聚芳酰胺-多壁碳納米管混合物固定漆酶電極的電化學行為

曾 涵 廖鈴文 李明芳 陶 騫 康 婧 陳艷霞

(中國科學技術大學化學物理系,合肥微尺度物質科學國家實驗室(籌),合肥 230026)

聚芳酰胺-多壁碳納米管混合物固定漆酶電極的電化學行為

曾 涵 廖鈴文 李明芳 陶 騫 康 婧 陳艷霞*

(中國科學技術大學化學物理系,合肥微尺度物質科學國家實驗室(籌),合肥 230026)

以聚芳酰胺-多壁碳納米管混合物為載體,利用漆酶表面氨基與聚芳酰胺主鏈端羧基的共價偶聯以及碳納米管與漆酶間的疏水作用,構筑了具有較高穩定性和電催化活性的漆酶修飾電極.并對該固酶修飾電極的固酶量、酶活力、電化學行為及其電催化氧還原的性能進行了表征.對漆酶分子具有親和力的聚芳酰胺芳環結構及聚芳酰胺端羧基與漆酶表面氨基的共價偶聯避免了漆酶的脫落和變性.而碳納米管與聚芳酰胺的混合使得該三維修飾電極具有良好的電子導電性,并成功地實現了漆酶的氧化還原活性位與電極之間的直接電荷轉移,這一點可由在0.73和0.38 V附近觀察到漆酶的T1和T2(漆酶的T1,T2銅活性位的形式電位分別為0.78和0.39 V(vs NHE))銅活性位的兩對氧化還原峰確認.漆酶的擔載量為56.0 mg·g-1,具有電化學活性的漆酶占總擔載漆酶量的68%.在pH=4.4磷酸鹽緩沖溶液中,該修飾電極上氧氣還原的起始電位為0.55 V,其對氧氣的米氏常數KM為55.8 μmol·L-1,對氧氣的檢測限為0.57 μmol·L-1.在4℃下保存兩個月后能實現直接電荷轉移的漆酶量僅下降了14%左右而氧還原超電勢提高了約50 mV.結果表明該修飾電極有望用作酶基生物燃料電池的陰極和電流型氧氣傳感器.

漆酶;直接電子遷移;氧還原;生物電催化;生物傳感器

漆酶(Lac)是一類含銅的多酚氧化酶,能催化氧化許多芳香化合物,同時使氧氣還原成水[1].漆酶的活性中心由四個銅離子組成,按照譜學特征分為三組[2]:T1(含有一個接近酶分子疏水表面的銅離子,一般認為這個活性位點是主要的電子受體),T2(含有一個銅離子)和T3位(包含兩個銅離子,一般認為氧分子在T2和T3形成的三核銅簇上結合時,通過接受來自T1位的電子并形成水分子).由于漆酶能在較高電位(接近其T1位的形式電位0.78 V vs RHE)下催化氧還原反應,而且氧還原反應速率快,選擇性好,因此漆酶被認為是微型生物燃料電池較有潛力的陰極氧還原反應的催化劑[3-6].但是與其它酶催化劑類似,漆酶的活性中心被酶蛋白質骨架包裹,使該活性中心與導電基底間的直接電子遷移不易實現,而且酶修飾電極易受環境因素影響而失去活性,因此構筑能進行電極-酶活性中心間直接電荷遷移,并具有高穩定性以及高漆酶擔載量和利用率的漆酶修飾電極是成功實現上述應用的關鍵,也是近期研究的熱點之一[79].

文獻報道構筑漆酶修飾電極所采用的方法可大致分為以下幾類:i)利用分子導線直接連接電極與漆酶的活性中心[10-11];ii)向電極體系中引入可自由擴散的電荷轉移媒介體或將電荷轉移媒介以物理吸附或化學偶聯作用固定在固酶載體的三維結構中[12-17];iii)以由兼具親漆酶結構的聚合物以及導電性物質組成的混合物為載體擔載漆酶,如將漆酶固定在熱敏性水凝膠[18],納米多孔導電材料中[19]或是將漆酶固定在具有生物親和力的親水/親油分子修飾的導電載體(如碳納米管或碳微晶體)的三維體相結構中[2021].

