喬磊,崔艷華,曲曉軍
(1.哈爾濱工業大學 食品科學與工程學院,哈爾濱 150090;2.黑龍江省科學院 微生物研究所,哈爾濱 150010)
乳酸菌的適酸性調節
喬磊1,崔艷華1,曲曉軍2
(1.哈爾濱工業大學 食品科學與工程學院,哈爾濱 150090;2.黑龍江省科學院 微生物研究所,哈爾濱 150010)
探討了乳酸菌適酸機制有助于抗酸菌株的篩選、發酵過程中工序的優化以及培養基的優化等,進而大大提升發酵產品品質。對質子泵、產堿、細胞膜變化、大分子保護修復以及耐酸調節在內的適酸性調節機制進行了一一闡述。
乳酸菌;質子泵;適酸性;調節
乳酸菌是能發酵碳水化合物產生乳酸的一類革蘭氏陽性細菌的總稱。部分乳酸菌為人體內必不可少的具有重要生理功能的益生菌。同時乳酸菌還廣泛應用于食品發酵工業。
發酵過程中由于產生乳酸,生存環境的pH值會從初始的6.6到6.8降到4.2左右[1]。另外,在人的胃腸道中產生有益作用的乳酸菌,也會面臨胃液中的低pH環境。在這種低酸度的不利環境中,大多數微生物都會腐敗裂解死亡。而乳酸菌卻能生存,表明乳酸菌具有較強適酸能力。那么,乳酸菌是如何進行適酸性調節進而生存下來的呢?研究證明,乳酸菌耐酸性調節過程中涉及質子泵、細胞膜組成變化、DNA損傷修復、蛋白質損傷修復以及調節子調控等復雜過程。乳酸菌的耐酸性調節在不同類別的菌群中也存在差異。
該途徑通過去羧基反應產生ATP轉運和消耗胞質內的H+,從而提高細胞質環境的pH值。此系統與細胞質環境中的酶活性有著密切的關系。
F1F0-ATP酶是一多亞基分子,其既能在消耗ATP的條件下產生分子跨膜動力,也能在分子跨膜動力的推動下產生ATP。分子跨膜動力需要將細胞內細胞質中的H+排到胞外,從而使細胞內的pH值升高。F1F0-ATP酶受atp操縱子的編碼調控。atp操縱子含有編碼F1F0-ATP酶5個亞基(α,β,δ,γ,ε) 的所有基因。F1(α3 β3 δγε) 組分含有催化亞基, 可以催化ATP的水解。F0(a b c)組分是一個跨膜的質子通道,質子經過通道進入基質的過程與ATP的形成偶聯。研究證明,在另外一條電子傳遞途徑失活狀態下,F1F0-ATP酶對于乳酸菌的生長起著至關重要的作用[2,3]。實驗表明,嗜酸乳桿菌中atp(編碼F1F0-ATP酶亞基)mRNA在低pH條件誘導下轉錄量明顯增加[4]。
陽離子轉運ATP酶,例如K+-ATP酶,同樣也對胞內pH的動態平衡起著重要作用。K+-ATP酶通過胞內外K+與H+的交換來調節胞內pH的平衡。例如,對于生長外界pH值為5.0的變形鏈球菌而言,以葡萄糖為能源的細胞在缺乏25 mmol/L的K+和有25 mmol/L的K+兩種培養條件下,耐酸能力下降,僅僅可以經受5.5和6.14的pH環境[5]。
谷氨酸脫羧酶可通過在脫羧反應中消耗H+來調節胞內pH。谷氨酸在特定運載體的協助下轉運到胞內,在谷氨酸脫羧酶的催化作用下消耗H+發生脫羧反應。谷氨酸脫羧反應的產物-γ-氨基丁酸,與反向運載體結合轉運出胞外[6]。由于H+消耗,胞內的pH值上升;同時,由于相比于谷氨酸酸性更弱的γ-氨基丁酸的產生,胞外pH值也略有上升。研究證明,乳酸桿菌E1亞種丙氨酸脫羧酶催化的谷氨酸脫羧反應與胞內質子的排出形成偶聯[7]。
乳酸菌除了通過質子泵方式消耗胞內質子外,也可以通過產生堿性物質中和胞內質子,調節胞內pH,主要包括精氨酸脫亞胺酶和脲酶途徑。
精氨酸脫亞胺酶代謝途徑是胞內pH平衡的另一有效機制[8]。這一途徑由精氨酸脫亞胺酶、鳥氨酸氨基甲酰轉移酶和氨基甲酸激酶組成。這三個酶催化精氨酸轉變成鳥氨酸、氨氣和CO2的反應,并且反應過程中每消耗1 mol精氨酸形成1 mol ATP。反應產生的NH3與H+反應使環境堿化,pH值升高。同時,形成的ATP促使細胞質中的H+在F1F0-ATP酶的作用下排出胞內。實驗表明,在培養基中添加47.5mM精氨酸可以保護鼠鏈球菌FA-1亞種在pH3.5或4.0環境中生存至少6 h[9]。
脲酶能夠催化尿素分解生成CO2和NH3(每分子尿素生成兩分子NH3),從而使環境堿化。人們已經在嗜熱鏈球菌和唾液鏈球菌中發現脲酶的活性。研究證明,脲酶催化的尿素分解代謝能夠保護唾液鏈球菌長時間處在酸環境中,而不死亡[10]。
