厚樸酚通過自噬途徑促進HepG-2細胞死亡

李海波,谷建軍,英錫相,關洪全

(1.遼寧中醫藥大學基礎醫學院,遼寧沈陽110032;2.遼寧中醫藥大學藥學院,遼寧大連116600)

厚樸酚(Magnolol)是中藥厚樸的主要有效成分之一,是從厚樸中分離出的具烯丙基取代的聯苯酚類化合物。近年來,研究發現厚樸酚具有抗炎、抗菌、肌肉松弛、抗腫瘤和抗氧化的作用[1-2]。但有關其抗腫瘤的作用機制缺乏探討。以人非小細胞性肺癌HepG-2細胞為材料,應用MTT法及熒光顯微鏡等方法,研究不同濃度的厚樸酚誘導腫瘤細胞死亡的機制,報道如下。

1 材料

1.1 藥品與試劑 胎牛血清購自大連生物試劑公司。谷氨酰胺、胰蛋白酶、青霉素、鏈霉素、HEPES、MTT、三氯乙酸(TCA)、3-甲基腺嘌呤(3-MA)、MDC、RPMI-1640培養液購自Gibco(Grand Island,NY,USA);厚樸酚購自北京生物制品研究所,用二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)溶解(終濃度≤0.01%);經HPLC檢測純度均大于98%。用RPMI-1640培養液稀釋至所需濃度,并經0.22 μ m微孔濾器過濾除菌。熒光顯微鏡(Olympus,BX-51)。

1.2 細胞株 人非小細胞性肺癌HepG-2細胞(購自American Type Culture Collection)。將處于對數生長期的HepG-2細胞接種在含10%胎牛血清和2 mmol/L谷氨酰胺的RPMI-1640培養液中,在飽和濕度,溫度為37℃,濃度為5%CO2的培養箱中培養。

2 方法

2.1 細胞生長抑制實驗 取處于對數生長期的HepG-2細胞,以每孔100 μ L接種于96孔板。24 h后分別加入厚樸酚(濃度 0,5,10,20,40,60,80,160 μ mol/L),加藥作用 6,12,24,48 h 后 ,每孔加入25 μ LMTT(5 g/L),繼續培養4 h 后,棄上清,每孔加入150 μ L DMSO溶解,酶標儀492 nm檢測,繪制時效及量效曲線。

抑制率(%)=[A492(空白組)-A492(厚樸酚)]/A492(空白組)×100%

2.2 TUNEL法檢測4種細胞的凋亡率 取HepG-2細胞不同濃度的厚樸酚處理組和陽性藥物處理組,消化離心,制成細胞涂片。按TUNEL試劑盒說明書操作：樣本加蛋白酶K,37℃消化10 min,PBS漂洗后加標記緩沖液10 μ L/片,室溫1 min,甩掉多余液體不洗。按每張片子取TdT和 Biotion-11-dUTP各1μ L,加入18 μ L標記緩沖液中,混勻,加至標本片上,置濕盒中4℃過夜,再37 ℃標記2 h,2×SSC洗5 min×3次。加 1%乙酰化的 BSA 封閉液 10μ L/片,室溫20 min,甩掉封閉液不洗。加SAAP(鏈酶親和素堿性磷酸酶)20 μ L/片,37℃反應30 min,PBS充分漂洗。BCIP/NBT 37℃顯色30 min,伊紅復染,細胞核中有紫藍色顆粒者為陽性細胞,即凋亡的肺癌細胞。顯微鏡下觀察拍照(×1 000)。同時分別以標記緩沖液替代TdT和Biotion-11-dUTP作空白對照,以正常細胞培養組為正常對照。每組樣本隨機選擇10個區域,每個區域計數100個細胞,統計出凋亡的細胞數,計算凋亡細胞所占百分率。

2.3 LDH活力檢測 乳酸脫氫酶(LDH)存在于細胞內,正常情況下,不能透過細胞膜。當細胞受到損傷時,由于細胞膜通透性改變,LDH可從細胞內釋放至培養液中。釋放出來的LDH再催化乳酸的過程中,使氧化型輔酶I(NAD+)變成還原型輔酶(NADH2),后者再通過遞氫體-吩嗪二甲酯硫酸鹽(PMS)還原碘硝基氯化氮唑藍(INT)或硝基氯化四氮唑藍(NBT)形成有色的甲基化合物,在490 nm或570 nm波長處有一吸收峰,利用讀取的A值,即可測得殺傷細胞毒活性。用LDH試劑盒(Zhongsheng LDH kit,Beijing,China)來檢測 LDH的活力,于 4℃下離心(240×g)5 min,分別測定培養板懸浮細胞中的LDH(LDHp)：作為凋亡指數;上清液中LDH的量(LDHe)：作為壞死指數;培養板中貼壁細胞LDH的量(LDHi)：作為細胞內LDH指數。

凋亡與壞死的百分率計算如下：凋亡(%)=LDHp/(LDHp+LDHi+LDHe)×100 壞死(%)=LDHe/(LDHp+LDHi+LDHe)×100。

2.4 MDC染色法 MDC是一種熒光染料,可以被用作自噬泡的特異標志物檢測自噬的發生[3],不同濃度的厚樸酚作用24 h后,加入50 μ mol/L MDC在37℃下作用1 h,并用4%多聚甲醛固定,于熒光顯微鏡下觀察。3-MA是自噬過程早期特異性自噬抑制劑,在培養于蓋玻片上的處于對數生長期的HepG-2細胞中加入3-MA(0,5,10,20,40 mmol/L)預先處理10 h,再加入高濃度厚樸酚作用24 h后,MTT法觀察細胞的存活率。