其中第一種方法利用分子導線直接將漆酶的活性中心與電極表面導通,其效率在理論上應該最高,但目前對漆酶活性位點的結構及活性位點周圍的化學環境的認識并不充分,也很難將漆酶的活性中心如同文獻報道[22]的葡萄糖氧化酶那樣進行去輔基處理,以達到在電極上進行重構以實現電極與活性中心的直接導通的目的.最近,Armstrong研究小組[10-11]發現以具有強疏水多芳環的稠環芳烴重氮鹽修飾的電極可以較穩定地吸附漆酶并促進電子在電極基底和漆酶T1位的氧化還原中心間的遷移,并能在0.9 V(vs RHE)左右實現氧氣的電催化還原.但使用的蒽和其它稠環芳烴對環境有較強的污染,其作為電極修飾劑進行推廣應用存在一定限制,而且利用該方法只能實現擔載在電極表面第一單層的漆酶分子與電極基底之間的有效導通,因此要提高單位面積的電流密度還有待于發展三維的固酶電極.

第二種方法所采用的擴散型媒介體:一方面反應的輸出電壓受電子媒介體的氧化還原電位所制約,因此選擇合適的媒介體非常關鍵;另一方面,即使在其它條件完全優化后,媒介體的傳質步驟很可能成為整個反應的決速步驟,從而限制電極性能的進一步提升.最近報道的采用與高分子骨架以配位鍵相聯的具有可逆氧化還原行為的金屬離子絡合物作為電子媒介體的漆酶修飾電極其氧還原的起始電位可高達0.78 V,在氧氣飽和的溶液中其極限擴散電流密度達到325 mA·cm-2[17].但是該方法存在成本高、使用了有毒的貴金屬,制備純化工藝復雜等缺陷.

第三種方法通過采用多孔導電載體制備三維電極從而大大提高單位面積的固酶量,如果能有效控制漆酶在此三維結構中取向和構型,使之利于漆酶活性中心和導電載體之間的電子遷移,并維持其活性位構象及其疏松多孔性,從而利于反應物如氧氣的傳輸與在活性位的轉化,那將最有可能開發出具有高反應活性和穩定性的可實用酶修飾電極.但目前文獻報道采用該策略制備的漆酶修飾電極普遍存在不能可控地調控三維多孔載體結構中漆酶的取向以保持其利于電子隧穿以及反應物、產物傳質的構型,因此所制備的酶修飾電極還存在氧還原的超電勢高,酶電極的長期穩定性不太好等缺點[3,9,20].

多壁碳納米管(MWCNTs)具有高比表面,較好的導電能力且表面有一定疏水性和生物兼容性,被認為可能是實現酶活性中心和電極之間的直接電子傳遞的理想導線.但是,對碳納米管固酶修飾電極的研究表明多壁碳納米管易于在水溶液中團聚,不但降低載體與漆酶的有效接觸表面積,而且增加底物向漆酶活性位傳輸的位阻,使固定漆酶與底物親和力下降從而大大降低了其對氧氣和其它有機物的催化能力[3,2324],此外,研究表明漆酶與納米管直接作用時可能導致漆酶的構象變化,使其不利于酶活性中心與電極間的直接電子遷移[3].

本文試圖結合第一類和第三類方法的特點,使用具有良好導電性的碳納米管和對漆酶分子有較好親和力的聚芳酰胺(PAA)的混合物作為固酶載體(PAA經過脯氨酸處理后在端基接枝了羧基),利用共價偶聯、疏水作用來固定云芝漆酶,并將固酶混合物修飾到玻碳電極(GCE)上制成漆酶修飾電極(用Lac/PAA-MWCNTs/GC表示).PAA以對苯二甲酰氯和己二胺為原料縮聚得到,PAA與MWCNTs共混得到PAA-MWCNTs混合物再經脯氨酸處理后,就能得到主鏈兩端都含有羧基的嵌段聚合物.一方面,該混合物中含對漆酶具有親和力的芳環結構,有助于維持漆酶在電極上利于電子隧穿的構象;另一方面經脯氨酸處理的PAA的兩個端基也可與漆酶外表面賴氨酸殘基[25]中氨基(至少有四個)形成酰胺鍵,從而可牢固地固定漆酶;碳納米管的疏水側壁和中空管也可物理吸附漆酶分子,因此混合物不但具有更高的固酶載量,而且通過納米管的中空結構擴大了固定漆酶與底物接觸面積,因此固定漆酶與底物的親和力也會得到相應的改善.多壁碳納米管的引入,又克服了該嵌段共聚物的電子導電性差的缺點,有可能在不加任何電子媒介體的情況下實現酶活性中心和電極之間的直接電子遷移.以循環伏安法研究了該修飾電極在除氧的磷酸鹽緩沖液中的直接電化學特征,考察了此固酶修飾電極氧還原催化能力及其長期穩定性,同時還測定了固定漆酶對底物氧氣的親和力及氧氣檢測限.研究表明, Lac/PAA-MWCNTs/GC具有良好的穩定性和氧還原催化性能,有望用作酶基生物燃料電池陰極和電流型氧氣傳感器.

