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豬傳染性胸膜肺炎的診斷技術

2010-05-31 08:48:34謝芳張艷禾司微劉思國王春來
獸醫導刊 2010年9期
關鍵詞:血清檢測方法

謝芳,張艷禾,司微,劉思國,王春來

(中國農業科學院哈爾濱獸醫研究所,獸醫生物技術國家重點實驗室動物細菌病研究室, 黑龍江哈爾濱 150001)

豬傳染性胸膜肺炎(PCP),是一種高度傳染性、致死性的呼吸系統傳染病。該病的主要特征是急性與亞急性病例呈現纖維素性出血性胸膜肺炎、慢性病例呈現纖維素性壞死性胸膜肺炎。1957年,英國人Pattison等首次發現該病,目前已在世界各國廣泛流行,造成巨大的經濟損失,嚴重阻礙了世界養豬業的健康發展,成為國際公認的危害現代化養豬業的重要傳染病之一。隨著現代養殖業規模化、集約化的發展,本病的發生呈暴發趨勢,并且近年來該病常與其它呼吸系統疾病繼發感染或混合感染,如該病與豬藍耳病、豬偽狂犬病、豬支原體肺炎、豬肺疫、副豬嗜血桿菌病等混合感染,加重了其危害性。目前,該病引起了國內外研究者的廣泛關注,是豬細菌性傳染病研究的熱點之一。1987年,哈爾濱獸醫研究所首次在我國報道該病,此后在許多省市陸續發現該病。2006年,對洛陽地區規?;i場進行血清學調查,陽性率為30.39%,2009年,對四川部分地區的1062份非免疫豬血清進行檢測,平均陽性率為18.5%。

一、病原學

該病的致病菌是胸膜肺炎放線桿菌(APP),最初被稱為副溶血嗜血桿菌或胸膜肺炎嗜血桿菌。1953年,Pohl等通過DNA雜交試驗表明,該菌與林氏放線桿菌關系密切,因此將其劃歸于巴氏桿菌科,放線桿菌屬,并命名為胸膜肺炎放線桿菌。

(一)生物學特性 APP為革蘭氏陰性球桿菌,具有多形態,常呈小桿菌或球桿菌。兼性厭氧,具有莢膜和纖毛,不形成芽孢。近年來研究發現該菌有鞭毛,具有運動性,長約3μm,寬約0.5μm 。

APP的培養特性:該菌生長的最適溫度為37℃,最佳pH值為7.6~7.8,供給5%~10%CO2會促進其生長發育。該菌營養要求較高,在普通瓊脂平板不生長,最適生長的培養基為巧克力瓊脂平板、綿羊血瓊脂平板及馬血清肉湯平板等。該菌對外界環境條件抵抗力不強,不能在外界環境中持續存在,60℃加熱15 min即死亡,對日光、干燥和一般化學消毒劑抵抗力低,1%漂白粉、1:100百毒殺都可在2 min使其滅活。但對結晶紫、桿菌肽、壯觀霉素和林肯霉素等有一定的抵抗力。

APP的形態特征:該菌在綿羊鮮血瓊脂平板上37℃培養24 h后,菌落呈圓型、針尖大小、邊緣整齊、中間稍凸,呈β溶血;以同樣條件在巧克力瓊脂平板上培養,菌落形態會稍大。在綿羊鮮血瓊脂平板上培養時,金黃色葡萄球菌的劃線兩側,能夠加重溶血區,稱為“cAMP”現象。將1%NAD液交叉劃線于馬血清肉湯瓊脂平板上,37℃培養18 h后,畫線近端處的菌落生長旺盛,遠端生長較少,稱為“衛星”現象,此為該菌生物Ⅰ型的典型特征。生物Ⅱ型不需要NAD就可生長,其它特征同生物Ⅰ型。

(二)血清分型 根據APP的生長是否需要煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD,又稱V因子),可將APP分為生物I型和生物Ⅱ型。生物I型生長需要NAD,生物Ⅱ型生長可不需要NAD,但需要其它特定的吡啶核苷酸或其前體以合成NAD。

根據APP表面莢膜(CPS)和脂多糖(LPS)抗原性的不同,可將APP分為15個血清型,血清1型又分為1a和1b兩個亞型,血清5型又分為5a和5b兩個亞型;血清型1~12、15屬于生物I型,血清型13、14屬于生物Ⅱ型。此外,還有一些分離到的APP依據現在的分類系統還不能劃分其血清型。

APP的15種血清型都能致病,但毒力存在明顯差異,其中血清型1、5、9和11被認為毒力最強,常見于急性暴發、高死亡率和肺臟出現嚴重病變;其它血清型的毒力較弱,被認為毒力最低的是血清3型和6型。

APP不同血清型的免疫原性也存在很大的差別,血清型間不存在交叉保護,針對某一血清型的滅活苗無法對APP其它血清型提供保護。然而有些血清型的菌株之間有相似的膜蛋白或脂多糖成分,引起了血清學交叉反應,給該病的分型診斷造成了一定的困難,如在血清型l與7之間,l、9及11之間,3、6及8之間,4與7之間。

