夏氏瘧原蟲感染早期易感和抵抗小鼠樹突狀細胞亞群和表型的變化特點*

武靜靜,劉 軍,鄭 偉,潘艷艷,李 瑩,延 娟,武劍華,曹雅明,鄭 麗

2.徐州醫學院病原生物學與免疫學教研室,徐州221002;

3.沈陽軍區總醫院檢驗科,沈陽 110016

瘧疾與其他大多數感染性疾病一樣,需要通過免疫效應機制對其控制和消除。目前,鼠瘧的研究已經證實,CD4+T細胞在抗紅內期瘧疾的保護性免疫應答中起關鍵作用,夏氏瘧原蟲感染(P lasmodium chabaudi chabaudi,AS)期間,產生 IFN-γ的Th1細胞免疫應答的適當建立和隨后的Th2型細胞因子輔助B細胞產生抗體對控制和清除蟲血癥至關重要,明顯影響著感染進程和最終結局[1]。不同小鼠在感染同種瘧原蟲時,由于感染早期Th1應答建立和水平的維持存在差異,最終會出現死亡和自愈兩種截然不同的結局。因此,Th1細胞免疫應答誘導和調控機制的闡明將為瘧疾疫苗的研制提供新的靶點。

樹突狀細胞(Dendritic cells,DCs)在擴大固有免疫應答,啟動適應性免疫,形成Th應答中發揮重要作用[2]。小鼠脾臟DCs由不同種類的細胞亞群構成,即髓樣CD11c+CD11b+DCs和漿樣CD11c+CD45R/B220+DCs[3-4],兩種DCs亞群形態與功能不同,在病原體刺激下表現不同的增殖水平[3]。我們前期的研究顯示,P.c.AS感染早期,易感DBA/2小鼠和抵抗BALB/c小鼠均產生以IFN-γ分泌增加為主的Th1型細胞免疫應答[5],并且相關研究表明P.c.AS感染的DBA/2小鼠死亡與免疫病變相關[6]。本研究進一步利用成功建立的AS感染的DBA/2和BALB/c小鼠模型,對比觀察了DCs亞群和表型的變化特點,以期探討瘧疾感染早期DCs在Th1細胞免疫應答活化過程中的作用地位。

1 材料與方法

1.1 瘧原蟲及實驗動物感染 6～8w齡、雌性DBA/2和BALB/c小鼠各12只(中國醫學科學院實驗動物研究所提供,許可證編號:SCXK京200420001)經腹腔感染1×106P.c.AS(日本愛媛大學分子寄生蟲學教研室惠贈)寄生的紅細胞(Parasitized Red Blood Cell,pRBC),感染不同時間的小鼠經尾靜脈采血,制備薄血膜,Giemsa染色,鏡檢計數紅細胞感染率。

1.2 主要儀器及試劑 流式細胞儀(FACS Calibur,BD);FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體(2.4G2克隆,BD Pharmingen)、抗CD11c-FITC單抗(H L3克隆,BD Pharmingen)、抗CD11b-PE單抗(M1/70克隆,BD Pharmingen),抗 CD45R/B220-PerCP單抗(RA 3-6B2克隆,BD Pharmingen)、抗 MHCII-PE單抗(M5/115.15.2克隆,BD Pharmingen),抗CD80-PE單抗(16.10A 1克隆,BD Pharmingen)。

1.3 流式細胞儀檢測脾臟DCs亞群的數量 無菌取出感染前和感染后第3、5、8d小鼠脾臟,常規方法制備脾細胞懸液,用0.17mo l/L NH4Cl裂解紅細胞。用含10%胎牛血清(FCS)的 RPMI1640調整脾細胞終濃度為 1×107/m L。每份樣品用抗CD11c-FITC單抗、抗CD11b-PE單抗和抗CD45R/B220-PerCP單抗進行三色分析,另設陰性對照管,在預先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細胞儀專用染色管中加入脾細胞懸液0.1m L,再加入抗CD11c-FITC單抗、抗CD11b-PE單抗和抗CD45R/B220-PerCP單抗進行表面染色,離心去上清后,用0.5m L PBS重懸浮細胞,流式細胞儀進行檢測。

