張 軍,周永田,徐旭東,謝 林,李 娟,徐明怡
(1.山東省醫藥工業設計院,山東 濟南 250013;2.山東省職業衛生和職業醫學院,山東 濟南 250002)
近年的研究顯示,許多汞中毒患者出現的長期、劇烈、自發性肌肉刺痛或燒灼痛,以下肢為主,常伴有患肢麻木和痛覺過敏,肌電圖顯示神經傳導速度減慢[1,2]。目前臨床治療汞中毒主要應用螯合劑驅汞,輔以對癥治療,對汞中毒疼痛缺乏有效治療措施。腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α),由激活的單核-巨噬細胞分泌,主要合成部位在背根神經節(DRG)的大、中型細胞[3]。TNF-α廣泛分布于中樞、周圍神經系統,具有多種生理功能。研究表明,TNF-α與神經病理性疼痛的產生及其持續狀態有密切關系[4]。為探討汞中毒疼痛發病機制及有效治療方法,筆者觀察了氯化汞和己酮可可堿對大鼠脊髓和DRG中TNF-α的影響。
實驗用HgCl2(上海化學試劑總廠,生產批號為990402),二巰丙磺納注射液(DMPS,上海禾豐制藥有限公司,生產批號為0309011),己酮可可堿緩釋片(pentoxifylline,POF)(德國 Merckle GmbH 藥業公司產品,生產批號為C20571);TNF-α檢測試劑盒(武漢博生微生物工程有限公司,生產編號為SA1025)。
健康雄性清潔級SD大鼠40只,體重180~220 g,(上海希蒲爾必凱實驗動物有限公司),動物質量合格證號為SCXK(滬)2003-0002,本院動物房飼養,室內溫度19~24℃,相對濕度40%~70%,自由攝食飲水。
將動物隨機分為7組;對照組(10只)經口灌胃生理鹽水(NS)2 mL,1次 /d;A、B、C組(各 5只)按17 mg/kg(1/4LD50);D、E、F 組(各 5 只)按 8.5 mg/kg(1/8LD50),經口灌胃HgCl2溶液,1次/d。7組均連續灌胃18~22 d。染毒組超過50%的動物出現中毒癥狀(動物出現步態不穩,行動障礙或痙攣)[5]后停止染汞。疼痛判斷標準:動物出現抓舔肢體、甩尾、嘶叫、翻身、轉圈等表現[6]。
50%的動物出現中毒癥狀后,處死對照組5只大鼠和A、D組大鼠,剩余染汞大鼠作藥物干預實驗。B、E組大鼠用DMPS按28 mg/kg腹腔注射驅汞2個療程(每天1次,驅汞3 d,休息4 d為1個療程),C組大鼠用DMPS+POF(按29.22 mg/kg經口灌胃,每天1次,共14 d);F組和對照組5只大鼠腹腔注射NS 1 mL/次,方法同DMPS。實驗結束后處死全部動物。
用1%戊巴比妥鈉按40 mg/kg腔腹注射麻醉動物,隨后將其固定于解剖臺上,剖胸做心臟穿刺,將針頭固定于升主動脈,先灌注NS約150 mL,再灌注4%多聚甲醛磷酸緩沖液(pH7.4)約200 mL,待動物僵硬后取出脊髓L5-6節段和兩側L5、L6背根神經節(DRG),置于10%的甲醛磷酸緩沖液中固定,按常規制成病理切片,片厚15μm。
用免疫組織化學鏈酶親和素-生物素-過氧化物酶聚合物法[7](SABC)測定DRG及脊髓TNF-α,嚴格按照試劑盒說明書要求操作。
用400倍光學顯微鏡觀察切片,并將圖像通過攝像頭轉入計算機圖像分析系統,用LEICA QWIN V3圖像分析軟件對病理切片進行分析。每個DRG取5張連續切片,隨機選取上、下、左、右、中5個互不重疊的視野;每個L5-6脊髓階段連續取5張切片,在脊髓背角Ⅰ層和Ⅱ層細胞取5個互不重疊的視野,計算免疫陽性物的平均灰度和平均面積。
用SPSS10.0軟件,采用Homogeneity-of-variance首先對資料進行方差齊性檢驗。若方差齊性,單因素方差分析(One-way ANOVA)并采用Dun-nett-test進行染毒組與對照組均數間兩兩比較;方差不齊時,用Kruskal-Wallis test非參數統計,用Mann-Whitney test進行均數間兩兩比較。以P<0.05認為差異有統計學意義。
A、B、C(17 mg/kg)組大鼠于染汞第 12 天時開始出現口腔流涎,口腔出現血性分泌物,精神萎靡,活動減少,步態僵硬、笨拙,皮毛粗糙,尿量增多,大便稀。染汞第19天有9只大鼠出現汞中毒表現,停止染汞。汞中毒大鼠中有1只于染汞第17天出現疼痛表現;該大鼠不停的舔、抓雙下肢、雙后腳和尾部,致使該部位出現紅腫,甚至部分皮膚破損,該大鼠并未受傷,故判斷為汞中毒疼痛。藥物干預實驗結束時該大鼠仍有疼痛表現。D、E、F(8.5 mg/kg)組大鼠于第16天開始出現口腔流涎,口腔有血性分泌物,活動減少,步態笨拙,精神倦怠,皮毛粗糙,尿量增多,大便稀。于第22天有8只大鼠出現汞中毒表現,停止染汞。無疼痛大鼠出現。對照組大鼠全部正常生存。
表1可見,驅汞前各染汞組大鼠脊髓TNF-a平均灰度均顯著低于對照組,平均面積均顯著大于對照組(P<0.05);驅汞 14 d后,B、E、F組 TNF-a表達仍顯著強于對照組;C與B組相比,TNF-α灰度顯著提高,平均面積顯著減少(P<0.05),已接近對照組水平。
