王彥 錢德儉 尉真 陸峻泓 張文杰 崔磊 曹誼林
血管再生在骨創(chuàng)傷后組織修復中占有舉足輕重的地位。人的血管發(fā)生是一個非常復雜的細胞生物學過程,包括:血管形成(Vasculogenesis),由未分化的胚胎干細胞分化為成血管細胞(Angioblast),再形成內皮細胞,彼此連接組成血管;血管新生或芽殖(Angiogenesis),由已形成的微血管內皮細胞沖破管壁的基質,遷移、增殖和連接組成新的血管[1]。這兩種方式在胚胎發(fā)育過程中均有出現(xiàn),且時間上往往交錯進行。而成體創(chuàng)傷后,組織修復中血管的發(fā)生主要是芽殖方式。近年來,組織工程技術的迅猛發(fā)展給骨創(chuàng)傷后組織修復的基礎研究和臨床治療提供了新的思路。
人胚胎干細胞(Embryonic stem cells,ES)具有向三個胚層分化的潛能,是研究人胚胎發(fā)育和細胞分化的理想模型。隨著人ES細胞系的建立,應用人ES細胞研究內皮細胞發(fā)生和血管形成成為可能[2-7]。我們將來源于人囊胚內細胞團的ES細胞,以含維甲酸(Retinoic acid,RA)的培養(yǎng)液經懸浮培養(yǎng),形成擬胚體(Embryonic body,EB),再將 EB 貼壁,換含TGF-β1的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),形成內皮細胞。該方法為研究骨創(chuàng)傷修復中內皮細胞和血管發(fā)生及其機制建立了一個良好的模型,且有望為臨床治療提供新的種子細胞。
人ES細胞株 (上海交通大學醫(yī)學院附屬第九人民醫(yī)院組織工程實驗室),knock-out DMEM(Gibco公司,美國),KO Serum Replacer(Hyclone 公司,美國),Non-essential Amino Acids(Gibco 公司,美國),L-glutamine(Sigma 公司,美國),β-mercaptoethanol(Sigma 公司,美國),b-FGF(Sigma 公司,美國),維甲酸 (Sigma公司, 美國),TGF-β1 (R&D 公司,美國),絲裂霉素 C(Sigma 公司,美國),Oct-4 抗體(兔抗小鼠多抗,中科院上海生化細胞所),SSEA-4抗體(兔抗小鼠多抗,中科院上海生化細胞所),兔抗人Ⅷ因子抗體 (Santcruz公司,美國),鼠抗CD34單抗(Santcruz公司,美國),昆明小鼠(山東大學動物實驗室)。
1.2.1 人 ES 細胞培養(yǎng)
培養(yǎng)液為knock-out DMEM,含20%knock-out serum replacer、1%non-essential amino acids、1 mM L-glutamine、0.1 mM β-mercaptoethanol、4 ng/mL bFGF。37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng);5~7 d后,以 1 mg/mL Ⅳ型膠原酶消化,常規(guī)傳代。
1.2.2 擬胚體培養(yǎng)及誘導
取生長良好的人ES細胞,機械法分割成小塊,接種到預先鋪陳1%瓊脂的培養(yǎng)皿,培養(yǎng)液為knock-out DMEM,含 20%knock-out serum replacer、1%non-essential amino acids、1 mM L-glutamine、0.1 mM β-mercaptoethanol,加維甲酸,至終濃度為1×10-9mol/L ,37 ℃、5%CO2培養(yǎng) 3~5 d,收集生長較好的擬胚體,均等地移植到預先用0.1%明膠鋪陳的培養(yǎng)皿中,每孔約3~4個擬胚體,加含3 ng/mL TGF-β1的無血清DMEM,每隔2天換液,繼續(xù)培養(yǎng)。對照組加不含TGF-β1的無血清DMEM。每天觀察照相,并做相關檢測。
1.2.3 免疫熒光檢測
抗體:兔抗人Ⅷ因子抗體,工作濃度1∶100;羊抗兔IgG-羅丹明,工作濃度1∶50。免疫熒光染色:待擬胚體周圍分化出上皮樣和圓形細胞及血管樣結構時,用PBS漂洗3遍,4%多聚甲醛固定10 min,再次PBS漂洗,0.25%Triton處理10 min,滴加Ⅷ因子抗體,37℃溫育1 h,PBS洗 3次,加 IgG-羅丹明,37 ℃反應 45 min,PBS 漂洗,甘油/PBS(1∶2)封固,熒光顯微鏡觀察,照相。
1.2.4 Dil-Ac-LDL 標記檢測
以無血清DMEM稀釋Dil-Ac-LDL為10 μg/mL,加至已分化出血管樣結構的擬胚體培養(yǎng)皿中,37℃孵育4 h,將其去除,無血清DMEM洗3遍,熒光顯微鏡觀察,照相。
1.2.5 掃描電鏡觀察
取誘導后分化出的上皮樣和圓形細胞及血管樣結構,以2%戊二醛固定,PBS漂洗,1%鋨酸固定,PBS漂洗,梯度乙醇脫水,醋酸正戊酯置換,CO2臨界點干燥,離子噴射儀噴金,掃描電鏡觀察。
1.2.6 透射電鏡觀察
取誘導后分化出的上皮樣和圓形細胞及血管樣結構,2%戊二醛固定24 h,收集標本,1%鋨酸后固定1 h,梯度乙醇脫水,1∶1丙酮包埋液滲透,EPON包埋,常規(guī)超薄切片,透射電鏡(JEM-1200EX)觀察細胞與血管的超微結構。
體外培養(yǎng)的人ES細胞在飼養(yǎng)層細胞上以巢狀方式生長(圖1),細胞間界限清楚,細胞質結構簡單,細胞核質比例高。

