999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

慢性乙型肝炎功能性治愈離完全治愈還有多遠?

2025-02-27 00:00:00高娜高志良
臨床肝膽病雜志 2025年1期

摘要: 功能性治愈是目前國內外慢性乙型肝炎的理想抗病毒治療終點,其外周血HBsAg清除及HBV DNA檢測不到并維持24周以上,標志著HBV感染的消退。然而,針對HBsAg清除后的肝內HBV標志物特點尚未有系統性描述。本文針對慢性乙型肝炎功能性治愈的最新定義、血清HBsAg清除后的肝內病毒學標志物特征、血清HBsAg高敏檢測意義及低水平HBsAg是否需要治療等問題等進行闡述,以期提高臨床醫生對慢性乙型肝炎功能性治愈的認識。

關鍵詞: 乙型肝炎, 慢性; 功能性治愈; 乙型肝炎表面抗原; DNA, 病毒

基金項目: 國家自然科學基金(82170612); 廣州市科技計劃重點項目(2023B01J1007); 廣東省基礎與應用基礎研究基金省市聯合基金項目(2023A1515110584); 國家資助博士后研究人員計劃(GZC20233249)

How far is the functional cure of chronic hepatitis B from complete cure?

GAO Na, GAO ZhiliangDepartment of Infectious Diseases, The Third Affiliated Hospital of Sun Yat-Sen University, Guangzhou 510630, China

Corresponding author: GAO Zhiliang, gaozhl@mail.sysu.edu.cn (ORCID: 0000-0001-7611-4416)

Abstract: Functional cure is currently the ideal treatment endpoint for chronic hepatitis B (CHB) in China and globally. HBsAgseroclearance and HBV DNA that cannot be detected in peripheral blood for more than 24 weeks marks the regression of hepatitis Bvirus (HBV) infection. However, there is still a lack of systematic description of the characteristics of intrahepatic HBV markers afterHBsAg seroclearance. This article elaborates on the issues including the latest definition of functional cure, the characteristics ofintrahepatic virological markers after HBsAg seroclearance, the significance of ultrasensitive serum HBsAg detection, and antiviraltherapy for CHB patients with a low level of HBsAg, so as to improve the understanding of functional cure among clinicians.

Key words: Hepatitis B, Chronic; Functional Cure; Hepatitis B Surface Antigens; DNA, ViralResearch funding: National Natural Science Foundation of China (82170612); Key Project of Guangzhou Municipal Science andTechnology Program (2023B01J1007); Provincial-Municipal Joint Fund Project of Guangdong Provincial Basic and Applied Basic

Research Fund (2023A1515110584); National Funding Program for Postdoctoral Researchers (GZC20233249)

全球超過2. 9億人患有慢性乙型肝炎(CHB),每年有超過80萬患者死于CHB相關并發癥[1] ,世界衛生組織(WHO)提出“2030年全面消滅病毒性肝炎”的目標。血清HBsAg清除是目前臨床普遍接受的抗病毒治療終點,其中長期核苷(酸)類似物[nucleos(t)ide analogues,NAs]治療的累積 HBsAg 清除率僅為 0~5%;有限療程下的聚乙二醇干擾素(PEG-IFN)治療的血清 HBsAg 清除率為 3%~14%,致使針對 CHB 功能性治愈的研究受限[2]。

2019年我國推出《慢性乙型肝炎臨床治愈(功能性治愈)專家共識》[3] ,明確將CHB功能性治愈定義為“持續病毒學應答且血清 HBsAg陰轉或伴有抗-HBs陽轉、ALT正常、肝組織學病變輕微或無病變”。隨著臨床研究的進一步深入,CHB 功能性治愈的概念逐漸趨于完善,有了更多細化的標準。研究發現,部分CHB患者雖然血清HBsAg陰轉,但血清HBeAg仍為陽性,而停止抗病毒治療時血清HBeAg陽性是血清HBsAg復陽的危險因素(OR=12. 271)[4]。在終止PEG-IFN治療時,血清中抗-HBs抗體水平≥100 IU/L是血清HBsAg復陽的保護因素(OR=0. 110)[5] ,這與宿主針對 HBV 的免疫功能恢復密切相關[6] ;相反,對于那些在停止治療時血清抗-HBs抗體水平低于10 IU/L且已實現HBsAg陰轉的患者,血清HBsAg復陽率可達29. 5%[5]。除了血清HBsAg陰轉時的HBeAg及抗-HBs狀態是血清HBsAg復陽的危險因素外,停止抗病毒治療后僅一次確認血清HBsAg陰轉的患者其后續隨訪中血清HBsAg復陽率高于兩次確認(至少間隔24周)HBsAg 陰轉的患者[7] 。美國肝病學會-歐洲肝病學會HBV-HDV治療終點會議中,將CHB功能性治愈定義為:停止抗病毒治療后24周持續的血清HBsAg陰轉和HBVDNA低于定量檢測下限(即HBV DNAlt;10 IU/mL),伴或不伴抗-HBs出現;同時需要滿足血清HBeAg持續陰轉、ALT復常,最終獲得肝組織學改善并降低肝癌的發生風險,但肝臟中仍有cccDNA及整合HBV DNA[8] 。CHB完全治愈則是在 CHB 功能性治愈的基礎上清除肝內的cccDNA及HBV DNA整合,但由于cccDNA及HBV DNA整合位于肝細胞核內,并且目前的NAs及PEG-IFN很難到達肝細胞核內直接作用于cccDNA及HBV DNA整合,CHB完全治愈被認為在臨床實踐中難以達到。部分治愈定義更新為如下:停止抗病毒治療后血清HBsAg持續小于 100 IU/mL,血清 HBV DNA低于檢測下限,至少維持24周,但血清HBsAglt;100 IU/mL是否為具有臨床意義的安全閾值仍需臨床大數據進一步評判(表1)。

有文獻報道,完全抑制HBV復制后進一步清除血清HBsAg,8 年肝細胞癌(HCC)的累積發生率可下降至0. 6%[10]。中國慢性乙型肝炎臨床治愈(珠峰)工程項目、OSST研究、NEW SWITCH研究的數據提示,NAs經治的優勢患者的48周血清HBsAg清除率可達31. 43%、22. 2%和26. 5%[11-13] ;其次,對CHB兒童、HBV感染孕婦產后等特殊人群亦有探索功能性治愈的相關研究,并取得一定療效[14-15] 。例如,接受 PEG-IFN-α-2b 治療的 HBV 感染孕婦,48周時的HBsAg清除率為51. 06%。這些研究提示,在特殊人群中實現 CHB 功能性治愈亦具有較強的可行性。

既往關于血清HBsAg清除后肝內HBV標志物的研究多在 HBV 隱匿性感染合并 HCC 的患者中進行。然而,經過有限療程抗病毒治療達到血清HBsAg清除的患者,其肝內HBV標志物仍需進一步闡明。上述臨床研究為探討CHB功能性治愈的預測因素及探索肝內HBV標志物譜奠定了重要基礎。本文對當前功能性治愈的血清學及肝組織學研究進展進行綜述,并討論了實現完全治愈面臨的挑戰和未來研究的方向。