表2可見,驅汞前各染汞組大鼠背根神經節TNF-α平均灰度均顯著低于對照組,平均面積均顯著大于對照組(P<0.05)。驅汞 14 d后,B、E、F組TNF-α平均灰度有所升高,平均面積有所減小,但與對照組相比,仍有顯著差異。C組與B組相比,TNF-α平均灰度顯著升高,平均面積顯著減少(P<0.05),已接近對照組水平。
表1 汞中毒大鼠脊髓TNF-α平均灰度與陽性反應物平均面積 (n=5,)

表1 汞中毒大鼠脊髓TNF-α平均灰度與陽性反應物平均面積 (n=5,)
注:1)與對照組比較,P<0.05;2)與B組相比,P<0.05
組別 驅汞前驅汞后平均灰度 平均面積 平均灰度 平均面積對照組 212.93±21.03 3211.56±48.29 267.19±23.57 2917.58±55.81 A組(高Hg) 113.75±4.211) 4937.13±77.031) - -B組(高 Hg+DMPS) 92.56±3.821) 4855.01±82.691) 115.33±18.321) 4407.12±31.451)C組(高Hg+DMPS+己) 99.02±8.211) 5014.05±57.621) 177.63±12.792) 2991.32±29.712)D組(低Hg) 137.53±5.371) 4671.55±77.351) - -E 組(低 Hg+DMPS) 122.65±5.291) 4408.93±47.051) 152.71±11.061) 3851.07±25.991)F 組(低 Hg+NS) 135.66±4.371) 4502.31±54.081) 142.69±11.871) 3908.16±72.191)
表2 汞中毒大鼠背根神經節TNF-α平均灰度與陽性反應物平均面積 (n=20,)

表2 汞中毒大鼠背根神經節TNF-α平均灰度與陽性反應物平均面積 (n=20,)
注:1)與對照組比較,P<0.05;2)與B組相比,P<0.05
驅汞后平均灰度 平均面積 平均灰度 平均面積對照組 237.19±7.64 3418.35±67.22 261.27±8.83 3710.47±25.59 A組(高Hg) 116.96±7.261) 5920.48±28.191) - -B組(高 Hg+DMPS) 105.62±7.291) 5671.95±38.271) 131.43±5.771) 4992.73±62.191)C組(高Hg+DMPS+己) 113.28±7.281) 5723.91±62.191) 241.69±7.182) 4012.16±26.972)D組(低Hg) 106.55±4.981) 5594.24±49.381) - -E 組(低 Hg+DMPS) 116.27±7.331) 5829.84±56.381) 144.36±14.311) 4211.06±38.951)F 組(低 Hg+NS) 120.03±6.221) 5891.05±52.181) 142.52±12.071) 3990.35±51.071)組別 驅汞前
本實驗結果表明,亞急性汞中毒大鼠脊髓后角和背根神經節TNF-α表達水平顯著高于對照組,而且用DMPS驅汞14 d后仍未見TNF-α表達顯著減弱,說明單純用DMPS驅汞并不能抑制TNF-α 表達。17 mg/kg染汞(B、C)組和 8.5 mg/kg染汞(E、F)組之間TNF-α平均灰度和平均面積差異均無統計學意義,未見到劑量-效應關系,這可能與兩染汞組之間劑量相距較近有關。
TNF-α是一種前炎性細胞因子,有多種生物學效應,與神經病理性疼痛的產生和持續存在有密切關系。研究發現,TNF-α不僅有單核-巨噬細胞產生,而且也可以由神經細胞和膠質細胞產生[8]。當機體處于受傷、感染、免疫功能異常等多種病理狀態時,中樞的膠質細胞就會被激活,釋放出IL-1、IL-6、TNF-α及NGF等多種細胞因子以及興奮性氨基酸、NO等神經遞質,它們一方面作用于痛覺神經元,使其興奮性增強,向高級中樞傳遞疼痛信號,另一方面降低神經元的興奮閾值,造成中樞敏化,使許多無效閾下神經沖動變為有效閾上神經刺激,使疼痛信號傳遞的頻率和幅度大為提高。同時,這些細胞因子還可以作用于膠質細胞,產生正反饋作用,進一步增加細胞因子的數量,形成瀑布效應,從而形成了神經病理性疼痛的持續狀態[9]。
己酮可可堿是黃嘌呤代謝產物,有擴張腦和周圍血管的作用,可以改善腦和四肢的血液循環。近期研究發現,它還有抑制中樞膠質細胞激活和抑制TNF-α產生的作用[10]。本文的實驗結果與他們的結論一致,說明己酮可可堿有可能在汞中毒疼痛的治療中,發揮積極作用。
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