1.4 流式細胞儀檢測脾臟DCs表面MHCⅡ類分子和共刺激分子CD80的表達水平 每份樣品用抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-MHCⅡ-PE單克隆抗體或抗-CD80-PE單克隆抗體進行雙色分析,另設陰性對照管。在預先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細胞儀專用染色管中加入脾細胞懸液0.1m L,再加入抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-MHCII-PE單克隆抗體或抗-CD80-PE單克隆抗體。離心去上清后,用0.5m L PBS重懸浮細胞,流式細胞儀進行檢測。

1.5 統計學處理 應用SPSS11.5統計學分析軟件,單因素方差分析比較各組均值的顯著性差異,P＜0.05為有統計學意義(結果為 3次結果的平均值)。

2 結 果

2.1 2種小鼠感染后不同時間的蟲體血癥水平及生存率 感染后第4d,兩種小鼠外周血中均出現瘧原蟲感染的紅細胞,且感染后前9d,原蟲血癥水平呈相同的上升趨勢。BA LB/c小鼠原蟲血癥水平至感染后9d達峰值后迅速下降,并于感染后21d左右自愈,其生存率100%。相比而言,DBA/2小鼠的紅細胞感染率至感染后9d達峰值后也迅速下降,70%～80%的小鼠死亡,幸存小鼠不能清除感染,有低水平的蟲體血癥(見圖1)。

圖1 DBA/2與BALB/c小鼠感染后不同時間蟲體血癥水平及生存率Fig.1 The parasitem ia and survival rate of DBA/2 and BALB/cmice at dif ferent time points after infection

2.2 2 種小鼠感染后不同時間脾臟DCs亞群的數量 BALB/c和DBA/2小鼠脾臟CD11c+CD11b+DCs的數量感染后3-5d均明顯升高(P＜0.05),并于感染后第8d達到最高水平(P＜0.01),在感染前和感染后第 3d,5d和 8d,BALB/c小鼠脾臟CD11c+CD11b+DCs的數量均低于 DBA/2小鼠,但僅在感染后第8d有統計學意義(P＜0.01)(圖2A)。

與此相反,兩種小鼠脾臟CD11c+CD45R/B220+DCs的數量在感染后3～8d,盡管也呈逐漸增高趨勢(P＜0.05或 P＜0.01),但 BA LB/c小鼠CD11c+CD45R/B220+DCs的數量在各檢測時間點均高于DBA/2小鼠,但僅在感染后第8d有顯著意義(P＜0.01)(圖2B)。

圖2 DBA/2和BALB/c小鼠感染后不同時間脾臟CD11c+CD11b+DCs(A)和CD11c+CD45R/B220+DCs(B)的數量P＜0.05和**P＜0.01表示與正常對照組相比差異顯著,##P＜0.01表示 DBA/2與 BALB/c小鼠之間的比較Fig.2 Percentage of splenic CD11c+CD11b+DCs(A)and CD11c+CD45R/B220+DCs(B)from DBA/2 and BALB/cmiceatdifferent time points after infection;*P＜0.05 and**P＜0.01 indicate the significant difference com pared with controlmice(non-infected mice,0d),##P＜0.01 indicates the comparison between DBA/2 and BALB/c mice

2.3 2種小鼠感染后不同時間脾臟DCs表面MHCⅡ類分子和CD80分子的表達水平BALB/c和DBA/2小鼠表達MHCⅡ類分子CD11c+DCs的數量在感染后3-5d明顯升高(P＜0.05),并于感染后第8d達到最高水平(P＜0.01),在感染前和感染后第3d,5d,8d,BALB/c小鼠表達MHCⅡ類分子的CD11c+DCs的數量均低于DBA/2小鼠,其中感染后第8d有顯著差異(P＜0.01)(圖3A)。與此同時,DBA/2小鼠表達CD80分子的CD11c+DCs的數量在感染后3-5d顯著升高(P＜0.05),并于感染后第 8d達到峰值水平(P＜0.01)。而BA LB/c小鼠表達CD80分子的CD11c+DCs的數量僅從感染后第5d明顯升高(P＜0.05),并于感染后第8d達到峰值水平(P＜0.01),在感染前和感染后各檢測時間點,BALB/c小鼠表達MHCⅡ類分子的CD11c+DCs的數量均低于DBA/2小鼠,但僅在感染后第8d有統計學差異(P＜0.01)(圖3B)。