圖1 人ES細胞克隆(P17)(相差顯微鏡,100×)
培養(yǎng)的第5天,培養(yǎng)皿中形成球形的擬胚體,透亮、邊緣光潔 (圖2)。將EB貼壁,用含3 ng/mL TGF-β1的無血清DMEM誘導,第2天,EB周圍出現(xiàn)上皮樣和圓形細胞(圖3);第3天,開始出現(xiàn)由圓形細胞構成的管狀結構,且圓形細胞逐漸變?yōu)楸馄綘罴毎9軤罱Y構自EB向周圍呈輻射狀生長,并漸連接成網(wǎng)狀,管道排列清楚(圖4)。誘導組約有95%可分化為這類結構,而對照組絕大多數(shù)EB周圍未發(fā)現(xiàn)血管樣結構產生。

圖2 人ES細胞懸浮培養(yǎng)形成擬胚體(相差顯微鏡,100×)

圖3 擬胚體貼壁第2天,圓形細胞出現(xiàn)(相差顯微鏡,100×)

圖4 擬胚體貼壁第3天,上皮樣細胞及血管樣結構出現(xiàn)(相差顯微鏡,100×)
人ES細胞誘導分化的細胞,經Ⅷ因子免疫熒光檢測呈陽性(圖5),證明這類細胞具有內皮細胞性質。

圖5 人ES細胞誘導分化的管狀結構Ⅷ因子表達陽性(40×)
Dil-Ac-LDL攝取實驗結果呈陽性,表現(xiàn)為紅色熒光(圖6),證明hES細胞定向誘導分化的細胞具有內皮細胞的功能。