1 CHB功能性治愈的血清學標志物及其意義

1. 1 血清HBsAg檢測及其意義 HBsAg主要來自cccDNA和HBV DNA整合的轉錄合成,隨著CHB疾病進程的變化,cccDNA和整合HBV DNA來源的HBsAg的占比會發生變化。HBV感染的最初階段以含有cccDNA的肝細胞為主,含有HBV DNA整合的肝細胞只占很少數(每10 4 ~10 6 個細胞中含有1個HBV DNA整合)[16-17] ,隨著宿主針對HBV免疫應答的激活,免疫反應傾向于靶向產生HBV聚合酶和HBeAg的肝細胞[18-19] ,這些HBV蛋白主要由cccDNA產生,而非整合形式的HBV DNA產生,因此宿主免疫主要靶向cccDNA轉錄活躍復制的肝細胞,這就導致含有cccDNA的感染肝細胞死亡,而含有HBV DNA整合的肝細胞出現選擇性克隆擴增(圖1)[20] 。同時,由于以微小染色體形式存在的cccDNA缺乏著絲粒,HBV感染的肝細胞可在有絲分裂過程中產生未受感染的子代細胞,導致殘存感染肝細胞中cccDNA池被稀釋,而整合在宿主基因組中的HBV DNA會隨著有絲分裂傳給子代肝細胞,從而導致HBV DNA整合得以保留。值得注意的是,子代肝細胞亦可發生新的感染,從而引發新的整合事件。這種清除、克隆擴增和再感染的循環會持續下去,導致血清病毒載量的波動,但HBsAg的波動幅度較小。這主要是因為HBV DNA整合來源的HBsAg占比會隨著含有HBV DNA整合的肝細胞比例的增加而增加,特別是在HBeAg陰性的CHB患者中,HBV DNA整合成為HBsAg的主要來源[21-23]。

血清中的HBV顆粒主要包含Dane顆粒、小球形顆粒和管型顆粒,以上這些病毒顆粒中HBsAg的主要成分是小HBsAg,中HBsAg僅占10%左右。管型顆粒和Dane顆粒含有約 25% 的大 HBsAg[24] 。無論是大 HBsAg、中HBsAg及小HBsAg,其都含有“a”決定簇,血清HBsAg的檢測試劑主要針對“a”決定簇設計。目前 ARCHITECTAlinityi HBsAg 檢測(雅培實驗室)和 Elecsys HBsAg ⅡQuant 檢測(羅氏診斷)在臨床上被廣泛使用,兩者的定量 HBsAg 結果均以 IU/mL 為單位。雖然 ArchitectHBsAg 和 Elecsys HBsAg Ⅱ均以 0. 05 IU/mL 為判定界值,但二者靈敏度并不相同[25] 。亦有研究提示,血清HBsAglt;0. 05 IU/mL并不能完全代表HBsAg清除[26-27]。

近期,有學者在一項包含36例患者的回顧性臨床研究中提出,雖然患者停止抗病毒治療時血清HBsAg低于0. 05 IU/mL,但仍有極低滴度的血清 HBsAg(0. 005 2~0. 05 IU/mL),這部分極低滴度 HBsAg 陽性的人群中62. 5%的患者在后續24周的隨訪中出現血清HBsAg復陽[27]。有研究提示,在傳統方法血清HBsAg檢測為陰性但HBV DNA為陽性的200名獻血員中使用高敏HBsAg檢測,其中5%仍被判定為陽性[28] 。采用高敏HBsAg檢測法(檢測限為0. 005 2 IU/mL)可使得隱匿性HBV感染者的檢測率提高5%~7%。同時,高敏HBsAg檢測法在急性HBV感染中可以更早地檢測出血清HBsAg,這提示高敏 HBsAg 檢測在后續判定 CHB 功能性治愈及明確HBV 復發中可能起到重要作用[28] 。除了檢測下限為0. 005 2 IU/mL 的高敏血清 HBsAg 檢測,超高靈敏定量HBsAg檢測試劑也被開發,其檢測下限為0. 000 5 IU/mL,較常規HBsAg檢測試劑檢測下限低100倍,除了檢測血清游離 HBsAg蛋白外,還能解離 HBsAg-抗 HBs免疫復合物,從而表現出更高的靈敏度;既往研究提示,在22例發生 HBV再激活的患者中,有 17例(77. 3%)可以通過超高靈敏HBsAg檢測確定基線血清HBsAg陽性[29]。

目前,CHB 功能性治愈治療終點中普遍接受將HBsAg檢測下限設置為 0. 05 IU/mL。針對臨床治療終點血清HBsAg檢測是否應該使用更加靈敏的方法仍存在爭議[27,30],未來需要進一步前瞻性多中心臨床隊列研究驗證高敏HBsAg檢測在功能性治愈終點中的評判效能。除了關注HBsAg檢測的靈敏度,仍需關注停止抗病毒治療后HBsAg低于檢測下限的維持時間(≥24周)及患者既往是否使用IFN鞏固治療等。既往研究提示,宿主免疫的恢復(高水平抗-HBs)和12~24周的PEG-IFN鞏固治療與血清 HBsAg 持續陰轉密切相關[4-5] 。另一方面,肝臟中微量轉錄活化的cccDNA可導致患者持續暴露于微量HBsAg,這部分患者仍有發生肝硬化、肝癌及HBV復發再激活的風險[31] 。同時,HBV DNA整合來源的HBsAg更易潴留于肝細胞內,未來需要進一步評估是否有必要將血清HBsAg與肝內HBsAg檢測結合,以評判肝內HBsAg清除情況。

當HBsAg的“a”決定簇突變時會影響HBsAg的檢測效能[32-34] 。如果AA141~145表位突變,則部分血清HBsAg檢測試劑無法識別HBsAg,臨床上會出現HBsAg檢測結果為陰性,但血清和/或肝臟中仍存在HBV DNA[31] 。新的HBsAg定量測定已經納入了一些經典的AA突變對檢測結果的影響,如sK122I、sI126S和sG145R[35] 。不同的HBsAg檢測試劑在靈敏度及檢測HBsAg突變時仍存在一定差異[36-37] 。T123A 突變在 Architect 測定中定量不足,而 sP142L、sP142S 和 sG145K 突變在 Elecsys HBsAgⅡ Quant檢測中的結果低于Architect[36] ,提示目前普遍使用的HBsAg檢測試劑在檢測HBsAg突變時存在一定差異。同時有研究報道,C、F和H基因型HBV的HBsAg蛋白中存在L110I突變,可損害HBsAg的抗原性,從而影響HBsAg的檢測,致使部分試劑在C基因型中的定量結果比預期值低[25]。除了HBsAg的突變影響檢測以外,血清HBsAg-抗HBs循環免疫復合物的形成也是HBsAg檢測為“陰性”的一個重要原因,但目前的Architect檢測和Elecsys HBsAg Ⅱ Quant 中均未加入上述“釋放”HBsAg-抗HBs循環免疫復合物中微量HBsAg的步驟[26,38] ,未來可能需要進一步優化試劑并進行深入研究。

1. 2 血清HBsAg成分 除了HBsAg總量的變化可以預測血清HBsAg清除外,血清HBsAg的成分變化亦與CHB功能性治愈密切相關。既往研究報道,血清HBsAg成分的比例在急性和慢性HBV感染的不同階段中并不相同,高水平的中 HBsAg 與 HBV 感染的高復制狀態密切相關[39]。多項研究提出,基線、12周時大HBsAg和中HBsAg水平可以預測非活動性HBsAg攜帶者使用PEG-IFN治療的血清HBsAg清除情況,并且預測值高于總HBsAg檢測[40-41] 。在NAs治療達HBsAg清除的患者中發現NAs治療第6個月時中HBsAg檢測不到,這種中HBsAg清除發生在總HBsAg清除前(12. 8±8. 7)個月,中HBsAg比例變化是 NAs治療后達 HBsAg清除的早期預測因子[41] 但HBsAg成分定量的大多數研究缺乏關于標準品使用的信息,因此很難獲得可比較的結果[42]。未來的HBsAg成分研究需要納入對標準品的描述,進一步明確其臨床預測價值。

