悉生蠶的研究與應用

朵建英，王蔭槐，魏 強

(中國醫學科學院，北京協和醫學院，醫學實驗動物研究所，衛生部人類疾病比較醫學重點實驗室，國家中醫藥管理局人類疾病動物模型三級實驗室，北京 100021)

悉生蠶的研究與應用

朵建英，王蔭槐，魏 強

(中國醫學科學院，北京協和醫學院，醫學實驗動物研究所，衛生部人類疾病比較醫學重點實驗室，國家中醫藥管理局人類疾病動物模型三級實驗室，北京 100021)

悉生蠶是指蠶體內外棲息的其他生物體是已知的蠶，不僅培育方法較哺乳動物簡單，且徹底克服蠶的季節性和地域性飼育限制，為蠶在實驗動物科學中的廣泛應用打下基礎。隨著現代生物技術的發展，悉生蠶作為生物反應發生器或轉基因工程動物的應用已逐步進入實用化研究階段。

悉生蠶;實驗動物;生物反應器;應用

蠶是重要而獨特的經濟昆蟲，至今已被人類馴化利用長達5000余年。家蠶人工飼料飼育［1，2］方法的研究成功，使家蠶的應用擺脫小作坊的生產形式實現工業化生產。悉生蠶的出現更是打開了家蠶作為實驗動物進行科學研究、生物材料研制的廣闊前景，逐步在生命科學的各個領域發揮不可替代的重要作用。

1 悉生蠶飼育方法的研究

上世紀60年代初，日本科學家率先研發出蠶人工飼料后于1962年飼育成功無菌蠶(germ-free silkworm，簡稱GF蠶)，后由松原藤好總結創建了獨特的松原KIT方式全齡化人工飼料工廠化無菌飼育技術體系［1，3］。隨后我國引進該技術，通過消化吸收與創新，在人工飼料無菌養蠶的研究方面取得長足進展［1－4］。但以上養蠶方法中的“無菌”主要是指用于孵化蠶蟻的蠶卵及人工飼料的無菌化處理，其飼育過程雖有在無菌室或無菌箱中進行的，但是為了適應工業化大批量生產的需求，環境空氣潔凈度并沒有達到隔離環境要求的級別，嚴格來說只能算是已知菌蠶(gnotobiotic silkworm，簡稱 GN蠶)或無特定病原體蠶(specific pathogen free silkworm，簡稱 SPF蠶)。

王蔭槐等［5］在1999年利用隔離系統首次飼育成功GF蠶，結果顯示GF蠶的成活率和結繭率均較普通蠶高，蛹成活率在90%以上，為GF蠶作為實驗動物的研究及應用提供了參考。

2 GN蠶作為實驗動物的應用

GN蠶的生物背景清楚、飼養與實驗操作容易、成本低廉、單批實驗成活率高，可一次性提供遺傳背景一致的500個左右的實驗個體，十分適合作為實驗動物進行應用和研究。

2.1 進行蠶病研究

早在100年前巴斯德就通過解剖蠶體發現了蠶病與其體內微生物有關系，并在后來的GF蠶上得到驗證。Cappellozza S等利用人工飼料飼育無菌蠶幼蟲鑒定出Enterococcus mundtii(蒙氏腸球菌)是蠶軟化病的病原體，繼之對該細菌的致病機制、感染途徑、預防措施等方面進行了研究［6］，研究表明Enterococcus mundtii屬于蠶消化道細菌，從消化道感染身體其他組織;通過對卵表面進行消毒可以消除母體垂直傳播;飼料中的桑葉粉可能是其傳染源，這些研究結果在人類該病原菌的流行病學方面可能起到一定的提示作用。利用GN蠶人們對Bombyx mori nucleopolyhedrovirus(BmNPV，蠶多角體病毒)對蠶的感染機制和特征有了更進一步的了解，發現一種神經誘導的分化相關蛋白BmGDAP1，在病毒感染早期的識別和免疫應答階段發揮很大作用［7］。