圖6 Dil-Ac-LDL攝取實驗陽性
管狀結構的管壁最初由許多圓形細胞和扁平狀細胞組成,隨著管狀結構的延伸,細胞逐漸減少,管壁變得光滑(圖7)。

圖7 掃描電鏡觀察
誘導出的血管樣結構由幾個內皮樣細胞圍成,細胞扁平,表面較光滑,相鄰的細胞間連接緊密,與正常毛細血管結構非常相似(圖8)。

圖8 透射電鏡觀察
血管形成是非常復雜的過程,主要涉及內皮細胞的激活和增殖、微環(huán)境中的細胞基質成分和結構,以及它們之間的相互作用[8]。同時,這些過程又和各種細胞因子的產生及協(xié)同作用是分不開的[9-10]。已有證據(jù)表明,TGF-β1是血管形成的刺激因子,在創(chuàng)傷愈合過程中,可能是通過調節(jié)細胞基質合成,從而影響內皮細胞的生長行為,使其形成管狀結構[11-12]。另有研究認為,內皮細胞的增殖刺激或抑制效應依賴于 TGF-β1的濃度,0.02~0.1 ng/mL 的 TGF-β1 對胎牛心臟內皮細胞顯示生長刺激作用,而高濃度(0.5~10 ng/mL)的 TGF-β1 則顯示生長抑制作用[13],表明TGF-β1對內皮細胞生長和血管結構形成有著密切關系。
ES細胞不同的生長方式和所受RA濃度對其分化細胞類型有重大影響[14]。低濃度RA(1×10-9mol/L)和TGF-β1協(xié)同作用,易使ES細胞誘導形成中胚層性質的分化細胞[15]。本實驗用懸浮培養(yǎng)法結合低濃度RA處理5 d,使人ES細胞形成EB,然后移至明膠包被的培養(yǎng)皿中,以含TGF-β1的培養(yǎng)液使其貼壁生長,數(shù)天后EB周圍出現(xiàn)大量圓形細胞,同時形成許多自EB向周圍輻射的血管樣結構,該現(xiàn)象重復性高,表明低濃度RA和TGF-β1協(xié)同作用,對人ES分化并形成管樣結構有重要作用。
vWF是一種存在于血漿中的大分子糖蛋白,是凝血因子Ⅷ的載體,主要由內皮細胞合成,可使血小板黏附并聚集在受損的血管壁。vWF被認為是內皮細胞的特異性標記[16]。DiI是一種親脂性碳花青染料,容易嵌進生物質膜內,并在膜內做定向擴散運動,從而標記整個細胞。熒光染料DiI標記的低密度脂蛋白 (Low density lipoprotein,LDL), 即 Dil-LDL被廣泛應用于內皮細胞的鑒定[2,17-18]。本實驗中,vWF免疫熒光染色和Dil-LDL直接熒光檢測結果均為陽性,表明構成管樣結構的細胞具有內皮細胞性質。證明低濃度RA和TGF-β1可誘導人ES細胞分化為內皮細胞及血管樣結構。
相差顯微鏡和掃描電鏡觀察證實,人ES細胞所分化的管狀結構的管壁,最初由許多圓形細胞或扁平狀細胞組成,隨著管狀結構的延伸,管壁變得光滑。該結果提示,本誘導體系作用于人ES細胞,可在體外模擬血管形成的演變過程。
透射電鏡結果顯示,誘導的血管樣結構由扁平細胞圍成,細胞表面較光滑,相鄰細胞間有緊密連接,與正常的人毛細血管非常相似。
本實驗提供了一個研究內皮細胞發(fā)生和血管形成的模型。但是,RA與TGF-β1的作用機制,以及ES細胞向血管演變中參與的因素等問題尚需進一步研究。另外,作為內皮細胞的來源之一,ES細胞分化為內皮細胞的研究還面臨很多問題,如分化細胞的純化,傳代與大量擴增以及保存等,這些問題的解決,將能使ES細胞成為較好的種子細胞來源。
[1]Noden DM,Li X.The development of craniofacial blood vessels.//Reinber RN,Sherar GK,Auerbach R.Development of the vascular system[M].Basel:Karger,1991,1-24.
[2]Levenberg S,Golub JS,Amit M,et al.Endothelial cells derived from human embryonic stem cells[J].PNAS,2002,99(7):4391-4396.
[3]Levenberg S,Huang NF,Lavik E,et al.Differentiation of human embryonic stem cells on three-dimensional polymer scaffolds[J].PNAS,2003,100(22):12741-12746.
[4]Ferreira LS,Gerecht S,Fuller J,et al.Bioactive hydrogel scaffolds for controllable vascular differentiation of human embryonic stem cells[J].Biomaterials,2007,28(17):2706-2717.
[5]Krtolica A,Genbacev O,Escobedo C,et al.Disruption of apicalbasal polarity of human embryonic stem cells enhances hematoendothelial differentiation[J].Stem Cells,2007,25(9):2215-2223.
[6]Sepúlveda P,Martinez-León J,García-Verdugo JM,et al.Neoangiogenesis with endothelial precursors for the treatment of ischemia[J].Transplant Proc,2007,39(7):2089-2094.
[7]Adams B,Xiao Q,Xu Q.Stem cell therapy for vascular disease[J].Trends Cardiovasc Med,2007,17(7):246-251.
[8]Gajdusek CM,Luo Z,Mayberg MR.Basic fibrobl growth factor and transforming growth factor beta-1:synergistic mediators of angiogenesis in vitro[J].Cell Physiol,1993,157:133-149.
[9]Lagarkova MA,Volchkov PY,Philonenko ES.Efficient differentiation of hESCs into endothelial cells in vitro is secured by epigenetic changes[J].Cell Cycle,2008,7(18):2929-2935.
[10]Goumans MJ,van Zonneveld AJ,ten Dijke P.Transforming growth factor beta-induced endothelial-to-mesenchymal transition:a switch to cardiac fibrosis[J].Trends Cardiovasc Med,2008,18(8):293-298.
[11]Madri JA,Pratt BM,Tucker AM.Phenotypic modulation of endothelial cells by transforming growth factor-β depends upon the composition and organization of extracellular matrix[J].Cell Biol,1988,106:1375-1384.
[12]Roberts AB,Sporn MB,Assoian RK,et al.Transforming growth factor type β:Rapid induction of fibrosis and angiogenesis in vivo and stimulation of collagen formation in vitro[J].PNAS,1986,83:4167-4171.
[13]Myoken Y,Kan M,Sato GH,et al.Biofunctional effects of TGF-β on endothelial cell growth correlates with phenotypes of TGF-β binding sites[J].Exp Cell Res,1990,191:299-304.
[14]徐潔,叢笑倩,姚鑫.維生素A酸和雙丁酰基環(huán)腺苷單磷酸對小鼠胚胎干細胞的誘導分化[J].實驗生物學報,1991,24:355-367.
[15]Mummery CL,Slager HG,Inzen WV,et al.Regulation of growth and differentiation in early development:of mice and models[J].Reproductive Toxicity,1993,7:145-154.
[16]Hoyer LW.The factorⅧcomplex:Structure and function[J].Blood,1981,58:1-13.
[17]Takayuki Asahara,Toyoaki Murohara,Alison Sullivan,et al.Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis[J].Sci,1997,275(14):964-967.
[18]Wang R,Clark R,Bautch VL.Embryonic stem cell-derived cystic embryoid bodies form vascular channels:an in vitro model of blood vessel development[J].Development,1992,114:303-316.