1 實驗部分

1.1 化學試劑

對苯二甲酰氯、己二胺、CCl4、NaOH、HCl、脯氨酸、甲醇等試劑均為分析純,購自國藥集團化學試劑有限公司;N-乙基-N'-(3-二甲基氨丙基)碳二亞胺(EDC),N-羥基丁二酰亞胺(NHS)均為分析純,購自阿拉丁試劑公司(中國);純化的云芝漆酶(相對分子質量為68000)及相應底物2,6-二甲氧基苯酚(DMP) (分析純)購自美國Sigma化學試劑有限公司.實驗過程中使用的緩沖溶液為0.2 mol·L-1的磷酸二氫鉀緩沖液(PBS,pH=4.4),所有溶液均用Milli-Q超純水配制.多壁碳納米管(MWCNTs)(直徑20-40 nm,長度5-15 μm)購自深圳納米港有限公司.其他試劑未加說明均為分析純.

1.2 聚芳酰胺(PAA)的制備

稱取1.35 g對苯二甲酰氯,振搖以盡量使對苯二甲酰氯溶解于CCl4中;另稱取己二胺0.77 g和NaOH 0.53 g,共用100 mL水將其分別溶解后混合均勻,配成水相,將有機相與水相混合,將反應混合物于磁力攪拌下室溫反應4 h,再將生成的聚芳酰胺放入盛有200 mL 1%的HCl水溶液中浸泡后,用水充分洗滌至中性,再用蒸餾水洗后壓干,粉碎,80℃真空干燥24 h.

1.3 Lac/PAA-MWCNTs/GC的制備

芳酰胺-多壁碳納米管固定漆酶復合物的制備過程參見Scheme 1.首先,MWCNTs按文獻方法[26]以濃硝酸處理后使用,然后將5 mg經純化處理過的MWCNTs與5 mg PAA縮聚物,1.5 mL無水甲醇的水溶液(甲醇和水的體積比為1:3),75 mmol·L-1EDC-15 mmol·L-1NHS混合液400 μL在磁力攪拌下共混6 h,得到一黑色粘稠懸濁液.在20℃,7000 r·min-1的轉速下離心分離(德國Sigma 2K15型高速離心機)將上層清液倒去,以磷酸鹽緩沖液沖洗黑色粘稠物以除去表面上吸附的EDC-NHS分子,重復前述步驟3次,最后得到為PAA與MWCNTs的混合物PAA-MWCNTs.接著向體系中加入1.5 g·L-1脯氨酸溶液,并對該混合物溶液磁力攪拌20 min后于室溫靜置6 h,將上清液除去并再次向體系中加入75 mmol·L-1EDC-15 mmol·L-1NHS混合液400 μL以活化PAA上主鏈兩端接枝的脯氨酸殘基上的羧基,室溫下靜置6 h后倒去上清液,用PBS清洗黑色粘稠的復合物3次,以除去體系中剩余的EDC和NHS,得到端羧基活化的PAA主鏈兩端接枝脯氨酸(proline)的修飾PAA,用pro-g-PAA-MWCNTs表示.抽取400 μL 1.1 g·L-1漆酶(溶解于PBS)與400 μL上述pro-g-PAA-MWCNTs共混,磁力攪拌30 min后放在4℃冰箱中過夜保存.將混合液中上層清液傾去,以PBS清洗懸濁液3次以除去在固酶基元上吸附不牢的漆酶分子.所制備的黑色粘稠液平時儲存于4℃冰箱中.吸取15 μL上述黑色粘稠液體滴涂在玻碳電極表面,4℃下干燥后得到固定漆酶修飾電極,即Lac/PAA-MWCNTs/GC.