由于編碼細胞膜合成、組裝和維修的基因突變,革蘭氏陽性菌對酸會很敏感[10]。研究證明,細胞膜上的脂肪酸組成變化對于細胞在pH值下降環境中生存起著關鍵的作用。在pH值為5的環境中成長的變形鏈球菌,與在pH值為7中生長的該菌相比,其細胞膜上單不飽和脂肪酸和長鏈脂肪酸的含量高[11]。高含量的單不飽和脂肪酸和長鏈脂肪酸,可以降低H+對細胞膜的滲透[1]。另外,乳酸乳球菌中參與肽聚糖合成的特定青霉素結合蛋白的失活也會導致細胞對pH的敏感性增加。這些研究充分說明,細胞膜組成變化,尤其是脂肪酸變化,對乳酸菌耐酸能力起著至關重要的影響。
此外,在酸性環境下,其他機制可能對維持細胞膜的完整性起著一定得作用。例如,在酒類酒球菌中,Lo18(小分子熱休克蛋白)可能參與熱或酸刺激后膜或包膜蛋白的穩定[1]。在變形鏈球菌中,低pH條件下,ffh基因轉錄上調。ffh缺陷型菌株對酸敏感,并且在低酸度刺激下不能快速加強細胞膜上F1F0-ATP酶活性,將胞內H+及時排出去[12]。
對生物大分子,例如蛋白質和DNA,起著保護修復的作用的大量蛋白質,在乳酸菌的適酸機制中起著不可缺失的作用。
陪伴蛋白通過蛋白質分子的折疊、變性蛋白質的復原保護以及損傷蛋白質的排出等多種方式參與乳酸菌的適酸性調節[8]。在幾類乳酸菌關于適酸性調節的蛋白質組學分析研究表明,陪伴蛋白經常在低pH下高表達,可能是用來修復低酸條件下產生的損傷蛋白,或者促進蛋白質的折疊[6]。大腸桿菌中,陪伴蛋白DnaK低酸誘導產生的高表達增強了UrvA(UrvABC的必需亞基,在DNA損傷識別和核酸酶組裝中起著重要作用)的穩定性[13]。這個觀察表明,陪伴蛋白在適酸調節中起作用的原因之一是確保DNA損傷修復機制的正常表達。在乳酸菌中普遍存在的對適酸性調節有作用的陪伴蛋白DnaK和GroEL均屬于熱休克蛋白[14]。變形鏈球菌中的dnaK和groE操縱子以及乳酸乳球菌中的groE和clpP操縱子[15-17]的研究表明,其低pH值誘導是由其常用的熱休克調控子HrcA和CtsR調節。
胞內環境的過度酸化會導致DNA脫嘧啶和脫嘌呤。這個過程涉及堿基的質子化以及隨后的堿基和戊糖之間糖苷鍵的斷裂。堿基缺失位點處保留的殘基稱為脫堿基位點或者AP(apurinic,apyrimidique)位點。在乳酸乳球菌中,溫和的紫外輻射可以誘導產生包括適酸機制在內的幾種應激機制,同時,四種在適酸反應中高表達的蛋白質也會在DNA損傷治療的誘導下表達。這表明乳酸菌適酸調節機制可能也包括DNA損傷修復機制[6]。變形鏈球菌中,耐乳酸調節機制通過酸誘導的不依賴于RecA的DNA損傷修復機制增強了對DNA損傷的抗性[18]。這進一步證實了乳酸菌適酸機制中DNA損傷修復機制的存在。
研究表明,pH值為5培養下的變形鏈球菌針對AP位點的核酸內切酶活性增高[19]。同時其他研究表明,變形鏈球菌的uvrA(uvrA是核苷酸切除修復機制的必需成分之一)缺陷型菌株在乳酸耐酸調節表現出缺陷,與野生型菌株對比,在致命pH條件下,存活率下降10倍[20]。因此,在耐酸性調節中,這兩種DNA修復機制可能同時起作用。
細菌通常可以通過雙組分系統感受細胞外環境的變化,并對其進行響應,進行適當的調整以適應變化的環境。研究表明,雙組分系統也參與了乳酸菌的耐酸調節。在乳酸乳球菌中,幾種雙組分系統缺陷型表現出了與耐酸性調節相關的類型[21]。有研究表明,變形鏈球菌可以通過與群體感應相關的胞外信號系統來刺激其耐酸性調節。
同時其他系統也參與了乳酸菌耐酸性調節。乳酸乳球菌高親和力磷酸運載體(pst操縱子)缺陷型菌株對酸有高耐受性[22]。低pH可以降低磷酸運載體的活性,推測磷酸調控的調控子可能在乳酸耐酸調節中起著一定作用[8]。乳酸乳球菌rcfB突變型在致死pH條件下的存活率比野生型低130倍,表明RcfB在耐酸調節中起著關鍵作用[22]。另外,乳酸乳球菌中涉及鳥嘌呤核苷酸代謝的基因(guaA,GMP合成酶和relA,(p)ppGpp合成酶)的失活將導致酸抗性[23]。此外,變形鏈球菌中的SGP蛋白(鏈球菌的GTP結合蛋白,變性鏈球菌的必需GTP酶)可能也參與了耐酸性調節過程,其功能之一就是調節GTP/GDP含量[24]。