2.2 建立感染模型對致病菌的致病性進行研究

日本研究人員用GN蠶幼蟲建立致病菌感染模型研究致病菌對人類的感染機制，觀察到金黃色葡萄球菌在幼蟲中腸表面的大量增殖，及其在幼蟲體液和組織中的存在，并發現大腸桿菌的植入能降低金黃色葡萄球菌、綠膿桿菌和霍亂弧菌對幼蟲的致死率［8］。感染不同基因突變型致病菌后的家蠶模型和小鼠模型同樣對致病菌的致病基因或毒力決定因子具有篩選作用，致病基因或因子缺失突變的菌株對家蠶的毒性降低［9，10］，通過將突變菌株細胞培養的上清液注射到幼蟲血淋巴中，可以對致病菌內外毒素的致死劑量進行定量研究［11］。近年建立的GN蠶模型更是將金黃色葡萄球菌致病因子的研究準確到了細胞壁表面蛋白和各種調節蛋白水平［12］。

2.3 利用感染模型對抗菌藥物進行評價

家蠶具有體型小、易操作、實驗周期短的特點，用家蠶替代哺乳動物用于新藥研發早期階段藥物毒性、有效性及體內吸收分布的研究是可行并有價值的。

在研究惡唑烷酮類藥物對金黃色葡萄球菌的抗菌效果時，不同組藥物的半數有效劑量(ED50)在家蠶幼蟲和嚙齒類動物模型中具有相似的趨勢［13］。給予家蠶和小鼠相同的細胞毒化合物后，發現化合物在家蠶和小鼠體內致死劑量相似，代謝途徑相同，都是與細胞色素P450反應后與羥化物結合，最后排泄［14］，還可以在家蠶飼料中摻入熒光標記化合物，通過觀察熒光進一步追蹤外源化合物在家蠶體內的吸收和分布［15］，最終證實了家蠶作為候選藥物特別是新型抗菌藥物早期研發階段評價模型的可行性。利用新型隱球菌感染蠶模型，成功評價了抗真菌藥物兩性霉素B、氟胞吡啶、氟康唑和酮康唑對新型隱球菌的治療效果［16］。

2.4 GN蠶進行生理、毒理學及放射學的研究

蠶作為實驗動物在遺傳育種、昆蟲變態、昆蟲激素傳遞、性別控制等方面已有很多研究。GF蠶的出現擴大和提高了其作為實驗動物的應用范圍和研究水平。Fujii T等［17］的研究證明性別轉錄相關因子參與家蠶性信息素偏好的轉變，這種因子在昆蟲兩性性外激素偏好的選擇及交配行為發生中起重要作用。增進博之等［18］人以 GF蠶作為實驗動物，測定了單一或混合金屬引起的蠶的毒性反應、重金屬的體內分布、消長及其向蠶后代轉移殘留金屬的分布關系。Kyeong Ryong Lee等［19］人將家蠶血淋巴加入輻射處理后的細胞發現，本應出現上調表達的細胞內質網伴侶蛋白(除irp94)和膜蛋白出現了明顯的下調，說明蠶血淋巴中含有一種可以調節ER蛋白在輻射處理后下調表達的因子。

3 GN作為生物反應發生器及其在轉基因方面的應用

家蠶生物反應發生器的研究和開發主要以家蠶核型多角體病毒(Bombyxmorinuclear polyhedrosis virus，BmNPV)表達系統為主，以BmNPV為載體，以外源基因替換或部分替代多角體蛋白基因，從而使重組BmNPV在蠶體細胞內大量表達外源蛋白［20］，其表達量高，產物天然性質好［21］。近年來研究較多的蠶絲絹細胞表達系統有其獨有的優越性，將外源基因置于絲心蛋白啟動子調控下，利用絲腺細胞表達外源基因，外源基因能完整的表達并分泌到絲腺中，表達量高于 BmNPV表達系統十幾倍，且目的蛋白純度高、無需進行繁瑣的下游濃縮和提純處理［22］。