1.4 漆酶復合物中漆酶擔載量以及固酶比活力的測定

聚芳酰胺-多壁碳納米管復合物固定漆酶量按照文獻方法[27]測定,以石墨爐原子吸收法(Analyst 800型原子吸收光譜儀,美國Perkin-Elmer公司,主機:雙光束火焰/石墨爐原子吸收分光光度計,光譜范圍:190-870 nm)測定復合物固定漆酶載量,由于每個漆酶分子含有四個銅離子,故可以通過下述公式計算漆酶固定百分率:

漆酶固定百分率=[(加入漆酶的含銅量-未固定漆酶的含銅量)/加入漆酶的含銅量]×100%

固定漆酶擔載量=[(漆酶母液濃度×母液體積×漆酶固定百分率)/固酶復合物載體質量]×100%

復合物固定漆酶的比活力測定參照文獻方法[19,25]進行,將制備的固酶復合物與3 mL pH為4.4的PBS緩沖液和100 μL的10 mmol·L-1DMP混合液共混1 min后,迅速移取上清液到比色皿中并測定溶液中DMP氧化產物2,6-二甲氧基苯醌在470 nm處的吸光度(U-2810型紫外可見分光光度計,日本島津公司,比色皿厚度1 cm),記錄吸光度對時間的關系曲線.2,6-二甲氧基苯醌的摩爾吸光系數為49600 L·mol-1·cm-1[19],定義酶活力單位為1 min內氧化1 μmol DMP所需要漆酶的量.

1.5 Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極的電化學行為表征及氧還原能力測試

采用常規三電極電解池進行電化學實驗.Lac/ PAA-MWCNTs/GC(GC,直徑6 mm,購自天津艾達恒晟工貿有限公司)作為工作電極.玻碳電極使用前先用3500#砂紙打磨,然后依次用1.0、0.5 mm粒徑的氧化鋁粉漿拋光,然后再用丙酮和超純水超聲清洗各兩次,每次2-3 min.對電極為鉑片電極,參比電極為Ag/AgCl電極,電化學測量在CHI-1140A型電化學分析儀(CHI Inc,上海辰華)上進行.實驗中磷酸鹽緩沖液不斷通入超純N2(南京特氣)除氧.本文中的所有電勢都是相對于標準氫參比電極,所有的循環伏安曲線(CV)均經過 IR補償.在 Lac/ PAA-MWCNTs/GC的氧還原催化實驗中,不斷向PBS溶液中通O2(南京特氣)15 min以使PBS為氧氣飽和.測試溫度:(25.0±0.4)℃,在此溫度下PBS中氧氣的飽和濃度為1.1 mmol·L-1[6],而空氣飽和的PBS中氧氣濃度為260 μmol·L-1[17].計時電流法測定氧氣濃度的實驗在含有不同濃度氧氣的PBS溶液中進行,這一系列不同氧氣濃度的PBS緩沖液由通氮除氧的PBS緩沖液中加入不同體積的空氣飽和的PBS緩沖液制得.氧還原反應的電壓恒定在0.35 V.

2 結果與討論

2.1 漆酶在PAA-MWCNTs上的擔載量和固定漆酶的比活力

實驗測得聚芳酰胺-多壁碳納米管復合物固定漆酶的百分率為63.6%,漆酶擔載量為56.0 mg·g-1,固定漆酶的比活力為1.18 U·mg-1.較文獻報道[25]的(共價偶聯法固定漆酶)納米多孔金的固酶量(16.0 mg· g-1)和漆酶比活力(0.83 U·mg-1)高很多.除了前述的聚芳酰胺基元主鏈兩側的羧基可以與漆酶分子表面賴氨酸基團中的氨基發生化學偶聯[25]之外,聚芳酰胺主鏈的疏水芳環[10-11],碳納米管的疏水側壁與漆酶分子間的良好相容性[3,10]也可能是復合物基元具有高固定漆酶量和高固酶比活力的原因之一.