1. 3 血清HBV DNA檢測下限 既往研究提示,采用普通方法檢測HBV DNA結果為陰性(lt;500 IU/mL)的標本,使用高靈敏度的HBV DNA檢測(檢測下限為10 IU/mL,低于10 IU/mL為陰性),其中63. 8%的標本被判斷為陽性[43] 。以上結果提示,隨著血清HBV DNA檢測下限越來越低,基于既往試劑檢測結果定義的CHB功能性治愈在使用更靈敏的檢測方法時可能會被歸為未治愈范疇。目前國際指南建議將 CHB 功能性治愈中的血清 HBVDNA陰性設置為低于檢測下限,即lt;10 IU/mL的水平[8] 。為了更好地定義 CHB 功能性治愈并排除間歇性 HBVDNA檢測陽性,建議至少間隔24周檢測血清HBV DNA持續低于檢測下限。目前,部分HBV DNA定量檢測試劑靈敏度可達到 5 IU/mL,未來是否需要更加靈敏的HBV DNA檢測試劑來定義CHB功能性治愈需要進一步深入探索[44]。

1. 4 乙型肝炎核心相關抗原(HBcrAg)及前基因組RNA(pgRNA) HBcrAg是一種新型血清標志物,由HBcAg、HBeAg和22 kD的前核蛋白(p22cr)組成。HBcrAg與傳統預測指標 HBsAg 及 ALT 相比,其預測 PEG-IFN 誘導的HBsAg清除的價值主要在于其可反應cccDNA的轉錄復制情況。同時有研究指出,停止抗病毒治療時血清HBcrAglt;4 log 10 U/mL可識別可能實現持久CHB功能性治愈的應答者[6]。隨著HBcrAg檢測靈敏度的提高,HBcrAg有望成為CHB 患者治療監測和預后判斷的重要血清學標志物之一[45]。

在隱匿性HBV感染合并HCC患者的癌旁組織中亦能發現肝內cccDNA及pgRNA,提示即使在HBV DNA低于檢測下限、甚至血清HBsAg轉陰后肝內HBV RNA仍可存在[46] 。前期研究亦發現,部分血清HBsAg陰性的患者肝內HBV RNA及HBsAg陽性,但其血清HBV RNA低于檢測下限,提示目前的血清HBV RNA檢測靈敏度尚不能準確反映肝內cccDNA的轉錄復制狀態[47] ,可能需要優化引物設計及提高靈敏度等,未來需大樣本的前瞻性研究進一步闡明其臨床診斷價值及意義。

2 肝內HBV標志物

HBV為嗜肝病毒,肝內HBV標志物較血清HBV標志物更能反映CHB功能性治愈患者的復發風險及預后。HBV的復制模板為肝內cccDNA,但在HBV復制的過程中可產生副產物 — —雙鏈線性 HBV DNA,其可整合入宿主基因組中。HBV DNA整合可以導致插入突變、染色體不穩定等,同時HBV DNA整合可插入多種癌癥通路相關宿主基因中,與HCC發生密切相關[17] 。值得注意的是,在患者達到功能性治愈血清HBsAg清除后,肝內的 cccDNA、HBV RNA、HBV DNA整合及其嵌合轉錄本水平明顯低于CHB未治愈患者,可能與血清HBsAg清除后患者的肝癌發生風險降低密切相關[47-48] 。同時,有31. 9%的血清HBsAg清除患者肝內cccDNA低于檢測下限,可以認為這些患者已接近徹底治愈,可能與 PEG-IFN通過免疫調節作用介導HBV感染的肝細胞破壞及cccDNA池稀釋相關[47]。有研究報道,使用更加靈敏的數字液滴PCR方法檢測cccDNA,發現CHB功能性治愈患者肝內cccDNA水平低于CHB患者50倍[49] 。然而,部分血清HBsAg清除的患者肝內仍可檢測到HBV RNA,提示肝內仍有微量轉錄活化的HBV DNA整合和/或cccDNA[47] 。同時,部分血清HBsAg清除患者肝內的HBV RNA低于檢測下限,肝組織測序亦未檢測到HBV DNA整合來源的嵌合轉錄本,這預示著肝內HBV可處于轉錄靜默狀態。需要關注在CHB功能性治愈患者中有兩種完全不同的肝內HBV轉錄模式,即持續微量轉錄活化及轉錄靜默,二者后續的預后及復發風險是否會不同,需要未來進一步深入研究。

研究[47] 發現,盡管患者血清HBsAglt;0. 05 IU/mL,但25%的患者肝內仍可殘存HBsAg,由此需考慮肝內HBsAg的來源并評估其與HBV復發的相關性。通過研究發現,這部分殘余的HBsAg主要來自活化轉錄的HBV DNA整合,少部分來源于微量轉錄活化的cccDNA。這種微量活化轉錄的 cccDNA 與患者隨訪過程中 HBV再激活密切相關,提示目前的 CHB 功能性治愈定義中的血清HBsAglt;0. 05 IU/mL并不能完全代表血清及肝內的HBsAg清除,需要關注血清-肝內HBsAg檢測差異機制,這對臨床決定停止抗病毒治療時機有著重要意義。這種血清-肝內HBsAg差異機制可能由三種原因所致:(1)目前血清HBsAg檢測試劑的靈敏度不夠,既往報道如果使用檢測下限為0. 005 2 IU/mL的血清HBsAg檢測試劑,90. 9%的血清HBsAg復陽患者(24周隨訪)在停止PEG-IFN治療時仍被判定為陽性(gt;0. 005 2 IU/mL),提示部分血清HBsAglt;0. 05 IU/mL的患者停止PEG-IFN治療時,其血清HBsAg 并未完全清除,肝內可能仍有微量轉錄活化的cccDNA及HBV DNA整合[27]。 (2)血清及肝內存在不同類型的HBsAg: HBV DNA整合表達的HBsAg分泌效率顯著低于cccDNA,可出現肝細胞內潴留,同時部分HBV突變同樣會影響HBsAg分泌[50-51] 。(3)血清中存在HBsAg-抗HBs循環免疫復合物遮蔽了HBsAg檢測位點:既往有研究在血清HBsAg陰性而HBeAg陽性的樣本中發現其中70%的樣本存在HBsAg-抗HBs循環免疫復合物,其為血清HBsAg檢測結果為“陰性”的一個重要原因[26] 。以上結果提示,目前的血清 HBsAglt;0. 05 IU/mL并不能完全反映血清HBsAg清除。同時有研究指出,在AAV-HBV小鼠模型中清除血液中的HBsAg并不能改善HBV特異性T淋巴細胞免疫,清除肝臟內的HBsAg才能打破HBV的免疫耐受[52-53] ,這提示需要同時關注血清和肝內HBsAg的檢測[22-23]。

