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豬圓環病毒2型疫苗抗原定量方法及其應用

2024-04-08 01:52:56何召慶徐晨汪愛芬尹秀鳳南祥祝邵營格晁錦兆豐華生物科技南京有限公司
中國畜牧業 2024年4期

文|何召慶* 徐晨 汪愛芬 尹秀鳳 南祥祝 邵營格 晁錦[兆豐華生物科技(南京)有限公司]

豬圓環病毒病是一種可以給豬場造成嚴重經濟損失的疾病,當前,豬圓環病毒2型(Porcine Circovirus type 2,PCV2)感染在很多豬場仍有很高的比例,給豬場管理帶來了巨大壓力。有效的疫苗免疫有利于豬抵抗病毒,減少病毒血癥的發生和縮短帶毒時間,因此,疫苗免疫仍是豬場控制PCV2的重要手段。

疫苗質量是有效防控豬圓環病毒2型的關鍵。目前,我國已批準上市的PCV2單苗和圓環病毒與支原體二聯滅活疫苗(簡稱圓支二聯滅活疫苗)共20種左右,生產企業數量多達60個左右,不同類型PCV2疫苗檢驗方法差異較大,這些疫苗產品沒有統一的標準,有的疫苗采用免疫攻毒試驗法進行效力檢驗,有的疫苗通過抗體檢測法進行效力檢驗,還有的疫苗通過雙抗夾心ELISA進行抗原含量檢測和相對效力法進行檢驗。免疫攻毒法和抗體檢測法需要用到試驗動物,操作煩瑣,耗時耗力,重復性差,而雙抗夾心ELISA蛋白定量法存在誤差較大和毒株差異性等問題。不適合一般實驗室和養殖企業對多種不同來源的PCV2疫苗抗原含量的檢測比較。

臨床上如何選擇質量更好的疫苗是養殖企業面臨的難題。雖然疫苗佐劑、制備工藝等均可影響產品質量,但對于PCV2全病毒滅活疫苗或其Cap蛋白亞單位疫苗而言,抗原精準定量檢測對評價疫苗質量非常重要。抗原含量是評估疫苗質量的重要指標之一,直接影響疫苗的接種效果。

國內商品化的PCV2疫苗有4類,包括全病毒滅活疫苗、基因工程亞單位疫苗(有真核表達和原核表達之分)、嵌合病毒滅活疫苗和合成肽疫苗。這些疫苗中的圓環病毒抗原有的是全病毒,有的是Cap蛋白,實際上也不能排除既有全病毒也有Cap蛋白的可能性。

近十多年來,利用超速離心配合高效液相色譜技術,我國口蹄疫疫苗146S含量檢測方法在疫苗生產企業和集團化養豬企業中得到應用,極大促進了口蹄疫疫苗的質量控制。中國科學院基于高效體積排阻色譜(HPSEC)偶聯多角度激光散射儀(MALLS),建立了PCV2滅活疫苗及病毒樣顆粒疫苗抗原含量檢測方法。但該方法對儀器設備的要求較高,一般實驗室不容易實現日常檢測。

借鑒上述技術要點,為了建立費用低、速度快且能精準定量PCV2相關疫苗有效抗原含量的方法,幫助養殖企業篩選優質疫苗。本研究采用普通的離子交換層析技術,通過篩選試驗材料,通過多次試驗、不同方法對各種樣品進行驗證,最終建立了一套可快速、精準定量各種PCV2相關疫苗全病毒及其Cap蛋白抗原含量的方法,且成本更低,適合在規模化豬場推廣使用。

一、試驗材料

1.主要儀器與設備。蛋白純化儀,AKTA。微量分光光度計,Thermo scientific公司。

2.主要試劑。層析填料,蘇州藍曉生物科技有限公司。

3.試驗樣品種類與編號。PCV2全病毒細胞培養液(A);PCV2 Cap蛋白真核表達細胞培養液(B);PCV2 Cap蛋白原核表達細菌培養液(C);油佐劑PCV2滅活疫苗(D);水佐劑PCV2滅活疫苗或者水佐劑圓支二聯滅活疫苗(E)。

二、試驗方法

1.試驗樣品處置。

(1)PCV2全病毒細胞培養液處置。取PCV2全病毒細胞培養液1.5毫升至Eppendorf管中,反復凍融3次,12000轉/分,4℃高速離心3分鐘,取1毫升上清備用。共試驗3批細胞培養液,分別標記為A1、A2和A3。

(2)PCV2 Cap蛋白真核表達細胞培養液處置。取表達PCV2 Cap蛋白的昆蟲細胞培養液1.5毫升至Eppendorf管中,反復凍融3次,12000轉/分,4℃高速離心3分鐘,取1毫升上清備用。共試驗3批細胞培養液,分別標記為B1、B2和B3。