2.2 Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極的直接電化學行為

圖1中的實線為Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極在無氧PBS中的循環伏安曲線.從圖1中可以看出:在正向掃描過程中分別在0.78和0.43 V出現兩個氧化峰;而在逆向掃描過程中所對應的還原峰分別在0.68和0.33 V出現.對照實驗表明,在除氧PBS緩沖液中,純聚芳酰胺修飾的GCE電極(PAA/GC)在給定的掃描電位區間內沒有出現任何氧化還原峰(圖1點線);在以聚芳酰胺與碳納米管混合物修飾的GC電極(PAA-MWCNTs/GC)上也未觀察到任何氧化還原峰(圖1虛線),而偶聯漆酶的聚芳酰胺修飾玻碳電極由于缺乏導電粒子以致于幾乎觀察不到任何氧化還原峰(圖不再給出).另外,文獻報道[3]碳納米管直接吸附漆酶后修飾GC電極也沒有觀察到任何氧化還原信號.這兩對氧化還原峰的平均值分別為0.73和0.38 V,與文獻[5]報道的漆酶T1和T2活性中心的形式電位(分別是0.78和0.39 VvsNHE)接近,根據上述事實我們推斷這兩對氧化還原峰可能分別來自漆酶活性中心T1和T2位銅離子的氧化還原.說明在固定漆酶的PAA與多壁碳納米管混合物修飾的玻碳電極上實現了云芝漆酶與電極表面之間的直接電子轉移,無需加入任何電子中介體.

從圖1中Lac/PAA-MWCNTs/GC電極在PBS緩沖液中CV曲線,依據其氧化還原峰的積分面積以及下述公式可以求算出該修飾電極上具有電化學活性的漆酶的擔載量Γ*(mol·cm-2):

其中Q為位于0.73 V的氧化還原峰的電量(扣除雙層充電電量),z按文獻報道[5,19]的漆酶活性結構及催化機制可設定傳遞電子數為1,F為法拉弟常數,A為電極的幾何表面積,為0.283 cm2.由此計算得出的Lac/PAA-MWCNTs/GC上漆酶的平均覆蓋度為6.3×10-9mol·cm-2.這個數值比理論上漆酶在電極表面單分子層吸附的量(約4.64×10-12mol·cm-2,以漆酶的最大橫截面積為35.8 nm2估算)[25]要高得多,大約相當于1350單層漆酶緊密堆積在電極表面,較文獻報道[19]的納米多孔金固定漆酶的覆蓋率(2.1× 10-11mol·cm-2)高了兩個數量級.這也與前述以石墨爐原子吸收法測定復合物固定漆酶載量較高的結論相一致.此外根據漆酶在載體上的擔載量,固酶載體質量(3.2 mg)及Lac/PAA-MWCNTs/GC上漆酶的平均覆蓋度,電極的幾何面積(0.283 cm2)和漆酶的相對分子質量為68000[25,28],可以計算出具有電活性的漆酶分子占固定漆酶分子總數的百分數為67.6%.圖2為Lac/PAA-MWCNTs/GC組裝后和于4℃下存放兩個月后于無氧磷酸鹽緩沖液中測試得到的循環伏安曲線.從圖2中可以看出Lac/PAAMWCNTs/GC在組裝后立即在無氧磷酸鹽緩沖液測得的CV(圖2實線)和4℃下存放兩個月后再于無氧磷酸鹽緩沖液中測得的CV(圖2虛線)形狀相似,峰電流大體不變,只是峰電位負向移動了大約50 mV.這表明:Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極的低溫下長期保存仍然具有相當程度的穩定性(由峰面積求算得到的具有電活性的漆酶分子是電極新制備時的86%).