3 完全治愈面臨的挑戰

3. 1 cccDNA的穩定持續存在 cccDNA以微小染色體的形式穩定存在于宿主細胞核內,是病毒的復制轉錄模板,其受到核膜的保護,難以被藥物或免疫因子直接影響。一方面,早期的研究普遍認為cccDNA的半衰期非常長,臨床研究模型推算發現NAs治療后HBV cccDNA清除期約為14. 5年[54] ,另有研究亦提示NAs治療患者血清HBsAg清除的中位時間為52. 2年[55] ,以上研究均提示患者可能需要長期口服NAs抗病毒治療。另一方面,雖然以拉米夫定耐藥位點作為特異性標記的研究發現cccDNA的半衰期約為6個月[56] ,但臨床中約有20%的接受規范NAs治療的患者其血清中仍存在低水平的HBV DNA,提示NAs競爭性抑制HBV DNA復制具有一定局限性,不能完全阻斷cccDNA池的補充[57] 。現有的NAs及PEG-IFN都不能直接清除cccDNA,目前針對HBV的治療手段仍具有一定局限性。雖然既往文獻報道肝細胞有絲分裂可導致殘存感染肝細胞中cccDNA池被稀釋,然而,HBV cccDNA在少數非增殖人肝細胞中持續存在,這些殘存的cccDNA是后期病毒學標志物再次反彈的重要原因[58] 。同時,低轉錄活性狀態的cccDNA更難被抗病毒藥物可及,治療難度增加[59] 。因此,未來不僅需要研發阻斷cccDNA池補充的抗病毒藥物,也需要對直接靶向清除cccDNA進行藥物研發。

3. 2 宿主針對 HBV清除的免疫無法恢復 慢性 HBV感染可使宿主適應性免疫及天然免疫反應網絡受損。

HBV除了可引起宿主T淋巴細胞耗竭外還影響固有免疫反應,特別是樹突狀細胞和巨噬細胞的抗原呈遞功能障礙,損害了固有免疫和適應性免疫的連接橋梁[60-62] 。既往研究發現,HBV抑制單核細胞向M1-MDM(M1-單核細胞來源的肝內巨噬細胞)分化,且增強了M2-MDM(M2-單核細胞來源的肝內巨噬細胞)的激活,從而增強肝臟免疫耐受狀態;同時,HBV感染期間IL-10表達上調會損害淋巴細胞功能,亦影響HBV清除[63] 。在慢性HBV感染患者中亦發現NK細胞免疫耐受及HBV特異性CD4 + 和CD8 + T淋巴細胞不能充分響應,同時HBsAg特異性B淋巴細胞存在成熟缺陷。以上均為慢性HBV感染持續存在的重要因素[62]。

3. 3 宿主遺傳因素影響藥物應答 不同CHB患者對抗病毒治療的反應存在差異,影響治療效果。目前有多項研究提示宿主遺傳因素對CHB患者的抗病毒應答發揮重要作用。有研究發現,位于 1 號染色體的 TP53BP2(rs7519753)與PEG-IFN治療后CHB患者的HBsAg清除有關。SNP rs7519753的C等位基因利于TP53BP2在肝臟中的高表達,TP53BP2 能夠增強 IFN-α 的抗病毒作用[64] 。同時亦有學者發現,STAT4(rs7574865)突變體與PEG-IFN治療患者的血清HBsAg清除之間存在顯著相關性。在B基因型HBV感染患者中,rs7574865 TT患者中有7. 7%的HBsAg清除,而NAs治療的患者中rs7574865基因型與血清HBsAg清除無關[65] 。以上研究提示宿主的遺傳因素在PEG-IFN治療中發揮重要作用,未來可通過檢測 rs7519753和 rs7574865的基因型來有效識別易于實現功能性治愈的CHB患者,實現個體化治療,提高治療成功率。

4 針對cccDNA的抗病毒治療

現有的NAs及PEG-IFN可以抑制病毒復制,但對于清除 cccDNA 并無有效作用。cccDNA 可通過細胞內循環和細胞外循環兩種途徑進行補充。含有rcDNA的核衣殼可轉運至細胞核以細胞內循環補充cccDNA池。同時,新合成的HBV DNA病毒顆粒亦可進入感染肝細胞內,脫去外膜的rcDNA進入細胞核內,形成cccDNA外循環補充。既往體內實驗報道,cccDNA主要來自細胞內循環,特別是來自新合成的病毒核衣殼補充,以維持cccDNA池[66-67] 。衣殼組裝調節劑或抑制劑可以通過阻斷核衣殼形成從而抑制HBV復制,阻礙cccDNA內循環補充,如ABI-H0731 和 RO7049389 可顯著減少 HBV DNA 和 HBVRNA[68-69] 。同時,針對HBV通過鈉離子-?;悄懰峁厕D運蛋白進入感染肝細胞的細胞外循環過程,Myrcludex-B可與病毒Pre-S1基序競爭鈉離子-?;悄懰峁厕D運蛋白結合,從而阻斷HBV感染[70] 。除了阻斷cccDNA的補充以外,最直接的抗 cccDNA 策略是特異性降解 cccDNA。近期有研究報道,口服小分子cccDNA抑制劑ccc_R08可有效降低cccDNA水平,而對線粒體DNA無明顯影響[71]。目前,基于CRISPR/Cas9的基因組編輯技術不僅能破壞HBV cccDNA,還能切割整合的HBV DNA,但該技術有誘導宿主基因組不穩定和癌變的風險[72]。除此以外,cccDNA的表觀遺傳修飾環節亦可調節沉默病毒基因轉錄,包括作用于cccDNA相關組蛋白的乙酰化和甲基化過程。除了上述非溶細胞效應相關的cccDNA清除外,亦可通過增強宿主免疫功能從而清除cccDNA,如Toll樣受體激動劑和程序性死亡受體1阻斷劑等。將阻斷HBV復制過程的抗病毒藥物與宿主免疫增強劑結合可增強抗病毒效應,是未來抗病毒治療趨勢[73]。

5 HBsAglt;100 IU/mL是CHB功能性治愈的替代治療結局嗎?

相較于血清HBsAg清除的患者,在臨床中有許多患者經過抗病毒治療后HBsAg下降并維持在低水平,但目前國際上針對血清HBsAglt;100 IU/mL的CHB患者繼續抗病毒治療追求血清HBsAg清除是否有更多臨床獲益存在爭論。血清HBsAglt;100 IU/mL的CHB患者發生肝硬化的累積風險為4. 8%,發生HCC的累積風險為1. 4%[74] 。有研究[74]報道,血清HBsAg水平在100~999 IU/mL組的患者相較于血清HBsAglt;100 IU/mL組患者,發生肝硬化及HCC的風險比分別為1. 68和2. 20;而在另一項針對HBeAg陰性患者的研究[75] 中,HBsAg水平在100~999 IU/mL組與HBsAglt;100 IU/mL組之間的HCC發生率并無差異。針對HBsAglt;100 IU/mL CHB患者的肝硬化及肝癌發生風險評估,未來需要前瞻性多中心研究進一步探索。前文已述HBV基因型、HBV DNA整合及HBsAg突變等可影響血清HBsAg分泌[27,32,47,50] ,筆者團隊建議在分析血清 HBsAg水平與HCC的風險時,需要納入上述因素對HBsAg分泌能力的影響,從而更加清晰地明確血清HBsAg水平分層與HCC發生風險的關系。

血清HBsAglt;100 IU/mL但HBV DNAgt;10 4 拷貝/mL的患者 HCC 發生風險較 HBsAglt;100 IU/mL 且 HBV DNAlt;10 4 拷貝/mL患者增加 1. 42倍,二者肝硬化發生風險無統計學意義[74] ,提示HBV DNA水平與低HBsAg水平人群發生HCC密切相關。有研究提示,雖然患者經抗病毒治療后血清HBsAg水平下降,但是中HBsAg水平的增加與HBV驅動的HCC密切相關[76] ,因此不建議僅關注血清HBsAg總量的變化,需要考慮HBsAg成分的變化,未來HBsAg成分檢測的臨床價值值得進一步研究。綜上所述,血清HBsAglt;100 IU/mL的患者仍有發生肝癌及肝硬化的風險,需要結合HBV DNA載量、是否合并肝硬化及 HBsAg 組成成分的變化等進行判斷,同時需要考慮HBeAg、HBV基因型對于肝硬化及HCC發生的影響。

