肉鴨病毒性肝炎診治

黃忠群

（貴州省玉屏侗族自治縣畜牧漁業發展中心，貴州 玉屏 554000）

肉鴨病毒性肝炎（DVH）是一種常見的內科疾病，該病由鴨病毒性肝炎病毒（DHV）引起，1周齡內的雛鴨發病率高達95%，死亡率約80%。

1 病原

導致DVH 的病原為DHV，研究表明DHV 可分為DHV-I、DHV-II 和DHV-III 三種血清型，其中DHV-I、DHV-III同屬小RNA病毒科，而DHVII屬星狀病毒科。

病原學研究發現DHV-I型較為耐熱，高溫環境下（50 ℃）仍可保持活力不衰減，是致使肉鴨發生DVH的主要病原型別，也是威脅肉鴨養殖行業發展的罪魁禍首。

2 流行病學

2.1 鴨病毒性肝炎1 型（DHV-I 型）1945 年在美國紐約長島鴨場首次發現DHV-I，隨后加拿大、英國、日本、德國等國家相繼報道了DHV-I在本國的流行情況。

DHV-I的主要傳染源為病鴨，棕色大鼠也可作為傳染源傳播該病。由DHV-I 引起的DVH一年四季均可發生，季節交替時本病發生概率增加。在自然條件下，DHV-I 型傳播速度快、潛伏期短，主要引起1.5 月齡以內的肉鴨發病死亡。流行病學研究表明，DHV-I感染的肉鴨發病率為95%，死亡率最高可達95%。通常肉鴨的死亡率與年齡呈反比，年齡越大的肉鴨死亡率越低，1周齡以內的肉鴨死亡率最高為95%，2 周齡次之，3周齡再次之，而1.5 月齡以上的肉鴨基本不會死亡。

2.2 鴨病毒性肝炎2 型（DHV-II 型）DHV-II首次于1965 年在英國諾福克港口中發現。該型在世界范圍內的相關病例較少，通常為個例散發，暫未出現大規模暴發或流行。

DHV-II 型主要傳染源也為病鴨，部分野禽、野鳥等可成為傳播媒介。DHV-II 型的死亡率相對I型低，最高可達50%，死亡率隨病鴨年齡增長而降低。

2.3 鴨病毒性肝炎3型（DHV-III型）繼DHVI 型發現后24 年，1969 年在美國紐約長島鴨場又發現了DHV-III型。

目前研究表明DHV-III 型的傳染源為病鴨，肉鴨的感染率和死亡率均低于30%，在我國尚未大規模流行。

3 發病原因

DVH可由多種因素誘發，其中飼養管理水平低下是主要誘因。鴨舍簡陋，無法有效滿足肉鴨生長需要，舍內過于潮濕，滋生各種細菌及病毒時，可導致鴨群免疫力下降而患病。

養殖密度過大、舍內通風不良、糞尿不及時清理、消毒不到位時，也會導致病菌滋生及各類有害氣體超標，而誘發DVH等相關疾病。

飼料中缺乏維生素和礦物質等也是誘發DVH 的因素。維生素是肉鴨為維持正常生理功能而必需的有機物。礦物質與維生素相似，也是肉鴨機體必需的營養素。當肉鴨長期無法從食物中攝入足夠的營養物質時，一些抵抗力、免疫力差的肉鴨便會發生疾病，進而傳播疾病。

4 臨床癥狀

由DHV-I 型引起的DVH 發病極快、傳播極快。雛鴨感染后精神沉郁，兩翅下垂，無法挺立，困倦、行動遲緩，行為明顯異于其他肉鴨。

發病初期病鴨輕微厭食，部分鴨嚴重腹瀉，長臥不起等。發病中后期，90%以上的病鴨會出現口渴和大量排泄尿酸鹽的癥狀，其會出現神經癥狀，如腿部痙攣，全身抽搐等，進而在數小時內死亡。

死亡后的肉鴨喙端和爪尖有瘀血，呈紫紅色。部分病鴨在感染后出現暴斃，見不到任何癥狀即突然死亡。DHV-II與DHV-III型引起的DVH臨床表現與DHV-I型相似。

5 診斷

DVH的診斷需要結合臨床癥狀、流行病學特點、病原檢測及組織病理學等進行綜合判斷。

5.1 病原學診斷 對DVH的簡易診斷方法主要是肉鴨接種試驗、鴨胚或雞胚接種試驗等。

肉鴨病亡后，進行病毒分離，將肝臟等病料無菌處理后充分研磨，用滅菌緩沖液配制成20%～25%的組織懸液，在高速離心后，使用5%的三氯甲烷溶液處理上清液15 min 左右后，進行后續的雛鴨接種試驗、鴨胚接種試驗等病理學試驗，進而對該病進行診斷。

5.2 血清學診斷 血清學診斷也是有效診斷DVH的方法。血清學診斷包括雛鴨保護試驗、被動免疫試驗、中和試驗、膠體金免疫電鏡技術等。

5.2.1 雛鴨保護試驗 是用已知的抗DVH 抗體或高免血清皮下注射于健康雛鴨，1 mL/只。雛鴨注射抗體24 h后，再注射病毒分離物，以毒攻毒，同時設立對照組，對照組雛鴨同時攻毒。經飼養觀察，若7 d后實驗組雛鴨有80%以上存活，而對照組雛鴨80%以上死亡，則可判定分離毒株為鴨病毒性肝炎病毒。