2.3 Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極的氧還原催化性能及催化穩定性表征

在Lac/PAA-MWCNTs/GC上有效地實現電子在電極與復合物固定漆酶的活性中心間直接遷移的基礎上,我們進一步研究了該固酶修飾電極對氧氣的電催化還原的性能.圖3是Lac/PAA-MWCNTs/ GC在除氧(點線),空氣飽和(虛線)和氧氣飽和(實線)的磷酸鹽緩沖液中的循環伏安曲線.從圖3中可以看出在磷酸鹽緩沖液中,無論溶液為空氣飽和還是被氧氣飽和,Lac/PAA-MWCNTs/GC的氧還原都始于0.55 V,氧還原電流密度都隨著電極電勢的負移和氧濃度的增加而增加,并在0.35 V附近達到極限擴散電流.比文獻報道的納米多孔金固定漆酶電極的氧還原起始電位正移了約0.1 V[19].與文獻報道[18]的聚異丙基丙烯酰胺水凝膠固定漆酶修飾ITO電極相比(在峰出現位置相近的情況下),氧化還原峰更明顯,峰形更好.但與近來Armstrong等[10-11]利用稠環芳烴重氮鹽固定漆酶修飾熱解石墨電極的氧還原起始電位0.9 V相比低了約0.35 V,與最近文獻報道的含鋨基配體的氧化還原聚合物固定漆酶的氧還原起始電位[17]相比低了約0.3 V.

圖4是Lac/PAA-MWCNTs/GC電極催化氧氣還原的穩定性測試,從圖中可以看出該電極的氧還原催化的穩定性較好,在4℃下保存2個月后催化氧還原的超電勢僅負移了大約50 mV.

從氧還原的起始電位和不同氧濃度下催化還原電流的響應來看,盡管制備Lac/PAA-MWCNTs/ GC修飾電極中酶的擔載量高,而且所擔載的酶中其活性中心能與電極間直接發生電荷轉移的酶的比例高達70%,但是該電極還存在著氧還原電流隨O2的濃度增加不太明顯的缺陷.從空氣飽和的溶液到氧氣飽和的溶液,氧氣的濃度提高了約5倍,氧還原的極限電流卻僅提高了1.5倍.這可能是由于覆蓋在電極上的固酶復合物基元過厚,對氧氣傳質形成一定的障礙.本文還對Lac/PAA-MWCNTs/GC的重復使用性進行了研究,實驗結果表明:此固酶修飾電極在氧氣飽和的0.2 mol·L-1磷酸鹽緩沖液(pH=4.4)中重復使用8次后氧還原的峰電位沒有發生變化,氧還原極限電流仍然可以達到初次使用時的85%左右(圖不再給出),優于文獻[25]報道的納米多孔金固定漆酶在類似體系中的重復使用性(固定漆酶的活力在重復使用8次后僅為初始活力的大約65%).

盡管本文制備的此種固酶修飾電極的氧還原的超電勢較高,氧氣的傳質阻力大,但利用本方法制備酶修飾電極不需使用復雜的制備和純化工序、對環境有害的稠環芳烴或重金屬絡合物以及昂貴的電子中介體,因此該修飾電極與前述性能較高的酶修飾電極而言仍然具有一定的優勢.因此,下一步我們將嘗試通過采用改善聚合物結構(例如改變聚合物形貌,增大比表面積以及進一步對聚合物結構改性增加側鏈上可鍵合漆酶分子的官能團數目),減小氧氣和其它底物在固酶基元修飾層中傳質阻力,改善固酶基元與底物親和力的方法來提高其電催化性能.

2.4 Lac/PAA-MWCNTs/GC修飾電極作為氧傳感器測定氧氣的濃度

圖5是Lac/PAA-MWCNTs/GC電極在無氧溶液中連續注入不同體積空氣飽和溶液時產生響應電流的計時電流曲線.從圖5中可以看出(從文獻[7]可知:實驗溫度下空氣飽和水溶液中氧氣濃度可以設定為260 μmol·L-1):在氧氣濃度從1.7-13.2 μmol·L-1的范圍內,催化電流與氧氣濃度成線性關系.氧氣濃度檢測限為0.57 μmol·L-1(S/N=3),其檢測下限不到文獻報道[6]的納米管-殼聚糖固定漆酶氧傳感器的氧氣濃度檢測限7.8 μmol·L-1的十分之一,而且無需加入中介體;由Lineweaver-Burk曲線(濃度倒數-催化電流倒數)可以推算KM=55.8 μmol· L-1,較文獻報道[6]的納米管-殼聚糖固定漆酶氧傳感器的KM=3.22 mmol·L-1低得多.

