鄒 翔,曲中原,白 晶,季宇彬,
(1.哈爾濱商業大學 生命科學與環境科學研究中心,哈爾濱 150076;2.國家教育部 抗腫瘤天然藥物工程研究中心,哈爾濱 150076;3.哈爾濱商業大學中藥學博士后流動站,哈爾濱 150076)
西蘭花(Broccoli)卓越的防癌抗癌作用歸因于其富含異硫氰酸鹽類物質,而萊菔硫烷(sulforaphane,SFN)是其中最主要的活性成分之一[1-5].以往研究表明,SFN可通過完全抑制I相酶,并且誘導II相解毒酶的表達而預防化學物誘發的肝癌、肺癌、前列腺癌、乳腺癌、直腸癌等多種癌癥的發生[6-7].近年來研究發現,SFN 可通過誘導 HepG-2細胞發生G2/M期阻滯,并通過啟動線粒體途徑誘導人肝癌HepG-2細胞凋亡,發揮抗肝癌作用[8-9].本文主要在考察 SFN 誘導 HepG-2細胞凋亡作用的基礎上,研究SFN對人肝癌HepG-2細胞中JNK和p-JNK蛋白表達的影響,探討JNK信號轉導途徑在SFN誘導HepG-2細胞凋亡中的作用.
人肝癌HepG-2細胞株,由哈爾濱商業大學藥物研究所博士后科研工作站傳代保種.
萊菔硫烷(分子式C6H11NOS2,相對分子質量為 177.3,純度98.3%),美國 Alexis公司,用前以二甲基亞砜(DMSO)溶解,-20℃保存,臨用時加培養液稀釋至所需濃度,使DMSO終質量分數不超過0.1%;阿霉素(批號080907),浙江海正藥業股份有限公司;RPMI-1640培養基干粉,美國GIBCO公司;胰蛋白酶、二甲基亞砜(DMSO),美國Sigma公司;Hoechst 33258:Sigma公司;鼠抗JNK/SAPK抗體、鼠抗p-JNK/SAPK抗體、堿磷酶標記馬抗鼠IgG,碧云天公司;其他試劑均為國產分析純.
CO2培養箱,日本Sanyo公司;低溫高速離心機,美國Beckman-Coulter公司;熒光顯微鏡:日本Olympus公司;水平電泳儀、電轉儀,美國Bio-Rad公司;超凈工作臺,蘇凈集團.
人肝癌細胞系HepG-2常規細胞復蘇后,培養于含有10%胎牛血清RPMI-1640培養液中,置于CO2培養箱(37℃,體積分數為5%的CO2,相對濕度95%)培養.2~3 d傳代1次,取對數生長期細胞進行實驗.
先將6孔培養板內放上蓋玻片,取對數生長期細胞接種于6孔培養板中,細胞濃度為3×105個/mL,置培養箱中37℃、5%CO2培養24 h后加入不同濃度的SFN(使其終濃度分別10、20、40μmol/L),陽性對照組加 ADR(終濃度 0.5μmol/L);陰性對照組加相同體積的培養液.48 h后細胞用胰酶消化,加PBS洗1次,加入固定液(甲醇和冰醋酸的體積比為3∶1),4℃固定10min后,加入質量濃度為5mg/L的熒光探針Hoechst 33258,置于37℃,5%CO2培養箱中孵育15min,將孔中的蓋玻片取出,蓋在已滴好甘油的載玻片上,置于熒光倒置顯微鏡上觀察細胞形態并照相.