一方面,有研究報道較低的血清HBsAg水平與停止NAs治療后血清HBsAg清除相關,特別是在血清HBsAglt;100 IU/mL和/或HBcrAg低于檢測下限的非亞裔患者中,同時HBV基因型亦會影響其血清HBsAg清除率[77]。值得注意的是停止NAs治療的相關研究異質性較大,薈萃分析提示停止NAs治療的患者中發生嚴重肝炎發作或肝功能失代償的患者比例約為1. 21%,肝炎發作相關死亡或肝移植患者的比例約為0. 37%。未來針對NAs停藥安全性仍需進行多中心的前瞻性研究,并有充足的隨訪時間和明確的研究結局定義[78]。另一方面,血清HBsAglt;100 IU/mL的患者接受PEG-IFN治療后的HBsAg清除率可達81. 1%,提示低血清HBsAg水平患者容易獲得HBsAg清除[79]。對于血清HBsAglt;100 IU/mL的患者接受NAs或PEG-IFN治療后的臨床獲益情況,未來需要在前瞻性臨床研究中進一步探索,明確抗病毒治療后和未抗病毒治療組血清HBsAglt;100 IU/mL的患者肝癌及肝硬化等發生率有無差異,以揭示此類患者經過抗病毒治療后是否有臨床獲益。

6 展望

CHB功能性治愈仍然是目前的理想治療終點,隨著研究的不斷深入,CHB功能性治愈患者部分可能已經達到cccDNA低于檢測下限,但由于cccDNA和HBV DNA整合位于細胞核內很難清除,目前的抗病毒治療方案仍較難達到CHB完全治愈。

目前,針對cccDNA及HBV DNA整合的新藥研發仍在進行中,siRNA和反義RNA可以通過結合cccDNA與HBV DNA整合來源的靶mRNA,靶向HBV RNA轉錄后調控,從而沉默其表達。同時,基因編輯技術針對清除cccDNA及整合HBV DNA亦有一定前景。隨著更高靈敏的CHB功能性治愈血清學標志物的開發及更加有效的抗病毒治療策略的產生,相信,對于CHB可以無限趨近于完全治愈。

利益沖突聲明: 本文不存在任何利益沖突。

作者貢獻聲明: 高娜負責文章撰寫;高志良負責擬定寫作思路,指導文章撰寫,修改論文并最后定稿。

參考文獻:

[1] WHO. World health statistics 2022: monitoring health for the SDGs,sustainable development goals[M]. Geneva: World Health Organi?zation, 2022.

[2] JENG WJ, PAPATHEODORIDIS GV, LOK A. Hepatitis B[J]. Lancet,2023, 401(10381): 1039-1052. DOI: 10.1016/S0140-6736(22)01468-4.

[3] Chinese Society of Infectious Disease, Chinese Society of Hepatol?ogy, Chinese Medical Association. The expert consensus on func?tional cure of chronic hepatitis B[J]. J Clin Hepatol, 2019, 35(8):1693-1701. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2019.08.008.中華醫學會感染病學分會, 中華醫學會肝病學分會. 慢性乙型肝炎臨床治愈(功能性治愈)專家共識[J]. 臨床肝膽病雜志, 2019, 35(8): 1693-1701. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2019.08.008.

[4] LI MH, SUN FF, BI XY, et al. Consolidation treatment needed for sus?tained HBsAg-negative response induced by interferon-alpha in HBeAgpositive chronic hepatitis B patients[J]. Virol Sin, 2022, 37(3): 390-397. DOI: 10.1016/j.virs.2022.03.001.

[5] GAO N, YU HY, ZHANG J, et al. Role of hepatitis B surface antibodyin seroreversion of hepatitis B surface antigen in patients achievinghepatitis B surface antigen loss with pegylated interferon-based therapy

[J]. J Viral Hepat, 2022, 29(10): 899-907. DOI: 10.1111/jvh.13734.

[6] HUANG D, WU D, WANG P, et al. End-of-treatment HBcrAg and HB?sAb levels identify durable functional cure after Peg-IFN-based therapyin patients with CHB[J]. J Hepatol, 2022, 77(1): 42-54. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.01.021.

[7] LOK AS, ZOULIM F, DUSHEIKO G, et al. Durability of hepatitis B sur?face antigen loss with nucleotide analogue and peginterferon therapyin patients with chronic hepatitis B[J]. Hepatol Commun, 2019, 4(1):8-20. DOI: 10.1002/hep4.1436.

[8] GHANY MG, BUTI M, LAMPERTICO P, et al. Guidance on treatmentendpoints and study design for clinical trials aiming to achieve curein chronic hepatitis B and D: report from the 2022 AASLD-EASL HBV-HDV treatment endpoints conference[J]. J Hepatol, 2023, 79(5): 1254-1269. DOI: 10.1016/j.jhep.2023.06.002.

[9] CORNBERG M, LOK AS, TERRAULT NA, et al. Guidance for designand endpoints of clinical trials in chronic hepatitis B-report from the2019 EASL-AASLD HBV treatment endpoints conference(double dag?ger)[J]. J Hepatol, 2020, 72(3): 539-557. DOI: 10.1016/j.jhep.2019.11.003.

[10] YIP TCF, WONG GLH, CHAN HLY, et al. HBsAg seroclearance fur?ther reduces hepatocellular carcinoma risk after complete viral sup?pression with nucleos(t)ide analogues[J]. J Hepatol, 2019, 70(3):361-370. DOI: 10.1016/j.jhep.2018.10.014.

[11] XIE C, XIE D, XU Q, et al. The everest project's 5-year update: effi?cacy of PEG-IFNα therapy in NA-suppressed HBeAg negative CHB

[R]. Kyoto: APASL, 2024.

[12] HU P, SHANG J, ZHANG WH, et al. HBsAg loss with peg-interferonAlfa-2a in hepatitis B patients with partial response to nucleos(t)ideanalog: New switch study[J]. J Clin Transl Hepatol, 2018, 6(1): 25-34. DOI: 10.14218/JCTH.2017.00072.

[13] VITTAL A, SHARMA D, HU A, et al. Systematic review with meta-analysis: The impact of functional cure on clinical outcomes in pa?tients with chronic hepatitis B[J]. Aliment Pharmacol Ther, 2022, 55(1): 8-25. DOI: 10.1111/apt.16659.

[14] HU Y, YE YZ, YE LJ, et al. Efficacy and safety of interferon alpha-2bversus pegylated interferon alpha-2a monotherapy in children withchronic hepatitis B: A real-life cohort study from Shanghai, China

[J]. World J Pediatr, 2019, 15(6): 595-600. DOI: 10.1007/s12519-019-00303-w.

[15] ZHONG WT, YAN LZ, ZHU YG, et al. A high functional cure rate wasinduced by pegylated interferon alpha-2b treatment in postpartumhepatitis B e antigen-negative women with chronic hepatitis B virusinfection: An exploratory study[J]. Front Cell Infect Microbiol, 2024,14: 1426960. DOI: 10.3389/fcimb.2024.1426960.

[16] TU T, BUDZINSKA MA, VONDRAN FWR, et al. Hepatitis B virusDNA integration occurs early in the viral life cycle in an in vitro in?fection model via sodium taurocholate cotransporting polypeptide-dependent uptake of enveloped virus particles[J]. J Virol, 2018, 92(11): e02007-17. DOI: 10.1128/JVI.02007-17.