如上文所述,乳酸菌存在多種適酸性調節機制,通常適酸調節都是幾種機制的交叉作用。乳酸菌中存在多種參與適酸性調節的基因,其實際功能及調節特點可能會存在較大差異。要獲得完整地適酸性調節機制信息,需要大量深入工作。乳酸菌全基因組的測序,毫無疑問地推動了適酸性調節相關基因的發掘和研究。乳酸菌耐酸基因以及機制的深入研究,勢必為乳酸菌的深度利用和開發奠定理論基礎。
[1]PENAUD S,FERNANDEZ A,BOUDEBBOUZE S,et al.Induction of Heavy-Metal-Transporting CPX-Type ATPases during Acid Adaptation in Lactobacillus bulgaricus[J].Applied and Environmental Microbiology,2006,72:7445-7454.
[2]BLANK L M,KOEBMANN B J,MICHELSEN O,et al.Hemin Reconstitutes Proton Extrusion in an H+-ATPase-negative Mutant of Lactococcus lactis[J].Journal of Bacteriology,2001,183:6707-6709.
[3]KOEBMANN B J,NILSSON D,KUIPERS O P,et al.The Membrane-bound H+-ATPase Complex is essential for Growth of Lactococcus lactis[J].Journal of Bacteriology,2000,182:4738-4743.
[4]KULLEN M J,KLAENHAMMER T R.Identification of the pH-inducible,Proton-translocating F1F0-ATPase(atpBEFHAGDC)Operon ofLactobacillusacidophilusbydifferentialdisplay:GeneStructure,Cloning and Characterization[J].Molecular Microbiology,1999,33(6):1152-1161.
[5]DASHPER S G,REYNOLDS E C.pH Regulation by Streptococcus mutans[J].Journal of Dental Research,1992,71:1159-1165.
[6]陳霞,烏日娜,孟和,等.乳酸菌耐酸機理[J].中國乳品工業,2008,36(3):30-34.
[7]HIGUCHI T,HAYASHI H,ABE K.Exchange of Glutamate and γ-Aminobutyrate in a Lactobacillus Strain[J].Journal of Bacteriology,1997,179:3362-3364.
[8]VAN DE GUCHTE M,SERROR P,CHERVAUX C,et al.Stress responses in Lactic Acid Bacteria[J].Antonie van Leeuwenhoek,2002,82:187-216.
[9]COLON A C,MARQUIS R E.Role of the Arginine Aeiminase System in Protecting Oral Bacteria and an Enzymatic Basis for Acid Tolerance[J].Applied and Environmental Microbiology,1988,54(6):1318-1324.
[10]CHEN Y Y,WEAVER C A,BURNE R A.Dual Functions of Streptococcus salivarius Urease[J].Journal of Bacteriology,2000,182:4667-4669.