3.1 生產基因工程疫苗

家蠶生物反應器能高水平表達抗原蛋白，且表達產物活性高。Higashihashi等［23］將帶乙肝表面抗原的M蛋白基因克隆到轉移載體上，再與野生型病毒共轉染獲得重組病毒，以重組病毒感染家蠶幼蟲，可獲得高水平表達的 HBsAg，達(400～500)μg/蠶。周耐明等［24］利用重組的BmNPV在家蠶幼蟲及蛹中高效表達了具有生理活性的 HBsAg，幼蟲表達量為 750 μg/蠶，蛹為 690 μg/蛹，主要表達產物以糖基化形式存在，浮力密度為1.2 g/mL，與病人血清中的HBsAg水平一致。于漣［25］等在家蠶中表達了傳染性法氏囊病病毒的主要宿主保護性抗原蛋向Vp2，動物實驗表明該蛋白Vp2有良好的免疫原性。構建同時攜帶3個甲型H1N1流感病毒基因的重組蠶桿狀病毒，在蠶體內裝配出甲型H1N1流感病毒樣顆粒［26］;構建含有犬細小病毒衣殼結構蛋白VP2的重組蠶桿狀病毒，在蠶和蠶蛹中表達出保留了VP2特異免疫活性或狂犬病毒特異免疫活性的病毒樣顆粒［27］，多種病毒的保護性抗原基因在家蠶BmNPV表達系統中的成功表達，為基因工程病毒亞單位疫苗的研發提供了新的途徑。

3.2 表達各種醫用蛋白

通過基因融合的方法，將大腸桿菌的asp基因在家蠶桿狀病毒中表達，其活性高達5940 U/mg，為利用家蠶生物反應器高效生產該蛋白打下基礎［28］。利用Bac-to-Bac表達系統能夠獲得含有人瘦素蛋白基因及人生長素基因的重組桿狀病毒，并且目的蛋白能在家蠶細胞及幼蟲體內表達［29，30］。通過構建基于piggyBac的中部絲腺特異表達載體，利用家蠶絲腺生物反應器表達人干擾素－ω(huIFN－ω)，該重組蛋白huIFN－ω具有一定的抗細胞增殖活性［31］。家蠶絲腺生物反應器表達人胰島樣生長因子(hIGF-I)，在G0代轉基因家蠶的蠶繭中hIGF-I的表達量約756 ng/g［32］。2004年我國利用家蠶生物反應器生產人粒細胞－巨噬細胞集落刺激因子(hGM-CSF)等生物制品的方法，獲得國家技術發明獎。該項目成功構建線性化［33］家蠶桿狀病毒載體，以家蠶蛹作為“生物反應器”高效表達人粒細胞－巨噬細胞集落刺激因子(hGM-CSF)等60余種醫用蛋白質，建立了家蠶“生物反應器”生物制藥的技術平臺［34］。使用 GN蠶徹底解決了生物制品生產受季節限制、蠶蛹冷凍保存影響產量、產品易受微生物(包括蠶病病原體)污染［35］等諸多問題，為提高生物制藥的質量和產量提供了新的途徑。

3.3 改善絲素性能

蠶絲在食品、醫藥、化工等領域有較廣泛的用途［36］。使用基因工程技術，用其他絲素蛋白基因置換或部分置換家蠶絲素蛋白基因或將外源基因置于絲素蛋白基因下游構建的轉基因蠶可以突破傳統育種的限制，獲得具有優良絲質的家蠶新品種［37－39］。此外，通過基因打靶的技術將外源基因導入家蠶得到完全表達外源基因的轉基因蠶的思路受到人們的重視。這種技術一旦成熟，人們獲得會吐蜘蛛絲［40］、蓖麻蠶絲、樟蠶絲、天蠶絲的轉基因家蠶［41］，這些以前產量稀少的材料就不再難以獲得了。利用GN蠶代替普通蠶進行“蠶絲”的生產，不但可以實現全年化生產，還可以通過改變GN蠶飼料大大改善“蠶絲”性能，此外，無菌技術的使用還利于轉基因蠶的保種和繁殖擴增。