二、流行病學

該病分布廣泛,流行于世界各國。各個國家和地區流行的血清型不同,如歐洲流行的血清型主要為1、2、5、7和9型;美國流行的血清型主要為l、5和7型;加拿大流行的血清型主要為1、3和5型;日本流行的血清型主要為5、6和7型;我國流行的血清型主要為1、3、5和7型。隨著各國之間引進種豬的不斷增多,血清型也更復雜。一些國家或地區可能同時流行多個血清型,甚至同一豬場內還可能存在不同血清型。存在于我國的APP血清型非常多,目前已發現并分離到血清型1、2、3、4、5、7、8和15等多種血清型。

該病于氣候驟變時多發,如冬末春初或夏末秋初;夏季也時有發生。飼養條件差可誘發該病,如飼養密度過高、圈舍潮濕、通風不良、塵埃多等不良因素。各種年齡的豬均對APP易感,3~4月齡豬多發,成年種公母豬也有散發。

該病主要由空氣傳播、接觸病豬及其污染物傳播,引進帶菌豬或慢性感染豬是其最主要的傳播途徑,從而造成未感染該病的豬群發病。1988年,朱士盛等對10個省份的296頭進口豬進行血清學調查,發現陽性率為26.7%,表明該病在我國的發生與引種有密切關系。

近年來,該病常與豬藍耳病、豬支原體肺炎、豬偽狂犬病、豬肺疫、豬瘟、副豬嗜血桿菌病等混合感染,導致病情加重,死亡率升高。一般來說,該病受氣候環境、飼養條件的影響,發病率和死亡率差異很大,分別在8.5%~100%和0.4%~100%。

三、臨床癥狀和病理變化

APP隨氣流進入呼吸道,在肺泡內定居、增殖并產生毒素,導致纖維素性出血性胸膜肺炎?;疾∝i的主要病變在胸腔內,典型特征是呈現纖維素性、出血性和壞死性肺炎。

最急性病例臨床表現為突然發病,體溫高達41℃,沉郁,食欲不振,并出現嘔吐和腹瀉,臥地不起,呼吸困難,張口呼吸,口鼻腔流出泡沫樣液體,呈紅色,多于24~36 h內死亡。病理變化:肺部呈紅色腫脹,表面出現出血點,呈粟粒大小;肺切面多汁,流出紅色液體,氣管腔內充滿泡沫樣紅色液體。有些病例肺小葉間質明顯增寬。

急性病例臨床表現為體溫高達41℃~42℃,呈稽留熱,精神高度萎靡,食欲漸少乃至廢絕。呈現出不同程度的呼吸困難,表現為呼吸加快、張口呼吸呈犬坐式,且伴有咳嗽和呻吟。黏膜呈現潮紅或紫紅色,鼻腔流出漿液或粘液性棕紅色鼻液。耳鼻、四肢、腹下等處淤血。多數病豬于2~3 d內窒息死亡。少數病豬出現腹瀉和嘔吐癥狀。部分病豬如果及時治療可以轉歸痊愈。病理變化:胸腔內出現大量積液,呈黃色或紅黃色。肺葉腫大,肺膜增厚、粗糙,多數病例肺葉出現大小不一的斑塊,呈紫紅色,嚴重病例肺臟呈紫紅色病變,質地堅實,有些病例肺葉部分區域出現大理石狀條紋,呈紫紅色、灰紅色和灰白色相間,質硬如肝。

亞急性和慢性病例多是由于急性病例治療不當轉化而來所造成的,臨床表現為食欲減退、消瘦、間歇性咳嗽,易繼發感染其它病原而使癥狀加重甚至導致死亡。某些病例母豬流產、關節炎,并且豬體不同部位出現膿腫。病理變化:肺臟呈現大小不等、由結締組織包裹的壞死性結節。結節處胸壁和肺臟粘連,切開會流出灰白色膿樣物。嚴重病例心包、心外膜、胸膜、肺以及膈肌等多處廣泛粘連。有時還伴有全身廣泛性淤血和出血、出血性淋巴結炎和急性脾炎等變化。

四、診斷

對APP的診斷與檢測主要是通過病原學、血清學或分子生物學的方法。

(一)病原學診斷方法 傳統的病原學診斷方法主要是對APP分離與鑒定。一般是從病豬的鼻腔、支氣管、肺臟病變組織處或胸水等處進行分離。所用培養基需要營養豐富,一般該菌可在巧克力瓊脂平板或綿羊血瓊脂平板上分離出。經形態染色、生化試驗、呈現“cAMP”及“衛星”現象、溶解綿羊血、尿素酶試驗陽性,可鑒定為APP生物Ⅰ型菌株,如果生長時還不需要NAD,可鑒定為生物Ⅱ型菌株。可同時結合協同凝集試驗或瓊脂擴散試驗等血清學診斷方法做確診,或是結合PCR等分子生物學診斷方法做確診。

