王 艷,林禮務,陳志奎,薛恩生,楊 菁,俞麗云
眼鏡蛇毒是一類天然毒性物質,含有多種蛋白質、多肽、酶類等,具有廣泛的生物學活性。其中眼鏡蛇毒細胞毒素(cobra venom cytotoxin,CTX)是眼鏡蛇毒的主要成分之一,是一類既具有心臟毒性,又具有細胞毒性尤其是對腫瘤細胞有毒性的組分,在抗腫瘤方面具有一定的應用前景。誘導腫瘤細胞凋亡是許多化療藥物發揮抗腫瘤作用的主要機制。我們采用CTX在體外作用于人肝癌細胞BEL-7404,從分子水平觀察CTX對人肝癌細胞的凋亡作用以及對線粒體及細胞質細胞色素C的影響,探討CTX的抗癌機制,從而為CTX治療肝癌提供更充足的理論依據。
1.1.1 細胞株 人肝癌細胞系BEL-7404(由福建省肝膽外科研究所惠贈)。
1.1.2 主要試劑 CTX由本研究所從中華眼鏡蛇毒粗毒(廣州新源蛇毒公司)中分離純化而得[1];BCA蛋白測定試劑盒(碧云天生物技術公司);胎牛血清(杭州四季青生物工程公司);RPMI 1640培養基、胰蛋白酶(Gibco公司);小鼠抗人Cytochrome C,β-actin單克隆抗體,兔抗人 caspase-3、-9多克隆抗體,辣根過氧化物酶標記的羊抗小鼠二抗、兔抗小鼠二抗(Santa Cruz公司產品);caspase-3、-9活性檢測試劑盒(碧云天生物技術研究所產品)。
1.2.1 細胞增殖試驗與光鏡觀察 將BEL-7404細胞制備成單細胞懸液,以1×109·L-1濃度接種于96孔板(每孔100 μl),每孔加入用完全培養基配制成終濃度為0.5、1、2 和3 mg·L-1的眼鏡蛇毒細胞毒素200 μl,對照組加入等量完全培養液,每個藥物濃度設3個平行孔,藥物作用12、24和48 h后,MTT法[2]檢測細胞增殖活性,并計算細胞增殖抑制率(%)和半數抑制濃度(IC50)。并在顯微鏡下觀察細胞形態改變。
1.2.2 腫瘤細胞凋亡檢測 用末端脫氧核糖核酸轉移酶介導的dUTP缺口末端標記法(TUNEL)標記凋亡細胞。收集腫瘤細胞,分3個組,分別為生理鹽水組、CTX 1 mg·L-1組和 CTX 3 mg·L-1組,作用時間為24 h。結果判定:凋亡陽性細胞的細胞核出現棕黃色顆粒。400倍高倍顯微鏡下,隨機觀察5個視野,每個視野計數100個腫瘤細胞,計算出凋亡細胞的百分率。即凋亡指數(AI)/%=(TUNEL染色陽性細胞數/腫瘤細胞數)×100%。
1.2.3 透射電鏡觀察 收集分別經對照組及CTX 1 mg·L-1和 CTX 3 mg·L-1處理24 h 的 BEL-7404細胞各1×106個,3%戊二醛固定,2 500 r·min-1離心,去上清,細胞團經1%鋨酸后固定、脫水、浸透、包埋、超薄切片、鈾-鉛復染后,透射電鏡下觀察。
1.2.4 caspase-3、-9 活性檢測 收集分別經 0、1、2和3 mg·L-1的CTX處理24 h的BEL-7404細胞各1×106個,用試劑盒提供的裂解液懸浮,冰上孵育10 min,4 ℃、14 000 ×g離心1 min,收集上清,Bradford法進行蛋白定量,調整蛋白濃度為1×103mg·L-1,取檢測緩沖液 80 μl加 caspase-3 或 caspase-9 10 μl,再加入 Ac-DEVD-ρNA(2 mol·L-1)10 μl后混勻,37℃遮光孵育1~2 h,發現顏色變化比較明顯時即可測定A405。樣品的A405扣除空白對照的A405,即為樣品中caspase-3催化產生的ρNA的吸光度。通過標準曲線的對比就可以計算出樣品中催化產生了多少量的ρNA。計算:活化倍數=試驗組ρNA值/對照組ρNA值。
1.2.5 Western blot檢測細胞色素 C 和 caspase-3、-9蛋白的表達 線粒體/細胞質蛋白提取:分別收集1和3 mg·L-1的CTX處理24 h的BEL-7404細胞,600×g離心5 min,棄上清,細胞沉淀用細胞質提取緩沖液重懸,Dounce勻漿器破碎細胞,700×g離心10 min,收集上清,10 000×g離心30 min,上清液為細胞質成分。沉淀為線粒體成分,用線粒體提取緩沖液重懸,渦旋混合器混合10 s。Bradford法對提取的蛋白進行定量,以40 μg蛋白上樣量進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉膜,封閉,漂洗后一抗,二抗孵育,洗膜后加入顯色劑顯色。每個樣本重復3次。
2.1 眼鏡蛇毒細胞毒素抗腫瘤細胞增殖作用 體外培養的人肝癌BEL-7404與眼鏡蛇毒細胞毒素孵育后,部分細胞出現皺縮、變圓、脫落(Fig 1A),隨著時間的延長和劑量的增大,壞死的細胞越來越多(Fig 1B),具有明顯的劑量依賴效應和時間依賴效應。而對照組人肝癌BEL-7404卻貼壁生長良好,僅個別細胞貼壁能力降低,漂浮起來(Fig 1C)。眼鏡蛇毒細胞毒素對人肝癌BEL-7404細胞12、24和48 h 的 IC50分別為 2.56、1.94 和 1.35 mg·L-1,差異有統計學意義(P<0.05)。見Tab 1。
Tab 1 Cytotoxic effect of CTX on BEL-7404 in vitro ± s,%)