圖3 DBA/2和BALB/c小鼠感染后不同時間脾臟DCs表面MHCⅡ類分子(A)和CD80分子(B)的表達水平。*P＜0.05和**P＜0.01表示與正常對照組相比差異顯著,##P＜0.01表示 BA LB/c與DBA/2小鼠之間的比較Fig.3 Percentage of splenic CD11c+DCs expressing MHCⅡ(A)and CD80(B)from DBA/2 and BALB/cmice at different time points after infection.*P＜0.05 and**P＜0.01 indicate the significant difference com pared with controlmice(non-infectedmice,0d),##P＜0.01 indicates the comparison between DBA/2 and BALB/c mice

3 討 論

在P.c.AS感染鼠瘧模型中,針對紅內期瘧原蟲的免疫應答已經得到解釋,在此模型中,最初的適應性免疫應答要求CD4+Th1細胞活化效應細胞(如巨噬細胞),隨后進一步轉化為Th2細胞因子和抗體的產生,以徹底清除寄生蟲。根據宿主的基因背景,P.c.AS感染鼠導致非致死型和致死型感染,抵抗鼠要求完整的T細胞,巨噬細胞及B細胞功能以最終清除瘧原蟲。根據蟲血癥水平,易感鼠與抵抗鼠感染過程相似。易感鼠沒有產生特異性抗體,B細胞和抗體對解除紅內期感染很重要,缺乏B細胞的鼠不會清除P.yoelii和P.c.chabaudi感染[7]。P.c.AS感染早期,易感DBA/2小鼠和抵抗BALB/c小鼠均產生以IFN-γ分泌增加為主的Th1型細胞免疫應答[5],過強的炎癥反應可能引起宿主的病理損傷。有研究表明,P.c.AS感染的DBA/2小鼠死亡與免疫病變相關[6],而目前關于P.c.AS感染早期易感與抵抗小鼠Th1細胞免疫應答差異調控相關機制尚未充分闡明。

有研究顯示,DCs在啟動免疫應答過程中發揮關鍵作用,是固有免疫應答向適應性免疫應答過渡的橋梁,具有活化初始T細胞以啟動初期免疫應答的獨特能力[8-9]。在病原微生物的刺激下,不同DCs亞群可呈現不同的增殖水平[3]。瘧原蟲感染期間,髓樣DCs主要介導Th1應答[10-12],漿樣DCs對漿細胞的產生和抗體應答起關鍵作用,髓樣DCs/漿樣DCs比值的增加與Th1路徑的活化相關,而其比值降低則有利于Th2路徑的活化[10]。本實驗結果顯示,P.c.AS感染后3～8d,兩種小鼠髓樣DCs的數量均出現有意義的升高,但在感染后第 8d,BALB/c小鼠髓樣DCs的數量明顯低于DBA/2小鼠。同樣,漿樣DCs的產生模式在兩種小鼠體內也存在顯著差異,感染后3～8d,兩種小鼠漿樣DCs的數量盡管也呈逐漸增高趨勢,但BA LB/c小鼠漿樣DCs的數量在第8d顯著高于DBA/2小鼠。上述結果充分提示,P.c.chabaudi(AS)感染早期,DCs亞群的不同分化模式可能參與易感和抵抗宿主Th1細胞免疫應答的誘導和調控。

成熟DCs與初始T細胞的活化以及隨后的適應性免疫應答的誘導密切相關[9,13]。MHCⅡ類分子和共刺激分子的上調是 DCs成熟的突出特征[2,14-16]。本實驗結果顯示,在感染后3～8d,兩種小鼠表達MHCⅡ類分子和CD 80分子的DCs的數量均呈現逐漸增高的趨勢,但BALB/c小鼠兩種分子的升高幅度均明顯低于DBA/2小鼠。以上結果提示,DCs成熟的幅度可能決定著Th1細胞免疫應答的強度。

綜上,在 P.c.chabaudi(AS)感染早期,BALB/c和DBA/2小鼠DCs亞群的分化模式、成熟表型特征性分子的表達水平存在顯著差異。而這種差異性可能是導致兩種小鼠呈現不同程度 Th1細胞免疫應答的前提條件。

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