此外,免疫磁珠法是一種新出現的APP分離方法。1998年,Gagne等用免疫磁珠法從感染血清1型的豬體中分離到APP,該方法是先用特異性多克隆抗體或單克隆抗體包被磁珠,再將磁珠與病料相互作用,在磁場作用下分離出該菌。2001年,Angen等也用免疫磁珠法從血清2型感染豬體中分離到APP。相對于傳統的細菌分離方法,免疫磁珠法更準確和簡便,并且比PCR方法更靈敏,但對儀器設備要求較高,因此不適于基層廣泛應用。

(二)血清學診斷方法 APP的血清學診斷方法主要有補體結合試驗、間接血凝試驗、協同凝集試驗、乳膠凝集試驗、瓊脂擴散試驗和酶聯免疫吸附試驗等。

1.補體結合試驗(CFT)是由Nicolet于1971年首次將其用于檢測APP并迅速成為APP分型的最早標準方法。CFT的敏感性和特異性較好,檢出率可達100%,感染APP兩周后就可檢出抗體,因此多年來被用于APP的檢測,并且該方法能夠區分與APP親緣關系較近的細菌,如副豬嗜血桿菌等。但CFT操作繁瑣、費時費力,所以一般只在實驗室中使用。

2.間接血凝試驗(IHA)是由Mittal于1983年建立并將其用于APP檢測和分型。1990年,Mittal等發現凝集試驗和COA不能區分血清1型和9型,而IHA卻能區分二者。

3.協同凝集試驗(COA)是一種簡單快速的APP檢測和分型的方法。1988年,Mittal等 將2-疏 基乙醇試管凝集、COA和瓊脂糖擴散試驗結合并用于APP檢測,可以區分血清6型與其它血清型。1991年,Mittal等發現需要結合應用COA和瓊脂擴散試驗以區分血清4型和7型。相比于IHA和瓊脂擴散試驗,COA簡單、快速,特異性較高,適于臨床推廣應用。

4.乳膠凝集試驗(LAT)是一種快速簡捷的APP檢測和定型方法。1992年,Inzana等首次將LAT引入到APP的檢測中,并發現LAT能區分血清l型和9型。1995年,Inzana提出一種改進的乳膠凝集試驗方法,該方法靈敏度高、特異性好,不與多殺性巴氏桿菌、副豬嗜血桿菌和豬放線桿菌交叉反應,并且該方法不需要大量儀器設備,非常適于快速臨床檢測,具有良好的應用前景。

5.瓊脂擴散試驗又稱免疫擴散試驗,能輔助其它試驗區分交叉反應的APP血清型,如協同凝集試驗或2-疏基乙醇試管凝集等。但瓊脂擴散試驗的敏感性和特異性都不如ELISA。

6.酶聯免疫吸附試驗(ELISA)是近年來檢測APP的最常用的血清學診斷方法。1981年,Nicolet等首次用ELISA試驗對APP進行分型。1992年,Trottier等制定了一個鑒別APP血清5型的ELISA試驗的標準草案。目前,ELISA已經成為檢測APP的主要方法之一。

(三)分子生物學診斷方法 PCR技術是用于檢測APP的主要分子生物學診斷方法。由于PCR技術的快速、簡便、靈敏性高、特異性好和無交叉反應等優點,使得近年來PCR方法成為國內外檢測APP的最主要的方法。目前,國內外己經建立了多種PCR檢測方法用于豬傳染性胸膜肺炎的早期診斷和APP的快速鑒定。1995年,Frey等建立了基于Apx的PCR檢測方法,并能將所有APP血清型區分為4種Apx類型,不僅提高了APP檢測率和流行病學調查的效率,還有助于發現非典型的溶血素分子結構。1995年,Gram和Ahrens建立了基于omlA基因的PCR檢測方法,具有較高的種特異性和敏感性。2001年,Schaller等建立了基于apxⅣA基因的PCR檢測方法,特異性和敏感性均很高。2009年,Yang等針對apx Ⅳ 基因建立了檢測APP的環介導等溫擴增技術,比巢氏PCR敏感十倍,認為是高敏感性和特異性的檢測方法。

此外,PCR方法還可以通過血清型特異的引物起到區分血清型的作用。一直以來,國內外很多學者都在研究和改進APP的PCR分型系統。2000年,de la Puente-Redondo等建立了基于tbpA和tbpB基因的PCR-RFLF診斷與分型方法,具有較高的種特異性和敏感性,能同時將所有APP血清型分為10個RFLP類型,但無法區分血清型4和11、血清型7和9。2000年,Gram等建立了基于溶血素和omlA基因的PCR診斷與分型方法,能區分大多數APP血清型,但不能區分血清型1和9、血清型2、8和11。此后,研究者還建立了多種多重PCR方法能同時分型檢測幾種不同的血清型,并能區分具有血清交叉反應的血清型,如血清型2、5和6,血清型1、2和8,血清型1、7和12,血清型3、6和8,血清型1、2和5。

此外,還有許多正在處于研究階段的新方法,如抗APP單克隆抗體的制備、APP膠體金診斷試紙條的研制、基因芯片檢測方法,這些方法既方便又快捷,可用于大規模的APP檢測,既能確定種又能分型鑒定,有良好的應用前景。

(略)

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