3 結論

利用共價偶聯成功制備了Lac/PAA-MWCNTs/ GC電極,通過石墨爐原子吸收法和分光光度法表征了酶在PAA-MWCNTs復合物上的擔載量以及固定漆酶的比活力.并以電化學方法(循環伏安,計時電流法)表征了此電極的電化學行為和氧還原催化性能.研究表明:PAA-MWCNTs復合物固定漆酶的量較高且固定漆酶具有較高的比活力;Lac/ PAA-MWCNTs/GC電極在不含任何電子中介體的無氧磷酸鹽緩沖液中能夠實現酶活性中心與導電基體間的直接電子遷移,而且相當部分的固定漆酶具有電活性,此種固酶修飾電極具有較好的重復使用性和長期穩定性;在含氧溶液中,酶修飾電極生物電催化氧還原始于0.55 V,在大約0.35 V達到極限擴散電流.該電極對氧的檢測限低至不足1 μmol·L-1,同時具有較高的氧親和力,說明同時采用含有大比表面納米結構的導電基體和對漆酶有兼容性的材料(與漆酶活性中心性質匹配或是具有能與漆酶活性中心鄰近部位的基團發生化學鍵合的官能團)為載體固定漆酶,有望開發出高效的酶催化生物燃料電池的陰極以及電流型氧傳感器,這方面的工作還在進行之中.

致謝： 本文特在此向中國科學技術大學化學物理系張廣照教授及其研究小組給予的技術幫助和資金支持表示衷心的感謝.

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Poly Aryl Amide and Multiwalled Carbon Nanotube Composite Supported Laccase Electrode and Its Electrochemical Behavior

ZENG Han LIAO Ling-Wen LI Ming-Fang TAO Qian KANG Jing CHEN Yan-Xia*
(Hefei National Laboratory for Physical Sciences at Microscale,Department of Chemical Physics, University of Science and Technology of China,Hefei 230026,P.R.China)

A novel strategy for the immobilization of laccase onto a glassy carbon electrode with high stability and electrocatalytic performance is presented.Laccase is attached to a matrix of mixed poly aryl amide(PAA)and multiwalled carbon nanotubes(MWCNTs)(denoted Lac/PAA-MWCNTs/GCE)by covalently bonding the surface amine group of laccase to the terminal carboxyl group of PAA and hydrophobic-hydrophobic interaction between MWCNTs and the laccase.The PAA backbone avoids the detachment and denaturing of the laccase,and the intermixed MWCNTs provide high electronic conductivity. The loading of laccase is 56.0 mg·g-1and more than 68%shows electrochemical activity.The electrode delivers direct electron transfer between the redox center of the laccase and the electrode with two pairs of redox peaks at 0.73 and 0.38 V,which is close to the formal potential of the T1and T2Cu-sites(0.78 and 0.39 V(vs NHE)),respectively.The onset potential for O2reduction reaction(ORR)is ca 0.55 V in a phosphate buffer solution(pH=4.4).The Michaelis constant(KM)of the Lac/PAA-MWCNTs/GEs for O2is 55.8 μmol·L-1and the detection limit of oxygen reaches 0.57 μmol·L-1.After 2 months of storage at 4°Cthe ORR activity of the Lac/PAA-MWCNTs/GC electrode retains ca 86%of its initial values and the peak potential of the ORR shifts negatively by ca 50 mV.Given the excellent catalytic performance towards ORR and its high stability this strategy will be widely applicable to the development of an enzyme-based cathode for biofuel cells and amperometric biosensors for oxygen.

Laccase; Direct electron transfer; Oxygen reduction reaction; Bioelectrocatalysis; Biosensor

O646;O629.8

Received:July 7,2010;Revised:September 3,2010;Published on Web:October 29,2010.

?Corresponding author.Email:yachen@ustc.edu.cn;Tel:+86-551-3601511.

The project was supported by the National Natural Science Foundation of China(20773116)and National Outstanding Young Scientists Foundation of China(20474060).

國家自然科學基金(20773116)和國家杰出青年基金(20474060)資助項目

?Editorial office ofActa Physico-Chimica Sinica