[17] TU T, BUDZINSKA MA, SHACKEL NA, et al. HBV DNA integration:Molecular mechanisms and clinical implications[J]. Viruses, 2017, 9(4): 75. DOI: 10.3390/v9040075.

[18] TU T, ZEHNDER B, QU BQ, et al. De novo synthesis of hepatitis B vi?rus nucleocapsids is dispensable for the maintenance and transcrip?tional regulation of cccDNA[J]. JHEP Rep, 2020, 3(1): 100195. DOI:10.1016/j.jhepr.2020.100195.

[19] CHUA CG, MEHROTRA A, MAZZULLI T, et al. Optimized ex vivostimulation identifies multi-functional HBV-specific T cells in a ma?jority of chronic hepatitis B patients[J]. Sci Rep, 2020, 10(1): 11344.DOI: 10.1038/s41598-020-68226-5.

[20] MASON WS, GILL US, LITWIN S, et al. HBV DNA integration andclonal hepatocyte expansion in chronic hepatitis B patients consid?ered immune tolerant[J]. Gastroenterology, 2016, 151(5): 986-998.e4. DOI: 10.1053/j.gastro.2016.07.012.

[21] MEIER MA, CALABRESE D, SUSLOV A, et al. Ubiquitous expressionof HBsAg from integrated HBV DNA in patients with low viral load[J].J Hepatol, 2021, 75(4): 840-847. DOI: 10.1016/j.jhep.2021.04.051.

[22] RINGLANDER J, SKOGLUND C, PRAKASH K, et al. Deep sequenc?ing of liver explant transcriptomes reveals extensive expression fromintegrated hepatitis B virus DNA[J]. J Viral Hepat, 2020, 27(11):1162-1170. DOI: 10.1111/jvh.13356.

[23] TU T, ZHANG H, URBAN S. Hepatitis B virus DNA integration: in vi?tro models for investigating viral pathogenesis and persistence[J].Viruses, 2021, 13(2): 180. DOI: 10.3390/v13020180.

[24] VAILLANT A. HBsAg, subviral particles, and their clearance in es?tablishing a functional cure of chronic hepatitis B virus infection[J].ACS Infect Dis, 2021, 7(6): 1351-1368. DOI: 10.1021/acsinfecdis.0c00638.

[25] THIBAULT V, SERVANT-DELMAS A, LY TD, et al. Performance ofHBsAg quantification assays for detection of hepatitis B virus geno?types and diagnostic escape-variants in clinical samples[J]. J ClinVirol, 2017, 89: 14-21. DOI: 10.1016/j.jcv.2017.02.001.

[26] YAN Y, SUN HZ, CHANG L, et al. Circulating immune complexesand mutations of HBsAg are associated with the undetectable HB?sAg in anti-HBs and HBeAg positive occult hepatitis B virus infection

[J]. Front Microbiol, 2022, 13: 1063616. DOI: 10.3389/fmicb.2022.1063616.

[27] ANDERSON M, HOLZMAYER V, STEC M, et al. Ultrasensitive HBsAgtesting predicts HBsAg seroreversion outcomes: Considerations fornew and existing therapies[J]. J Hepatol, 2024, 81(1): e24-e25. DOI:10.1016/j.jhep.2023.11.018.

[28] WONG DKH, CHEN C, MAK LY, et al. Detection of the hepatitis Bsurface antigen in patients with occult hepatitis B by use of an assaywith enhanced sensitivity[J]. J Clin Microbiol, 2022, 60(2): e0220421.DOI: 10.1128/jcm.02204-21.

[29] KUSUMOTO S, TANAKA Y, SUZUKI R, et al. Ultra-high sensitivityHBsAg assay can diagnose HBV reactivation following rituximab-based therapy in patients with lymphoma[J]. J Hepatol, 2020, 73(2): 285-293. DOI: 10.1016/j.jhep.2020.03.009.

[30] GHANY MG, BUTI M, LAMPERTICO P, et al. Reply to: “ultrasensi?tive HBsAg testing predicts HBsAg seroreversion outcomes: Consid?erations for new and existing therapies”[J]. J Hepatol, 2024, 81(1): e26-e27. DOI: 10.1016/j.jhep.2024.03.001.

[31] MAK LY, WONG DKH, POLLICINO T, et al. Occult hepatitis B infec?tion and hepatocellular carcinoma: Epidemiology, virology, hepato?carcinogenesis and clinical significance[J]. J Hepatol, 2020, 73(4):952-964. DOI: 10.1016/j.jhep.2020.05.042.

[32] XIANG KH, MICHAILIDIS E, DING H, et al. Effects of amino acidsubstitutions in hepatitis B virus surface protein on virion secretion,antigenicity, HBsAg and viral DNA[J]. J Hepatol, 2017, 66(2): 288-296. DOI: 10.1016/j.jhep.2016.09.005.

[33] DEGUCHI M, YAMASHITA N, KAGITA M, et al. Quantitation of hepati?tis B surface antigen by an automated chemiluminescent micropar?ticle immunoassay[J]. J Virol Methods, 2004, 115(2): 217-222. DOI:10.1016/j.jviromet.2003.10.002.

[34] LEE HJ, KIM SY, LEE SM, et al. Elecsys hepatitis B surface antigenquantitative assay: Performance evaluation and correlation with hepati?tis B virus DNA during 96 weeks of follow-up in chronic hepatitis Bpatients[J]. Ann Lab Med, 2012, 32(6): 420-425. DOI: 10.3343/alm.2012.32.6.420.

[35] THIBAULT V, LAPERCHE S, AKHAVAN S, et al. Impact of hepatitisB virus genotypes and surface antigen variants on the performanceof HBV real time PCR quantification[J]. J Virol Methods, 2009, 159(2): 265-270. DOI: 10.1016/j.jviromet.2009.04.014.

[36] VERHEYEN J, NEUMANN-FRAUNE M, BERG T, et al. The detectionof HBsAg mutants expressed in vitro using two different quantitativeHBsAg assays[J]. J Clin Virol, 2012, 54(3): 279-281. DOI: 10.1016/j.jcv.2012.04.010.

[37] WILKINSON DE, SEIZ PL, SCHüTTLER CG, et al. International col?laborative study on the 3rd WHO International Standard for hepatitisB surface antigen[J]. J Clin Virol, 2016, 82: 173-180. DOI: 10.1016/j.jcv.2016.06.003.

[38] WANG ZL, ZHENG JR, YANG RF, et al. An ideal hallmark closest tocomplete cure of chronic hepatitis B patients: High-sensitivity quan?titative HBsAg loss[J]. J Clin Transl Hepatol, 2023, 11(1): 197-206.DOI: 10.14218/JCTH.2022.00289.

[39] PFEFFERKORN M, B?HM S, SCHOTT T, et al. Quantification oflarge and middle proteins of hepatitis B virus surface antigen (HB?sAg) as a novel tool for the identification of inactive HBV carriers[J].Gut, 2018, 67(11): 2045-2053. DOI: 10.1136/gutjnl-2017-313811.

[40] LIN X, ZHENG YH, LI H, et al. Serum hepatitis B virus large and me?dium surface proteins as novel tools for predicting HBsAg clearance

[J]. Front Immunol, 2022, 13: 1028921. DOI: 10.3389/fimmu.2022.1028921.

[41] PFEFFERKORN M, SCHOTT T, B?HM S, et al. Composition of HB?sAg is predictive of HBsAg loss during treatment in patients withHBeAg-positive chronic hepatitis B[J]. J Hepatol, 2021, 74(2): 283-292. DOI: 10.1016/j.jhep.2020.08.039.