[11]COTTER P D,HILL C.Surviving the Acid Test:Responses of Gram-Positive Bacteria to Low pH[J].Microbiology and Molecular Biology Reviews,2003,67(3):429-453.
[12]KREMER B H,VAN DER KRAAN M,CROWLEY P J,et al.Characterization of the Sat Operon in Streptococcus mutans:Evidence for a Role of Ffh in Acid Tolerance[J].Journal of Bacteriology,2001,183(8):2543-2552.
[13]ZOU Y,CROWLEY D J,VAN HOUTEN B.Involvement of Molecular Chaperonins in Nucleotide Excision Repair.DNaK leads to increased Thermal Stability of UvrA,Catalytic UvrB loading,enhanced Repair,and increased UV Resistance[J].Biological Chemistry,1998,273:12887-12892.
[14]CHAMPOMIER-VERGES M C,MAGUIN E,MISTOU M Y,et al.Lactic Acid Bacteria and Proteomics:Current Knowledge and Perspectives[J].Journal of Chromatography B,2002,771:329-342.
[15]LEMOS J A,CHEN Y Y,BURNE R A.Genetic and Physiologic Analysis of the groE Operon and Role of the HrcA Repressor in Stress Gene Regulation and Acid Tolerance in Streptococcus mutans[J].Journal of Bacteriology,2001,183:6074-6084.
[16]HARTKE A,BOUCHE S,GIARD J C,et al.The Lactic Acid Stress Response of Lactococcus lactis subsp.lactis[J].Current Microbiology,1996,33:194-199.
[17]FREES D,INGMER H.ClpP Participates in the Degradation of Misfolded Protein in Lactococcus lactis[J].Molecular Microbiology,1999,31:79-87.
[18]QUIVEY JR R G,FAUSTOFERRI R C,CLANCY K A,et al.Acid Adaptation in Streptococcus mutans UA159 Alleviates Sensitization to Environmental Stress due to RecA Deficiency[J].FEMS Microbiology Letters,1995,126:257-261.
[19]HAHN K,FAUSTOFERRI R C,QUIVEY JR R G.Induction of an AP Endonuclease Activity in Streptococcus mutans during Growth at Low pH[J].Molecular Microbiology,1999,31:1489-1498.
[20]HANNA M N,FERGUSON R J,LI Y H,et al.uvrA is an Acidinducible Gene Involved in the Adaptive Response to low pH in Streptococcus mutans[J].Journal of Bacteriology,2001,183:5964-5973.
[21]O’CONNELL-MOTHERWAYM,VANSINDEREND,MOREL-DEVILLE F,et al.Six Putative Two-component Regulatory Systems Isolated from Lactococcus lactis subsp.cremoris MG1363[J].Genetics and Molecular Biology,2000,146:935-947.
[22]MADSEN S M,HINDRE T,PENNEC J L,et al.Two Acid-inducible Promoters from Lactococcus lactis Require the cis-acting ACiD-box and the Transcription Regulator RcfB[J].Molecular Microbiology,2005,56(3):735-746.
[23]RALLU F,GRUSS A,EHRLICH S D,et al.Acid-and Multistress-resistant Mutants of Lactococcus lactis:Identification of Intracellular Stress Signals[J].Molecular Microbiology,2000,35:517-528.
[24]BAEV D,ENGLAND R,KURAMITSU H K.Stress-induced Membrane Association of the Streptococcus mutans GTP-binding Protein,an Essential G Protein,and Investigation of its Physiological Role by Utilizing an Antisense RNA Strategy[J].Infection and Immunity,1999,67:4510-4516.
Regulation of acid adaptation in Lactic acid bacteria
QIAO Lei1,CUI Yan-hua1,QU Xiao-jun2
(1.School of Food Science and Engineering,Harbin Institute of Technology,Harbin 150090,China;2.Institute of Microbiology,Heilongjiang Science Academy,Harbin 150010,China)
The understanding of acid adaptation mechanisms of LAB will benefit screening the acid-tolerance bacteria,the optimization of procedures in the ferment progress and optimization of culture.This will greatly improve the quality of fermented foods.The acid adaptation mechanisms were discussed,including proton pump,the production of alkali,the changes of membrane,protection or repair of macromolecules and the regulation of acid tolerance.
Lactic acid bacteria;proton pump;acid tolerance;regulation
Q936
B
1001-2230(2011)12-0024-03
2011-07-20
國家自然科學基金資助項目(30901048)。
喬磊(1990-),男,本科,研究方向為分子微生物學。
崔艷華