劉加強 劉洪臣 馮 元 高 輝
Caspase家族是近幾年研究的熱點之一,屬于ICE/CED3蛋白酶家族成員,現已發現至少有14種。該家族與細胞凋亡密切相關,它是通過級聯放大反應,最終激活核酸內切酶來實現介導細胞凋亡的[1]。在眾多的Caspase家族成員中,Caspase-3處于凋亡環節的核心部位,對整個細胞凋亡過程起著決定性作用[2],因此,本實驗目的在于探討Caspase-3在高糖環境下引起的體外人牙周膜細胞凋亡過程中的作用。本實驗分別采用葡萄糖濃度為5.5mmol/L,15mmol/L,25mmol/L,35mmol/L的DMEM培養基培養人牙周膜細胞,時間為24小時,并采用Caspase-3特異性抑制劑z-DEVD-fmk為對照,流式細胞儀檢測各組細胞凋亡情況,Western-blot法檢測Caspase-3蛋白酶原(procaspase-3)和裂解后有活性的蛋白酶(cleaved Caspase-3)變化情況,明確Caspase細胞凋亡通路在此過程中的作用。
z-DEVD-fmk(Santa cruz),β-actin 兔多克隆抗體(Santa cruz),蛋白質分子量Marker(天根生化科技有限公司,北京),顯影液定影液(尚柏生物PCP010,北京),DYCP-31D型水平式電泳槽(賓達英創科技有限公司,北京),DYY-7C型電泳儀(六一儀器廠,北京),溫控超速離心機(Eppendorf,Germany),轉膜儀(J-MAX)。
本實驗采用組織塊法、酶消化法和蓋玻片固定相結合進行人牙周膜細胞的原代培養。取因正畸治療拔除的的健康前磨牙4顆,用含有1000單位/升青霉素和鏈霉素的0.01mol/L PBS反復沖洗后,無菌條件下,用銳利的刀片刮取根中1/3區域的牙周膜組織,0.3%Ⅰ型膠原酶5毫升消化30min,1500轉/分離心5min,棄上清液,沉淀物用2毫升含20%胎牛血清的DMEM培養基重懸洗滌,1200轉/分離心5 min,棄上清液,沉淀物平鋪于6孔培養板中,用洗凈并消毒的蓋玻片壓緊,防止加入培養液時組織塊浮起,加入1.5毫升含20%胎牛血清的DMEM培養基在37℃、5%CO2、飽和濕度條件下于恒溫孵箱中靜置培養。
1.2.1 實驗分組
本實驗共分五組,每組3個樣本:
第一組:葡萄糖濃度為5.5mmol/L
第二組:葡萄糖濃度為15mmol/L
第三組:葡萄糖濃度為25mmol/L
第四組:葡萄糖濃度為35mmol/L
第五組:葡萄糖濃度為35mmol/L,該組中加入Caspase-3特異性抑制劑z-DEVD-fmk,濃度為2μmol/L。采用流式細胞儀定量檢測每組細胞凋亡情況,Western-blot法檢測Caspase-3蛋白酶原(procaspase-3)和裂解后有活性的蛋白酶(cleaved Caspase-3)變化情況。
1.2.2 實驗數據統計學處理
運用SPSS13.0軟件包,對所得結果進行單因素方差分析,P<0.05為具有顯著性差異。
細胞培養的最初3d,倒置顯微鏡下未見有成纖維樣細胞爬出,隨著培養時間延長,在接種后7-10d左右可見組織塊周圍有少量細胞長出,貼壁生長,以組織塊為中心,呈放射狀排列。15d左右細胞彼此接觸融合成片,大約達到24孔板底面的80%,個別部位有細胞重疊現象,此時應進行傳代。5~8代的細胞形態一致,性質穩定,立體感強,生長狀況良好,適合進行有關的研究實驗。
流式細胞儀定量分析各組凋亡細胞百分比,每組三個樣本:
第一組:葡萄糖濃度為5.5mmol/L,24小時2.6%,3.4%,3.1%
第二組:葡萄糖濃度為15mmol/L,24小時3.7%,4.1%,2.6%
第三組:葡萄糖濃度為25mmol/L,24小時4.4%,5.2%,5.6%
第四組:葡萄糖濃度為35mmol/L,24小時6.3%,7.5%,7.6%
第五組:糖35mmol/L+z-DEVD-fmk,24小時 4.1%,5.7%,5.3%
每組均值及方差及凋亡情況對比情況見圖1,2。
圖1 各組細胞凋亡百分比與5.5mmol/L比較:**P<0.01
從表中可以看出,總體趨勢是隨著葡萄糖濃度的增高,牙周膜細胞凋亡比例升高,但總的細胞凋亡比例均小于10%,說明各組凋亡的細胞只占到很小一部分,大部分細胞沒有發生凋亡。
圖2 各組細胞凋亡百分比與5.5mmol/L比較:**P<0.01;與35mmol/L+DEVD組比較:##P<0.01
從表中可以看出,Caspase-3特異性抑制劑z-DEVD-fmk可以顯著抑制高糖引發的牙周膜細胞凋亡,說明Caspase-3細胞凋亡途徑參與了這一過程。但z-DEVD-fmk不能夠完全抑制高糖引發的牙周膜細胞凋亡,說明除了Caspase-3細胞凋亡途徑外,還有其他途徑參與了這一過程。
Western-blot法測定每組 Caspase-3酶原(pro-caspase-3)和 活 性 Caspase-3(cleaved Caspase-3)蛋白含量,電泳后采用軟件分析各組染色條帶灰度值,實驗重復三次后用SPSS13.0軟件進行統計學分析,結果見圖3。
