應用Sysmex XE-2100儀妊娠期外周血白細胞參數

李忠新，柏 芹，占葆娥

(1、深圳市中醫院檢驗科，廣東 深圳 518033；2、中南大學湘雅醫學院檢驗系2005級)

妊娠是正常的生理過程，妊娠期間體內各系統會發生一系列的變化以滿足胎兒的生長發育需要，外周血血象也會發生生理性變化，如外周血白細胞可生理性增多，中性粒細胞增多等[1]。Sysmex-XE2100全自動血液分析儀除采用傳統的電阻抗法和射頻法外，還采用半導體激光流式細胞原理結合細胞化學熒光染色技術對血細胞進行檢測，能夠進行完整的血細胞計數和5分類白細胞計數，另外還可提示和分析幼稚粒細胞，本研究應用Sysmex-XE2100血液分析儀這些功能，對妊娠婦女外周血白細胞各參數 (包括幼稚粒細胞)進行分析。

1 材料與方法

1.1 對象 2010年1月～2010年4月在我院進行產前檢查的妊娠婦女96例，年齡20～36歲，孕期9～38周。對照組30例，來自本院健康體檢非妊娠婦女，年齡21～36歲，妊娠組和對照組均身體健康，無肝、腎、血液等方面疾病，無輸血史。靜脈抽取血液2ml標本置EDTA-K2真空抗凝管中。

1.2 儀器與試劑 XE-2100血細胞分析儀及原裝配套試劑和配套質控物。

1.3 方法

1.3.1 血液分析儀檢測 儀器在嚴格質量控制條件下按照儀器使用說明書操作，按要求進行高、中、低 3個水平的室內質控，血液標本在采集后4h內用全自動模式進行檢測。

1.3.2 統計學分析 所有統計分析采用SPSS 12.0統計軟件處理，P＜0.05視為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 妊娠組與對照組各白細胞參數比較

與對照組比較，妊娠組白細胞總數明顯高于對照組 (P＜0.05)，各類白細胞(中性粒細胞、淋巴細胞、單核細胞、嗜酸性粒細胞和嗜堿性粒細胞)比例之間的均有顯著性差異 (P＜0.05)，但是絕對值只有中性粒細胞和單核細胞有顯著性差異(P＜0.05)，具體見表1和圖 1及圖 2。

表1 妊娠組與對照組各白細胞參數比較

圖1 妊娠組與對照組各類細胞百分比比較

圖2 妊娠組與對照組各類細胞絕對值比較

2.2 不同妊娠期白細胞總數和中性粒細胞情況 見表2。

2.3 不同妊娠期出現幼稚細胞的情況

在96份樣本中，幼稚粒細胞報警(IG)可信值＞200的樣本占26.4%。絕大多數在妊娠晚期，占76.9%，少數在妊娠中期占23.1%，妊娠早期為0，見表3。

3 討論

妊娠是胚胎和胎兒在母體內發育成長的過程。妊娠期約為266d(38周)，分為三個時期：妊娠12周末以前稱為早期妊娠，第13～27周末稱中期妊娠，第28周及其后稱晚期妊娠[3]。妊娠是正常的生理過程，為了滿足胎兒生長發育的需要，孕婦體內各系統發生一系列適應性的解剖、生理和生化變化。其中血液成分表現在妊娠期骨髓不斷產生紅細胞，網織紅細胞輕度增多；白細胞從妊娠7~8周開始輕度增加，至妊娠30周達高峰，主要為中性粒細胞增多。

表2 不同妊娠期白細胞總數與分類情況

表3 不同妊娠期出現IG的情況

本次研究中，采用XE-2100血細胞分析儀分析963例妊娠期血液樣本和30例相同年齡段的非妊娠期血液樣本，結果顯示妊娠組外周血白細胞數顯著增加，并且隨著妊娠的進程而增加，在妊娠晚期達到最高水平，白細胞總數的增加主要是由于中性粒細胞的增加，與Kuhnert[1]等報道基本一致，另外我們研究顯示中性粒細胞和單核細胞絕對值均增加，這與Mahmoud[4]學者報道一致，但各類細胞比例變化與其他的學者報道不盡相同，如Kuhner[1]沒有發現在妊娠時單核細胞比例不同。

Fernandes B[5]報道XE-2100定量分析外周血幼稚粒細胞性能良好，特別是幼稚粒細胞報警的可信度>200時。Fujimoto等[6]用CD16，CD11b，CD45分子標記幼稚粒細胞，采用流式細胞儀分析，發現與XE-2100結果也具有很好的相關性。我們對96份妊娠樣本進行分析，IG報警可信度值＞200的樣本為26例，絕大多數在妊娠晚期 (76.9%)，少數在妊娠中期(23.1%)，妊娠早期(0%)。這表明在妊娠中晚期，外周血可出現幼稚粒細胞，幼稚粒細胞的出現可能是受妊娠期間血清中各種生長因子的調節和影響。

Umesaki[7]報道妊娠婦女中粒細胞集落刺激因子的濃度在懷孕期間比非妊娠婦女顯著增高。Saito[8]報道在妊娠第三期即晚期，粒細胞集落刺激因子水平與中性粒細胞呈正相關，妊娠婦女血清中巨噬細胞群體刺激因子改變與外周血單核細胞和中性粒細胞數的變化有聯系。

綜上所訴，本研究采用Symex XE-2100血液分析儀對妊娠期外周血白細胞各參數進行了初步分析，特別是對幼稚粒細胞也進行了初步分析，結果顯示妊娠婦女白細胞總數增加，各類白細胞比例均有變化，以中性粒細胞增多為主，中晚期伴有幼稚粒細胞出現。

[1]Kuhnert M,Strohmeier R,Stegmuller M,et al.Changes in lymphocyte during normal pregnancy.European Journal of Obstetrics [J].Gynecology and Reproductive Biology,1998,76:147–151.

[2]Herklotz R,Huber A.Precision and accuracy of the leukocyte differential on the Sysmex XE-2100[J].Sysmex J Int,2001,11:8-21.

[3]豐有吉,沈 鏗.婦產科學[M].第1版,北京:人民衛生出版社,2008.

[4]Mahmoud F,Abul H,Omu A.Pregnancy-associated changes in peripheral blood lymphocyte subpopulations in normal Kuwaiti women[J].Gynecol Obstet Invest,2001,52(4):232-236.

[5]Fernandes B,Hamaguchi Y.Automated Enumeration of Immature Granulocytes[J].Am J Clin Pathol,2007,128(3):454-463.

[6]Fujimoto H,Sakata T,Hamaguchi Y,et al.Flow cytometric method for enumeration and classification of reactive immature granulocyte populations[J].Cytometry,2000,42(6):371-378.

[7]Umesaki N,Fukumasu H,Miyama M,et al.Plasma granulocyte colony stimulating factor concentrations in pregnant women[J].Gynecologic and Obstetric Investigation,1995,40(1):5–7.

[8] Saito S, Motoyoshi K, Ichijo M, et al. High serum human macrophage colony-stimulating factor level during pregnancy[J].Int J Hematol,1992,55(3):219-225.