4 GN蠶蠶體各組織器官的作用

家蠶渾身是寶，雖已被人類馴化利用長達5 000余年，但尚遠未研究開發殆盡。

4.1 作為輕工業或生物科技原材料

利用GF蠶生產的無菌蠶絲色澤白亮、纖度細而韌度強，并能實現全年工廠化生產，大大推動了蠶絲產業的發展［42，43］。印度柞蠶絲作為心臟組織工程中支架材料的使用已經得到認可［44］，蠶絲中提取的絲膠蛋白已經被作為一種傷口敷料［45］和一種美容劑的添加劑［46］得到使用。

4.2 作為藥物或藥物添加劑

蠶血淋巴作為藥物添加劑的抗衰老作用得到證實［47］，蠶繭提取物具有抗氧化和降血脂的作用，對高血脂和動脈粥樣硬化療效顯著［48］。蠶粉能減少糖尿病小鼠小丘腦加壓素的產生［49］，可能作為治療糖尿病，特別是糖尿病神經病變的輔助添加劑。含超氧化物歧化酶(superoxide dismutase，SOD)的蠶粉能引起肝癌小鼠自然殺傷細胞(NK cell)活性增強、脾細胞增殖，對肝癌細胞起到顯著抑制作用，可以作為一種安全的能激活NK細胞和免疫系統的腫瘤抑制劑［50］。

4.3 作為中藥材的使用

蠶衣、僵蠶、僵蛹、蠶沙和蛹蟲草等作為傳統中藥材使用時，既沒有藥材標準，更沒有良好的生產環境，產品質量沒有保證。如果用GF蠶來生產蠶衣、僵蠶、僵蛹、蠶沙和蛹蟲草，可有效控制雜菌的污染，提高中藥材生產質量，保證用藥安全有效。

冬蟲夏草是我國十分名貴的中藥材，人工栽培的蛹蟲草或北蟲草與其在營養元素、有效物質成分等方面很相似［51，52］，雖然可在一定程度上代替稀有的冬蟲夏草作為藥品或保健品進行使用，但其不具備藥材學上完整的“蟲草”外形特征，由于“蟲”的缺失，一方面可能導致“草”生長過程中與宿主相互作用產生的某些物質，如抗體等的缺失，另一方面也是導致蟲草無性培育時菌株質量連年下降的重要原因之一。

利用GF蠶幼蟲代替蝙蝠蛾幼蟲接種蟲草菌進行冬蟲夏草的人工培育可以為人們提供一個深入研究冬蟲夏草形成、培育與有效物質藥理活性的良好素材。冬蟲夏草是一種真菌與昆蟲的結合體，蟲體感染過程中是否有其他真菌的參與，各種菌所起的作用是什么，在什么時期起作用等問題還尚不明了，GF蠶幼蟲感染蟲草菌模型能很好的解決這一問題。同時，GF蠶蟲草的培育成功還可以為高純度蟲草菌的分離純化，及高質量、無污染蟲草產品的獲得提供可靠的途徑。

5 小結與展望

GN蠶排除了其他微生物對宿主的影響，為蠶病致病菌致病機制的研究提供了良好的實驗動物，同時使用GN蠶作為實驗動物可一次獲得500個左右遺傳背景一致的實驗個體，且體型小、便于操作、成本低廉、容易分離器官和血淋巴，熒光化合物的使用證實了化合物在蠶體和小鼠體內代謝途徑的一致性，這些特點使GN蠶替代哺乳動物作為新藥研發早期階段，特別是合成化合物量很少的情況下，評價化合物毒性、治療效果的有效模型提供了可行性。