圖3 pro-caspase-3以及cleaved Caspase-3蛋白含量變化情況與5.5mmol/L比較:*P<0.05,**P<0.01
從表中可以看出,隨著糖濃度的增加,cleaved Caspase-3含量逐漸增加,說明細胞凋亡活動逐漸增強,但pro-caspase-3濃度沒有變化,說明發生凋亡的細胞只占了很小一部分比例,大部分細胞沒有發生凋亡,這點與流式細胞儀結果相一致。大量正常活細胞內的pro-caspase-3含量掩蓋了小部分凋亡細胞內因活化而減少的pro-caspase-3,因此檢測不出變化。而cleaved Caspase-3在正常細胞內沒有或是含量甚微,因此少量的變化即可被檢測出來。加入Caspase-3特異性抑制劑z-DEVD-fmk后cleaved Caspase-3的含量與35mM組比較沒有變化,說明z-DEVD-fmk并不能抑制procaspase-3被活化成cleaved Caspase-3,只能抑制cleaved Caspase-3的活性。
Caspase即半胱氨酸天門冬氨酸蛋白酶,是一組具有相似的氨基酸序列和二級結構的半胱氨酸蛋白酶,不但與真核細胞凋亡密切相關,還參與多種細胞因子的成熟、細胞生長以及分化[3-6]。Caspase的底物種類較多,但主要對象是DNA修復調節因子、細胞骨架、RNA剪接以及細胞周期中的某些成員,而不是廣泛地降解多種蛋白質。Caspase抑制劑可分為人工合成的酶抑制劑、天然的酶抑制劑與拮抗Caspase酶作用的三類。人工合成的抑制劑主要作用部位是Caspase活性中心,分為肽類和非肽類抑制劑,其中肽類抑制劑因為特異性高,易于合成,成本較低,因而被廣泛應用,如z-DEVD-fmk,Ac-DEVD-CHO等。
根據預實驗及參考文獻[7,8],我們選擇葡萄糖濃度為5.5mmol/L,15mmol/L,25mmol/L,35mmol/L的DMEM培養基培養人牙周膜細胞,高糖作用時間為24小時,因人體內正常血糖濃度大約為5.5mmol/L,因此本實驗中葡萄糖濃度為5.5mmol/L的實驗組可看作是生理對照組。z-DEVD-fmk作為實驗室常用的Caspase-3特異性抑制劑已被廣泛應用,因此本實驗選擇z-DEVD-fmk作為抑制劑對照,終濃度為2μmol/L,在加入葡萄糖前2小時加入[9],以明確Caspase通路在此過程中的作用。
從本實驗流式細胞儀結果中可以看出,隨著糖濃度的增高,牙周膜細胞凋亡比例也隨之增加,說明高糖可以引發人牙周膜細胞的凋亡,與以往文獻報道相一致[10,11],但凋亡比例都不高,都在10%以下,與體內實際情況相一致,加入Caspase-3抑制劑z-DEVD-fmk后,細胞凋亡比例明顯低于未加入組,說明z-DEVD-fmk可以抑制高糖引起的牙周膜細胞凋亡,這進一步證實了高糖引起的牙周膜細胞凋亡是由Caspase-3介導的。此外,z-DEVD-fmk組細胞凋亡比例明顯高于生理糖濃度組,這說明z-DEVD-fmk不能完全阻斷高糖引起的牙周膜細胞凋亡,這種情況有兩種可能,第一,z-DEVD-fmk并不能完全抑制Caspase-3功能,只降低其活性,Caspase-3仍然可以發揮部分介導細胞凋亡的作用。因此就會出現加入z-DEVD-fmk后的高糖組細胞凋亡百分比低于不加入z-DEVD-fmk的高糖組,但卻高于生理糖濃度組。第二,z-DEVD-fmk可以完全抑制Caspase-3功能,但這一凋亡過程并不是完全是由Caspase-3介導的,還存在其他調控途徑,因此加入z-DEVD-fmk后只能抑制Caspase-3介導的這部分細胞凋亡,卻并不能抑制其他途徑介導的細胞凋亡,因此也會出現上述的結果。但具體是哪種機制還需證實。對Caspase-3的檢測結果可以看出,隨著糖濃度的增加,雖然未裂解的無活性的酶原pro-caspase-3濃度沒有變化,但有裂解后有活性的cleaved Caspase-3含量逐漸增加,說明細胞凋亡活動逐漸增強,但發生凋亡的細胞只占了總量的很小一部分比例,大部分細胞沒有發生凋亡現象,這點與體內實際情況和流式細胞儀結果相一致。大量正常活細胞內的pro-caspase-3含量掩蓋了小部分凋亡細胞內因活化而減少的pro-caspase-3,而且即使在少部分發生凋亡的細胞內,也不是所有的pro-caspase-3酶原均發生了裂解活化,因此檢測不出變化。而cleaved Caspase-3在正常活細胞內沒有或是含量甚微,因此少量的變化即可被檢測出來。加入Caspase-3特異性抑制劑z-DEVD-fmk后cleaved Caspase-3的含量與35mM組比較沒有變化,說明z-DEVD-fmk并不能抑制pro-caspase-3被活化成cleaved Caspase-3,只能抑制cleaved Caspase-3的活性。