[42] PFEFFERKORN M, van B?MMEL F. Commentary: Serum hepatitis Bvirus large and medium surface proteins as novel tools for predictingHBsAg clearance[J]. Front Immunol, 2022, 13: 1081730. DOI: 10.3389/fimmu.2022.1081730.

[43] LU JH, YANG L, ZHAO ZX, et al. Comparative study of high? sensi?tivity and conventional fluorescence quantitative PCR in the monitor?ing of antiviral efficacy in patients with chronic hepatitis B[J]. J Mol Di?agn Ther, 2019, 11(5): 361-364. DOI: 10.3969/j.issn.1674-6929.2019.05.005.盧建華, 楊莉, 趙召霞, 等. 高敏與普通熒光定量PCR技術在慢乙肝患者抗病毒療效監測中的對比研究[J]. 分子診斷與治療雜志, 2019, 11(5):361-364. DOI: 10.3969/j.issn.1674-6929.2019.05.005.

[44] FENG B, ZHENG JR, WANG ZL. Clinical value of highly sensitivehepatitis B virus surface antigen and DNA assays[J]. Chin J Lab Med,2023, 46(1): 7-11. DOI: 10.3760/cma.j.cn114452-20220817-00475.封波, 鄭佳睿, 王資隆. 高靈敏乙型肝炎病毒表面抗原和DNA檢測的臨床應用價值[J]. 中華檢驗醫學雜志, 2023, 46(1): 7-11. DOI: 10.3760/cma.j.cn114452-20220817-00475.

[45] INOUE T, KUSUMOTO S, IIO E, et al. Clinical efficacy of a novel,high-sensitivity HBcrAg assay in the management of chronic hepatitisB and HBV reactivation[J]. J Hepatol, 2021, 75(2): 302-310. DOI: 10.1016/j.jhep.2021.02.017.

[46] WONG DKH, HUANG FY, LAI CL, et al. Occult hepatitis B infectionand HBV replicative activity in patients with cryptogenic cause ofhepatocellular carcinoma[J]. Hepatology, 2011, 54(3): 829-836. DOI:10.1002/hep.24551.

[47] GAO N, GUAN GW, XU GL, et al. Integrated HBV DNA and cccDNAmaintain transcriptional activity in intrahepatic HBsAg-positive patientswith functional cure following PEG-IFN-based therapy[J]. AlimentPharmacol Ther, 2023, 58(10): 1086-1098. DOI: 10.1111/apt.17670.

[48] YU XQ, GONG QM, YU DM, et al. Spatial transcriptomics reveals alow extent of transcriptionally active hepatitis B virus integration inpatients with HBsAg loss[J]. Gut, 2024, 73(5): 797-809. DOI: 10.1136/gutjnl-2023-330577.

[49] NARMADA BC, KHAKPOOR A, SHIRGAONKAR N, et al. Single-celllandscape of functionally cured chronic hepatitis B patients revealsactivation of innate and altered CD4-CTL-driven adaptive immunity

[J]. J Hepatol, 2024, 81(1): 42-61. DOI: 10.1016/j.jhep.2024.02.017.

[50] GU ZQ, JIANG QQ, ABULAITI A, et al. Hepatitis B virus enhancer 1activates preS1 and preS2 promoters of integrated HBV DNA impairingHBsAg secretion[J]. JHEP Rep, 2024, 6(9): 101144. DOI: 10.1016/j.jhepr.2024.101144.

[51] LIANG YJ, TENG W, CHEN CL, et al. Clinical implications of HBVPreS/S mutations and the effects of PreS2 deletion on mitochondria,liver fibrosis, and cancer development[J]. Hepatology, 2021, 74(2):641-655. DOI: 10.1002/hep.31789.

[52] MICHLER T, ZILLINGER J, HAGEN P, et al. The lack of HBsAg se?cretion does neither facilitate induction of antiviral T cell responsesnor hepatitis B virus clearance in mice[J]. Antiviral Res, 2024, 226:105896. DOI: 10.1016/j.antiviral.2024.105896.

[53] YANG SS, ZENG WJ, ZHANG JM, et al. Restoration of a functionalantiviral immune response to chronic HBV infection by reducingviral antigen load: If not sufficient, is it necessary?[J]. EmergMicrobes Infect, 2021, 10(1): 1545-1554. DOI: 10.1080/22221751.2021.1952851.

[54] WERLE-LAPOSTOLLE B, BOWDEN S, LOCARNINI S, et al. Persis?tence of cccDNA during the natural history of chronic hepatitis Band decline during adefovir dipivoxil therapy[J]. Gastroenterology,2004, 126(7): 1750-1758. DOI: 10.1053/j.gastro.2004.03.018.

[55] CHEVALIEZ S, HéZODE C, BAHRAMI S, et al. Long-term hepatitis Bsurface antigen (HBsAg) kinetics during nucleoside/nucleotide ana?logue therapy: Finite treatment duration unlikely[J]. J Hepatol, 2013,58(4): 676-683. DOI: 10.1016/j.jhep.2012.11.039.

[56] HUANG Q, ZHOU B, CAI DW, et al. Rapid turnover of hepatitis B vi?rus covalently closed circular DNA indicated by monitoring emer?gence and reversion of signature-mutation in treated chronic hepatitisB patients[J]. Hepatology, 2021, 73(1): 41-52. DOI: 10.1002/hep.31240.

[57] LU FM, FENG B, ZHENG SJ, et al. Current status of the research onlow-level viremia in chronic hepatitis B patients receiving nucleos(t)ideanalogues[J]. J Clin Hepatol, 2021, 37(6): 1268-1274. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2021.06.007.魯鳳民, 封波, 鄭素軍, 等. 核苷(酸)類似物經治的慢性乙型肝炎患者低病毒血癥的研究現狀[J]. 臨床肝膽病雜志, 2021, 37(6): 1268-1274.DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2021.06.007.

[58] ALLWEISS L, VOLZ T, GIERSCH K, et al. Proliferation of primary hu?man hepatocytes and prevention of hepatitis B virus reinfection effi?ciently deplete nuclear cccDNA in vivo[J]. Gut, 2018, 67(3): 542-552.DOI: 10.1136/gutjnl-2016-312162.

[59] WANG Y, LI YM, ZAI WJ, et al. HBV covalently closed circular DNAminichromosomes in distinct epigenetic transcriptional states differin their vulnerability to damage[J]. Hepatology, 2022, 75(5): 1275-1288. DOI: 10.1002/hep.32245.

[60] MICHLER T, KOSINSKA AD, FESTAG J, et al. Knockdown of virusantigen expression increases therapeutic vaccine efficacy in high-ti?ter hepatitis B virus carrier mice[J]. Gastroenterology, 2020, 158(6):1762-1775. e9. DOI: 10.1053/j.gastro.2020.01.032.

[61] IANNACONE M, GUIDOTTI LG. Immunobiology and pathogenesisof hepatitis B virus infection[J]. Nat Rev Immunol, 2022, 22(1): 19-32. DOI: 10.1038/s41577-021-00549-4.

[62] ZHENG PY, DOU YQ, WANG QY. Immune response and treatmenttargets of chronic hepatitis B virus infection: Innate and adaptiveimmunity[J]. Front Cell Infect Microbiol, 2023, 13: 1206720. DOI: 10.3389/fcimb.2023.1206720.

[63] FAURE-DUPUY S, DELPHIN M, AILLOT L, et al. Hepatitis B virus-in?duced modulation of liver macrophage function promotes hepato?cyte infection[J]. J Hepatol, 2019, 71(6): 1086-1098. DOI: 10.1016/j.jhep.2019.06.032.