5.2.2 被動免疫試驗 使用一定濃度的病毒分離物攻毒含有DHV 母源抗體的雛鴨，并以此作為實驗組，對照組使用相同濃度的病毒分離物攻毒同日齡同數量的易感雛鴨。經飼養觀察，若實驗組雛鴨存活率達80%，而對照組雛鴨死亡率達80%，則可判定分離毒株為鴨病毒性肝炎病毒。

5.2.3 中和試驗 使用已知的病毒或抗原檢測病鴨體內中和抗體的存在及效價，稱為中和試驗。中和試驗是一種經濟、實用、快速且靠譜的診斷方法，但試驗耗時較長，實驗步驟繁瑣。

5.2.4 膠體金免疫技術 該技術原理為將含有DHV的溶液或懸液與膠體金充分接觸，使兩者完全反應，當樣品中的病毒含量達到一定程度時，在試劑板中便會顯出檢測線與對照線，且能變色。在顯微鏡下觀察，便可較清晰地判斷病毒情況。膠體金試驗成本較高，限制了該方法使用。

5.3 分子生物學診斷 隨著診斷技術的不斷發展，分子生物學診斷逐漸成為了檢測該病毒的主流方法。該方法可利用病毒中特定的核苷酸序列，使用實時熒光定量PCR 技術快速檢測樣本中的核苷酸序列，進而進行對比判斷。該方法靈敏度高、操作簡單，能較好地用于DHV 的精確判斷。

6 綜合防治

6.1 預防

6.1.1 環境安全 隔離和消毒是預防本病的兩個有效措施。

基于5周齡以下雛鴨DHV易感的特點，需將雛鴨與成年鴨隔離飼養，且間距最好在1 km 以上，防止成年鴨將病毒傳給雛鴨。

應定期清洗和嚴格消毒鴨舍、設備。為確保消毒安全，可選擇高效廣譜的消毒劑交替使用。消毒前將鴨舍打掃干凈，以免影響消毒效果。定期帶鴨消毒可使用0.1%濃度的新潔爾滅、15%濃度的百毒殺與0.2%濃度的過氧乙酸混勻后噴霧，建議每周帶鴨消毒一次。

外來人員及車輛進場前進行嚴格消毒，消毒可使用2.5%的火堿溶液。非本鴨場的人員禁止進入生產區，運輸活禽的車輛也禁止駛入生產區。倘若有疫情發生，要加大消毒頻率，每2 d消毒一次。

6.1.2 加強飼養管理 為雛鴨提供舒適的生長環境。因雛鴨出生不久，各項機能尚不健全，免疫力較弱，故需加強環境控制，防止鴨舍過潮，滋生細菌，并注意保溫，防止雛鴨發生應激，同時及時通風，將舍內各種有害氣體排出。

其次，鴨群要嚴格全進全出。雛鴨進入新鴨舍前，使用福爾馬林、高錳酸鉀進行熏蒸。飼養后控制雛鴨養殖密度，5周齡內雛鴨密度20～22羽/m2為佳。

最后，給雛鴨提供新鮮、營養的全價飼料，提高雛鴨的抵抗力。給雛鴨提供干凈的飲水，可在飲水中添加營養物質，如電解多維、黃芪多糖等，增強雛鴨的體質。

6.1.3 免疫接種 免疫接種是預防本病的重要手段。各個養殖場需根據實際情況合理制定免疫程序。鴨群免疫接種可分為種鴨免疫接種與雛鴨免疫接種兩類。

種鴨免疫一般是在開產前的一月齡注射弱毒疫苗，然后分別在注射后的第一周、第二周再次注射弱毒疫苗強化效果。疫苗的免疫期一般為半年左右，種鴨首次注射后半年應考慮第二次免疫。

雛鴨的免疫一般在出殼后2d 時皮下注射DVH弱毒疫苗，使雛鴨在1周齡時獲得免疫力。

6.2 治療

6.2.1 中草藥治療 方劑1：每100 只雛鴨可使用板藍根2.5 g、甘草1 g、當歸1 g、黃芪4 g、黃柏3 g、龍膽草3 g、鉤藤1 g，藥物用500 mL 溫水攪拌均勻，小火慢煎30min左右，煎好的藥液以1.5mL/只讓雛鴨灌服，每天兩次，連續服用5 d。

方劑2：每100 只雛鴨用梔子3 g、葛根粉2 g、大棗4 g、連翹2g、甘草1g、廣木香2 g，加入約100 mL的水混勻后小火慢煎，每只雛鴨灌服1 mL藥液，連續用藥1周。

6.2.2 高免卵黃抗體治療 發病早期可使用高免卵黃抗體、康復鴨血清或高免血清對雛鴨進行治療，使雛鴨獲得被動免疫力而減少死亡率。

具體措施如下：將0.1 g左右的頭孢噻呋鈉粉末溶解在15 mL 0.9%的NaOH 溶液中制成懸液，隨后將懸液與高免卵黃抗體（規格500 mL/瓶）充分混勻，給雛鴨肌肉注射，1 mL/只。若雛鴨患病較重，可于初次注射后的第3d 再次注射以加強免疫效果。注射后可在雛鴨飲水中加入多維魚肝油與黃芪多糖進行輔助治療，連續服用7 d。