[1]Dotto GP,silke J.More than cell death:caspases and caspase inhibitors on the move[J].Dev Cell.2004 Jul,7(1):2-3
[2]劉加強,劉洪臣.細胞凋亡及其在牙周領域中的研究進展[J].中華老年口腔醫學雜志,2010,8(2):110-113
[3]Paul Tawa,Andre Giroux,Erich Grimm,et al.Correlating the fractional inhibition of caspase-3 in NT2 cells with apoptotic markers using an active-caspase-3 enzyme-linked immunosorbent assay[J].Analytical Biochemistry, 2006,350(1):32-40
[4]Mami Yamamoto,Yayoi Kamata,Toshii Iida,etal.Quantification of activated and total caspase-14 with newly developed ELISA systems in normal and atopic skin[J].Journal of Dermatological Science,2011,61(2):110-117
[5]Noriyuki Miyoshi,Kisa Naniwa,Takeshi Kumagai,et al.α-Tocopherol-mediated caspase-3 up-regulation enhances susceptibility to apoptotic stimuli[J].Biochemical and Biophysical Research Communications, 2005, 334(2):466-473
[6]Maryla Krajewska,Robert E.Rosenthal,Jowita Mikolajczyk,et al.Early processing of Bid and caspase-6,-8,-10,-14 in the canine brain during cardiac arrest and resuscitation[J].Experimental Neurology, 2004, 189(2):261-279
[7]Kumiko Kaifu1,Hideyasu Kiyomoto1,Hirofumi Hitomi1,et al.Insulin attenuates apoptosis induced by high glucose via the PI3-kinase/Akt pathway in rat peritoneal mesothelial cells[J].Nephrol Dial Transplant, 2009, 24:809-815
[8]Takata H,Ikeda Y,Suehiro T,et al.High glucose induces transactivation of the alpha2-HS glycoprotein gene through the ERK1/2 signaling pathway[J].J Atheroscler Thromb,2009,16(4): 448-456
[9]S,eref Barut,Yusuf Atilla U¨nlü,Alper Karaogˇlan,et al.The neuroprotective effects of z-DEVD.fmk,a caspase-3 inhibitor,on traumatic spinal cord injury in rats[J].Surgical Neurology,2005,64(3): 213-220
[10]Ali.M.Sharifi,Habib Eslami,Bagher Larijani,et al.Involvement of caspase-8, -9, and -3 in high glucose-induced apoptosis in PC12 cells[J].Neuroscience Letters,2009,459(2,7):47-51
[11]David A.Allen,Muhammad M.Yaqoob,Steven M.Harwood.Mechanisms of high glucose-induced apoptosis and its relationship to diabetic complications[J].The Journal of Nutritional Biochemistry,2005,16(12):705-713