[64] GUAN GW, ZHANG T, NING J, et al. Higher TP53BP2 expression isassociated with HBsAg loss in peginterferon-α-treated patients withchronic hepatitis B[J]. J Hepatol, 2024, 80(1): 41-52. DOI: 10.1016/j.jhep.2023.09.039.

[65] CHEN HT, SUN J, ZHOU B, et al. Variants in STAT4 associated withcure of chronic HBV infection in HBeAg-positive patients treatedwith pegylated interferon-alpha[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2020,18(1): 196-204. e8. DOI: 10.1016/j.cgh.2019.04.044.

[66] WU TT, COATES L, ALDRICH CE, et al. In hepatocytes infected withduck hepatitis B virus, the template for viral RNA synthesis is ampli?fied by an intracellular pathway[J]. Virology, 1990, 175(1): 255-261.DOI: 10.1016/0042-6822(90)90206-7.

[67] ZOULIM F. New insight on hepatitis B virus persistence from thestudy of intrahepatic viral cccDNA[J]. J Hepatol, 2005, 42(3): 302-308. DOI: 10.1016/j.jhep.2004.12.015.

[68] YUEN MF, AGARWAL K, GANE EJ, et al. Safety, pharmacokinetics,and antiviral effects of ABI-H0731, a hepatitis B virus core inhibitor:A randomised, placebo-controlled phase 1 trial[J]. Lancet Gastro?enterol Hepatol, 2020, 5(2): 152-166. DOI: 10.1016/S2468-1253(19)30346-2.

[69] YUEN MF, ZHOU X, GANE E, et al. Safety, pharmacokinetics, andantiviral activity of RO7049389, a core protein allosteric modulator, inpatients with chronic hepatitis B virus infection: A multicentre, ran?domised, placebo-controlled, phase 1 trial[J]. Lancet GastroenterolHepatol, 2021, 6(9): 723-732. DOI: 10.1016/S2468-1253(21)00176-X.

[70] CHENG DL, HAN B, ZHANG W, et al. Clinical effects of NTCP-inhibi?tor myrcludex B[J]. J Viral Hepat, 2021, 28(6): 852-858. DOI:10.1111/jvh.13490.

[71] WANG L, ZHU QH, ZHANG JD, et al. Discovery of a first-in-classorally available HBV cccDNA inhibitor[J]. J Hepatol, 2023, 78(4):742-753. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.12.014.

[72] PONDé RAA, AMORIM GSP. Elimination of the hepatitis B virus: Agoal, a challenge[J]. Med Res Rev, 2024, 44(5): 2015-2034. DOI:10.1002/med.22030.

[73] LIM SG, BAUMERT TF, BONI C, et al. The scientific basis of combi?nation therapy for chronic hepatitis B functional cure[J]. Nat RevGastroenterol Hepatol, 2023, 20(4): 238-253. DOI: 10.1038/s41575-022-00724-5.

[74] LEE MH, YANG HI, LIU J, et al. Prediction models of long-term cir?rhosis and hepatocellular carcinoma risk in chronic hepatitis B pa?tients: Risk scores integrating host and virus profiles[J]. Hepatol?ogy, 2013, 58(2): 546-554. DOI: 10.1002/hep.26385.

[75] TSENG TC, LIU CJ, CHEN CL, et al. Risk stratification of hepatocel?lular carcinoma in hepatitis B virus e antigen-negative carriers bycombining viral biomarkers[J]. J Infect Dis, 2013, 208(4): 584-593.DOI: 10.1093/infdis/jit209.

[76] BRANCACCIO G, SALPINI R, PIERMATTEO L, et al. An increase inthe levels of middle surface antigen characterizes patients develop?ing HBV-driven liver cancer despite prolonged virological sup?pression[J]. Microorganisms, 2021, 9(4): 752. DOI: 10.3390/micro?organisms9040752.

[77] SONNEVELD MJ, CHIU SM, PARK JY, et al. Probability of HBsAgloss after nucleo(s)tide analogue withdrawal depends on HBVgenotype and viral antigen levels[J]. J Hepatol, 2022, 76(5): 1042-1050. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.01.007.

[78] TSENG CH, CHEN TH, WU JL, et al. Serious adverse events aftercessation of nucleos(t)ide analogues in individuals with chronichepatitis B: A systematic review and meta-analysis[J]. JHEP Rep,2022, 5(1): 100617. DOI: 10.1016/j.jhepr.2022.100617.

[79] WEN CJ, WANG YX, TIAN HY, et al. Clinical cure induced by pe?gylated interferon α-2b in the advantaged population of chronichepatitis B virus infection: A retrospective cohort study[J]. FrontCell Infect Microbiol, 2024, 13: 1332232. DOI: 10.3389/fcimb.2023.1332232.

收稿日期:2024-10-17;錄用日期:2024-11-29

本文編輯:劉曉紅

主站蜘蛛池模板: 成人字幕网视频在线观看| 色一情一乱一伦一区二区三区小说 | 在线观看亚洲人成网站| 青青操国产视频| 国产九九精品视频| 亚洲美女一级毛片| 无码在线激情片| 国产无码制服丝袜| 国产国模一区二区三区四区| 制服丝袜亚洲| 国产精品香蕉在线观看不卡| 激情亚洲天堂| 精品国产免费第一区二区三区日韩| 97se亚洲| 精品福利视频网| 国产综合欧美| 日韩视频免费| 日本成人精品视频| 综合五月天网| 2020精品极品国产色在线观看 | 99ri精品视频在线观看播放| 波多野吉衣一区二区三区av| 亚洲丝袜第一页| 专干老肥熟女视频网站| 久久国产黑丝袜视频| 国产男人的天堂| 最新国语自产精品视频在| 亚洲va在线观看| 91偷拍一区| 久青草免费视频| 谁有在线观看日韩亚洲最新视频| 精品无码专区亚洲| 亚洲综合精品香蕉久久网| 操操操综合网| 在线观看无码a∨| 国产午夜无码专区喷水| 一本久道久久综合多人| 国产黄色片在线看| 国产av色站网站| 午夜欧美在线| 亚洲av无码人妻| 亚洲天堂日韩在线| 国产天天射| 欧美国产日韩在线观看| 蜜臀av性久久久久蜜臀aⅴ麻豆| 一级黄色网站在线免费看| 国产SUV精品一区二区6| 四虎国产永久在线观看| 1级黄色毛片| 久久精品丝袜高跟鞋| 欧洲高清无码在线| 欧美亚洲第一页| 奇米影视狠狠精品7777| 国产对白刺激真实精品91| 国产精品一区二区不卡的视频| 99精品福利视频| 亚卅精品无码久久毛片乌克兰| 99一级毛片| 亚洲一区二区三区麻豆| 亚洲AV无码久久精品色欲| 国产成人夜色91| 欧美日韩一区二区在线播放| 国产人成在线观看| 99999久久久久久亚洲| 狼友视频国产精品首页| 亚洲av无码片一区二区三区| 亚洲三级电影在线播放| 又大又硬又爽免费视频| 亚洲av片在线免费观看| 91在线激情在线观看| 尤物午夜福利视频| 日韩午夜福利在线观看| 老汉色老汉首页a亚洲| 亚洲天天更新| 精品综合久久久久久97| 九九这里只有精品视频| 欧美综合成人| 亚洲欧美日韩精品专区| 亚洲人人视频| 国产精品亚洲综合久久小说| 九色综合视频网| 国内毛片视频|