2.5 統計分析 結果數據用單因素方差分析。

3 結果

3.1 厚樸酚對HepG-2細胞生長的抑制作用 不同濃度的厚樸酚于不同時間48 h HepG-2細胞后,細胞的存活率隨時間的增加而減少。可見厚樸酚對HepG-2細胞具有細胞毒作用并呈明顯的劑量依賴性(圖 1)。低濃度(20 μ mol/L)刺激細胞的生長(圖2B),可能與厚樸酚的抗氧化作用相關[4],40 μ mol/L在一定程度上誘導了細胞的死亡,細胞變圓、漂浮(圖2C),80 μ mol/L發現大部分細胞發生死亡(圖2D)。

3.2 厚樸酚處理的細胞中沒有伴隨凋亡的發生 由于厚樸酚能夠抑制HepG-2細胞的生長,接下來采用細胞周期分析藥物處理后的細胞周期變化,檢測LDH的活力,即0,20,40,80,160 μ mol/L厚樸酚處理48 h后,高濃度組(80,160 μ mol/L)細胞壞死,而對照組(0 μ mol/L)和低濃度組(20,40 μ mol/L)沒有壞死現象的發生(圖略)。

TUNEL法對細胞用Br-dUTP標記,并用抗BrdUTP抗體染色,檢測結果發現,高濃度處理組的HepG-2細胞中,有很少的細胞發生凋亡(圖3)。

圖1 厚樸酚對HepG-2細胞的細胞毒作用(mean±SD,n=3)

圖2 厚樸酚誘導HepG-2細胞凋亡的形態學變化

圖3 TUNEL法檢測厚樸酚作用HepG-2細胞后的凋亡情況(mean±SD,n=3)

以上結果顯示,厚樸酚抑制HepG-2細胞的生長,不是通過細胞凋亡的途徑。

3.3 厚樸酚誘導HepG-2細胞發生自噬 MDC染色法檢測到,高濃度(80 μ mol/L)厚樸酚作用于HepG-2細胞24 h后,熒光顯微鏡下觀察細胞出現大量空泡(圖4c),3-MA(20mmol/L)預處理10 h后加80 μ mol/L的厚樸酚作用24 h的處理組可見空泡量減少(圖4b),在對照組未見或少見空泡的出現(圖4a)。

圖4 MDC染色法標示厚樸酚誘導HepG-2細胞胞漿空泡

為了分析厚樸酚作用HepG-2細胞后產生的空泡現象,筆者采用自噬過程早期特異性自噬抑制劑3-MA進行檢測,用濃度為5,10,20和40 mmol/L的3-MA分別作用細胞 10 min后,加入80 μ mol/L厚樸酚作用48 h,MTT法檢測細胞的存活率,發現細胞的存活率上升,說明細胞自噬作用被抑制(圖5)。

圖5 3-MA對HepG-2細胞存活率的影響(mean±SD,n=3)

4 討論

近年來研究表明,厚樸酚具有細胞毒活性及抗氧化作用等廣泛的生物活性,有報道厚樸酚能夠誘導人結腸癌細胞(COLO-205)和人肝癌細胞(HepG-2)凋亡,從而抑制其增殖[5]。細胞凋亡(apoptosis)又稱程序化細胞死亡(programmed cell death)是多細胞有機體為調控機體發育維護內環境穩定,由基因控制的細胞主動死亡過程[6]。凋亡細胞在形態學上最重要的特征是細胞核染色質異常凝集,核固縮,繼而通過形成凋亡小體而消亡。自噬性細胞死亡是一種非凋亡性程序性細胞死亡,是一種降解胞質內容物的溶酶體途徑,可以降解細胞內長期存在的蛋白質和細胞器[7]。自噬可以促進壞死,與凋亡有所不同。自噬具有幫助細胞免于凋亡的作用,在應激條件下自噬與凋亡常常同時出現[8]。在研究中,MTT法證明厚樸酚對人非小細胞性肺癌HepG-2細胞具有細胞毒作用,并呈明顯的時間依賴性。LDH活力檢測顯示高濃度厚樸酚可促進HepG-2細胞壞死,更明確其具有細胞毒作用。而TUNEL法檢測時很少見高濃度的厚樸酚促進細胞發生凋亡,證明厚樸酚促進HepG-2細胞死亡,不是通過凋亡途徑。MDC染色法表明高濃度厚樸酚作用后的細胞有大量胞漿內空泡,與文獻描述的自噬過程出現的空泡相似[9],證明有自噬泡的產生。3-MA為特異性自噬抑制劑,對厚樸酚誘導的自噬過程具有很強的抑制作用。當自噬作用被3-MA抑制后,細胞死亡率比厚樸酚單獨作用時的細胞死亡率明顯減少,進一步表明高濃度的厚樸酚作用可以誘導HepG-2細胞自噬體的產生,出現自噬性細胞死亡。

綜上所述,厚樸酚可通過細胞自噬途徑而非凋亡途徑抑制HepG-2細胞生長。

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