探索。

利益沖突聲明:本文不存在任何利益沖突。

作者貢獻(xiàn)聲明:劉韋起草論文;白浪負(fù)責(zé)擬定寫作思路,論文審閱修改。

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