Tab 1 Cytotoxic effect of CTX on BEL-7404 in vitro ± s,%)
*P<0.05 vs control;#P<0.05 vs 12 h group;△P<0.05 vs 24 h group
Concentration/mg·L-112 h 24 h 48 h Control 0.12 ±0.03 0.57 ±0.11 1.21 ±0.17 0.5 15.71 ±2.67* 24.36 ±2.54# 29.42 ±1.87△1 27.85 ±1.87* 39.82 ±1.15# 43.36 ±2.35△2 39.62 ±2.15* 52.37 ±1.65# 61.54 ±1.46△3 57.39 ±2.33* 69.43 ±2.27# 80.32 ±2.33△
2.2 腫瘤細胞凋亡檢測結果 生理鹽水組TUNEL標記的陽性細胞數較少,AI值為5.3%,給藥組TUNEL標記的陽性細胞數增多,CTX 1 mg·L-1組和CTX 3 mg·L-1組 AI值分別為 38.5%和77.8%。
2.3 透射電鏡觀察細胞凋亡形態學改變 透射電鏡下觀察對照組細胞細胞核形態規則,細胞膜完整,核仁清晰,染色質均勻分布于細胞核內,胞質內線粒體等細胞器清晰可見(Fig 2A)。給藥組大部分腫瘤細胞出現典型的凋亡征象:如線粒體明顯腫脹,部分溶解(Fig 2B),細胞膜皺縮、染色質固縮、核仁裂解為大小不均一的碎塊(Fig 2C)。

Fig 1 BEL-7404 proliferation inhibited by CTX in vitroA:BEL-7404 treated for 2 h;B:BEL-7404 treated for 48 h;C:control

Fig 2 Apoptotic morphological changes of BEL-7404 treated by CTX
2.4 caspases酶活性的影響 給藥組caspase-3,-9酶活性均有提高,且隨著濃度的增加,活化的倍數隨著提高,見Tab 2。

Tab 2 Enzyme activity of caspase-9,-3 increased by CTX in BEL-7404
2.5 Western blot檢測結果
2.5.1 細胞色素C(Cytochrome C)分布變化 對照組線粒體內Cytochrome C表達較多,CTX組表達量較少,且3 mg·L-1劑量組與空白對照組相比更為明顯。而細胞質內Cytochrome C表達則相反,對照組表達較少,CTX組表達量增加,且3 mg·L-1劑量組與空白對照組相比更為明顯(Fig 3)。

Fig 3 Expression of cytochrome C proteins in each group
2.5.2 caspase-3、-9蛋白的表達 對照組 caspase-3、-9蛋白僅少量表達,CTX組表達量增多,且3 mg·L-1劑量組與空白對照組相比更為明顯(Fig 4)。
細胞凋亡是一種重要生物學過程,是由于內外環境變化或死亡信號觸發,在相關基因調控下引起的細胞主動死亡過程。在細胞凋亡機制研究中,目前認為誘導細胞凋亡主要有兩條途徑:一條是死亡受體途徑;另一條是線粒體凋亡途徑[3]。線粒體在凋亡早期先于核或染色體的改變即出現結構和功能的變化,已研究證實線粒體膜通透性轉運孔(MPTP)開放是細胞凋亡的重要環節[4-5]。在致凋亡因子的刺激下,細胞線粒體跨膜電位降低或喪失[6-7],線粒體釋放細胞色素 C和凋亡誘導因子(AIF)至細胞質中[8-9],它們可與凋亡相關蛋白酶活化因子-1(Apaf-1)結合,在有脫氧三磷酸腺苷(dATP)存在的情況下,激活 Apaf-1[10],活化的Apaf-1可以結合caspase-9酶原而將其切割和活化。caspase-9處于caspase“瀑布式”激活的頂端,導致細胞凋亡過程的啟動[11]。活化的caspase-9裂解后可激活caspase-3和下游眾多的caspase蛋白酶級聯反應。其中caspase-3被認為是級聯反應中最關鍵的效應蛋白酶,是細胞凋亡蛋白酶級聯反應的必經之路[12-13]。活化的caspase-3引起caspase級聯反應,完成整個細胞凋亡和清除過程,包括DNA片段化、染色體固縮、細胞膜水泡樣變、細胞皺縮并向內形成凋亡小體,最終引起染色體DNA及細胞的解體[14]。

Fig 4 Expression of caspase proteins in each group
本研究中證實CTX具有較強的毒性作用,可誘導人肝癌細胞凋亡,且具有明顯的劑量依賴效應和時間依賴效應。給藥組線粒體明顯腫脹,細胞色素C從線粒體釋放到胞質增多,提示腫瘤細胞凋亡可能與線粒體參與的途徑有關。給藥組caspase-3、-9表達增加,酶活性明顯增高均提示:caspase-3、-9參與了線粒體凋亡途徑。我們認為CTX首先通過線粒體細胞色素C釋放,進一步誘導效應性caspase-9、-3蛋白酶激活,最終誘導人肝癌細胞凋亡,這可能是其在體內產生抗腫瘤作用的機制之一。
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