將對數生長期細胞用胰酶消化后,傳代培養于細胞培養瓶,24 h貼壁后給藥.各給藥組設計為:給藥組(SFN 終濃度 10、20、40μmol/L)、對照組(加等體積 RPMI 1640)、阿霉素組(終濃度0.5μmol/L).48 h后,收集細胞,用預冷的 PBS洗2次、離心,加入裂解液冰上裂解1.5 h,4℃、12000 r/min離心10min提取總蛋白.570 nm處測定吸光度,計算蛋白含量,并用細胞裂解液將各樣品調至相同濃度.配制5%的濃縮膠及12%的分離膠進行 SDS-PAGE電泳.電泳條件:濃縮膠80 V,待樣品前沿進入分離膠后調電壓至100V.轉膜條件:200 mA恒流轉膜60min.將凝膠中的蛋白轉移到NC膜上,5% 脫脂奶粉封閉2 h,加一抗過夜.次日,取出NC膜用TBST緩沖液充分振搖洗膜3次,每次10min.加堿磷酶標記馬抗小鼠IgG室溫孵育2 h后,TBST振搖洗膜3次,每次10min.加顯色液顯色,Tannon凝膠成像系統照相.掃描圖像在天能GIS凝膠成像分析系統進行量化分析.
實驗結果如圖1所示.不同濃度SFN作用于HepG-2細胞48 h后,熒光顯微鏡下可見隨著藥物濃度的增大,凋亡細胞數量逐漸增多,細胞出現核染色質固縮濃集,同時伴有凋亡小體的形成.而空白對照組細胞胞核呈均勻藍色,無深染的亮點,表明染色質均呈均勻分布.

圖1 熒光顯微鏡觀察SFN對HepG-2細胞凋亡的影響
實驗結果如圖2-5所示.結果表明,隨著SFN濃度的增加,HepG-2細胞內JNK蛋白表達并無明顯變化,而p-JNK蛋白表達逐漸增加,各組與對照組比較,差異均具有統計學意義(P<0.05或P <0.01).




近年來,國內外對于SFN防癌抗癌的作用及機制進行了較為深入研究,已成為熱點研究問題.本論文前期研究發現,SFN可通過誘導人肝癌HepG-2細胞發生G2/M期阻滯和凋亡發揮抗肝癌作用,其機制可能是:1)SFN可通過下調HepG-2細胞內Cdk1和CyclinB1蛋白的表達、上調p-Cdk1的表達抑制Cdk1-CyclinB1復合物的形成和活化而將HepG-2細胞阻滯于G2/M期;2)SFN可下調Bcl-2基因表達、上調Bax基因表達,進而誘導線粒體通透性轉變孔道(PT孔道)的開放,促進線粒體內Cyt-c向胞漿的釋放;釋放的Cyt-c進一步與 Apaf-1、procaspase-9結合形成凋亡體,活化的 caspase-9進一步激活下游的caspase-3,最終完成 SFN通過線粒體途徑誘導HepG-2 細胞的凋亡過程[7-9].而本課題采用熒光顯微鏡也證實,SFN可誘導HepG-2細胞發生凋亡,并呈現一定的劑量依賴性.
對于MAPK信號轉導通路而言,在大多數情況下,JNK信號傳導途徑在細胞應激反應中的作用具有復雜性、多樣性的特點,被激活后可促進細胞凋亡的發生,具體機制與誘導FasL和TNFR1的表達、調控凋亡相關基因的差異表達及激活Caspase家族有關.有研究表明,魚藤酮誘導的SH-SY5Y細胞凋亡中,JNK的磷酸化狀態被大大加強,并且是Caspase依賴性的,說明魚藤酮誘導SH-SY5Y細胞凋亡,是通過激活JNK通路,進而通過Capase家族起作用的.在Fas介導的細胞凋亡中,JNK起到了重要作用.在 Fas激活 Caspase后,活化的Caspase裂解JNK的上游調控分子MEKK1,進而激活 JNK 通路誘導凋亡[10-11].而本研究發現,SFN可上調p-JNK蛋白的表達進而激活JNK信號通路,這可能是其誘導HepG-2細胞凋亡的主要機制之一,但結合已有研究我們發現,除了線粒體通路外,死亡受體通路可能也參與了SFN誘導HepG-2細胞凋亡的過程,但該方面的研究還有待進一步證實.
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