(3)PCV2 Cap蛋白原核表達細菌培養液處置。取可溶性表達PCV2 Cap蛋白的大腸桿菌培養液1.5毫升,離心獲得菌體,用15毫升PBS重懸菌體作10倍稀釋,菌體經超聲破碎,12000轉/分,4℃高速離心3分鐘,取1毫升上清備用。共試驗三批細菌培養液,分別標記為C1、C2和C3。

(4)油佐劑PCV2滅活疫苗處置。取油佐劑PCV2滅活疫苗700微升,按1∶1體積比加入700微升三氯甲烷,振蕩混勻,12000轉/分,4℃離心6分鐘,用移液器取出所有上層水相液體,計算水相體積/疫苗體積,計為R1。取200微升備用。共試驗兩家企業的油佐劑PCV2疫苗共4批。分別標記為D1、D2、D3和D4。

(5)水佐劑PCV2相關疫苗處置。取700微升水佐劑PCV2疫苗,按1∶1體積比加入700微升三氯甲烷,振蕩混勻,12000轉/分,4℃離心3分鐘,用移液器取出所有上層水相液體,計算水相體積/疫苗體積,計為R1。取200微升備用。其中三家企業的水佐劑PCV2相關疫苗共3批,分別標記為E1、E2和E3。

2.PCV2全病毒或Cap蛋白層析純化。將200微升按(1)~(3)方法處置的試驗樣品,用PBS稀釋至5毫升,利用AKTA蛋白純化系統按照已經建立的PCV2全病毒/Cap蛋白層析純化標準操作程序,進行離子交換層析純化。收集起峰段樣品,稀釋至5毫升。

采用SDS-PAGE結合灰度分析測定樣品純化前后PCV2全病毒或Cap蛋白純度。利用BCA法和分光光度法測定樣品純化前后總蛋白濃度。計算PCV2全病毒或Cap蛋白回收率。

3.建立PCV2全病毒或Cap蛋白含量檢測方法及計算公式。根據上述試驗數據和結果進行分析,建立PCV2全病毒或Cap蛋白含量檢測流程,具體如下。

(1)樣品處置。

(2)離子交換層析純化。

(3)分光光度法測定總蛋白含量。

(4)計算原始樣品中的PCV2全病毒或Cap蛋白含量。

具體計算公式如下:

其中,C(s)為待檢樣品中PCV2全病毒或Cap蛋白含量(微克/毫升);C(t)為分光光度計測定的稀釋后起峰段樣品中總蛋白含量(微克/毫升);P為純度,在本公式中取常數0.65;R1為待檢樣品的水相占比;R2為回收率,在本公式中取常數0.82。

三、方法應用

對待檢疫苗樣品分別用(4)~(5)方法進行前處置,按照已建立的層析-分光光度法進行PCV2抗原含量檢測,并通過已建立的PCV2抗原含量計算公式進行計算。

四、結果與討論

3種不同來源的抗原,經過前期處理和層析純化,通過SDS-PAGE結合灰度分析法可測定樣品純化前后PCV2全病毒或Cap蛋白純度。通過BCA法和分光光度法測定樣品純化前后總蛋白濃度,可以計算得到每次純化檢測的回收率。結果見表1、表2和表3。

表1 PCV2全病毒細胞培養液層析前、后回收率

表2 PCV2 Cap蛋白真核表達細胞培養液層析前、后回收率

表3 PCV2 Cap蛋白原核表達細菌培養液層析前、后回收率

用所建立的方法檢測了4種油佐劑PCV2滅活疫苗抗原含量,結果見表4。

表4 油佐劑PCV2滅活疫苗抗原含量檢測結果

用所建立的方法檢測了3種水佐劑PCV2滅活疫苗抗原含量,結果見表5。

表5 水佐劑PCV2滅活疫苗抗原含量檢測結果

本研究是在前期多次預試驗的基礎上進行的,經過多次篩選,最終確定了一種適合圓環病毒2型及其Cap蛋白純化的層析填料,包括洗脫液濃度、時間等過程參數的確定,使其回收率和純度非常穩定。需要說明的是,本研究確定的計算公式僅限于按照確定的材料和設備進行操作,并非可以任意更換試驗材料和設備后還適用。

毫無疑問,由于層析純化過程不可避免地存在回收率差異,該方法也一定會存在誤差,但與雙抗夾心ELISA法和免疫層析法等免疫學定量方法相比,從原理上決定了本研究建立的方法誤差范圍會小于上述兩種方法。比較適合臨床評價豬圓環病毒2型相關疫苗質量。從臨床檢測圓環病毒2型相關疫苗抗原的結果看,不同廠家的產品確實存在較大差異。

該方法不適用于PCV2合成肽疫苗抗原的定量檢測。

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