蠶生物反應器有基因工程產品“微型發酵罐”之稱，GN蠶BmNPV表達系統的構建不但能有效提高外源蛋白產量，還能從根本上改善外源蛋白的質量，徹底解決產物，特別是基因工程口服藥物的微生物污染問題。蠶絲絹體細胞表達系統目的蛋白產量高、產物無需進行繁瑣的下游濃縮和提純處理［53］，具有很大的開發前景，如果將轉基因后的蠶卵進行人工無菌飼育，其絲絹體表達系統的遺傳性狀不變，但絲素性質應該會得到很大改善。

GF蠶體內外無微生物，整個生長過程無污染的特點使其作為中、西藥材料，保健品、藥品添加劑甚至是食品時具有普通家蠶無可比擬的優越性。傳統中醫學對蠶體的應用沒有藥材標準，GF蠶作為中藥原料可提高藥材質量，保證用藥安全。隨著人們對家蠶研究的深入，絲蛋白、絲膠蛋白越來越多的潛在價值被發掘出來，最近的研究表明，絲膠蛋白能加速乙醇通過尿的排除和在肝中的氧化作用，絲膠蛋白的水解產物還能誘導胰島中β細胞的活性而增加胰島素的分泌［54］，預示絲蛋白是一種生物調節因子，可能在解酒劑、糖尿病藥物的研發方面發揮新的作用。通過對絲蛋白在提高免疫力方面作用的研究，證實其能作為一種食品中的免疫增強添加劑得到開發。運用GF蠶可以生產出無抗生素、微生物污染的絲蛋白、絲膠蛋白產品，更能簡化提取工藝，提高生產效率、節約成本。

［1］張亞平.家蠶全齡人工飼料無菌飼育技術［J］.山東農業科學，1997，1:48－49.

［2］沈衛德，伊藤智夫.日本家蠶人工飼料的實用化與普及［J］.江蘇蠶業，1989，4:55－59.

［3］張亞平.淺談無菌蠶與無菌蠶飼育［J］.中國蠶業，2001，22(3):82－83.

［4］陳瑞英，張傳溪.人工飼料無菌養蠶［J］.蠶桑通報，1993，24(3):43－46.

［5］王蔭槐，張紀叔，劉艷玲，等.人工飼料培育無菌蠶初報［J］.中國實驗動物學雜志，1999，3(9):164－167.

［6］Cappellozza S，Saviane A，Tettamanti G，et al.Identification of Enterococcus mundtii as a pathogenic agent involved in the“flacherie”disease in Bombyx mori L.larvae reared on artificial diet［J］.J Invertebr Pathol，2011，106(3):386－393.

［7］Gao K，Deng X，Qian H，et al.Cloning，characterization，and expression analysis of a novel BmGDAP1 gene from silkworm，Bombyx mori，involved in cytoplasmic polyhedrosis virus infection［J］.Gene，2012，497(2):208－213.

［8］Kaito C，Akimitsu N，Watanabe H，et al.Silkworm larvae as an animal model of bacterial infection pathogenic to humans［J］.Microb Pathog，2002，32(4):183－190.

［9］Kaito C，Kurokawa K，Matsumoto Y，et al.Silkworm pathogenic bacteria infection model for identification of novel virulence genes［J］.Mol Microbiol，2005，56(4):934－944.

［10］Hanaoka N，Takano Y，Shibuya K，et al.Identification of the putative protein phosphatase gene PTC1 as a virulence-related gene using a silkworm model of Candida albicans infection［J］.Eukaryot Cell，2008，7(10):1640－1648.

［11］Hossain MS，Hamamoto H，Matsumoto Y，et al.Use of silkworm larvae to study pathogenic bacterial toxins［J］.J Biochem，2006，140(3):439－444.

［12］Miyazaki S，Matsumoto Y，Sekimizu K，et al.Evaluation of Staphylococcus aureus virulence factors using a silkworm model［J］.FEMS Microbiol Lett，2012，326(2):116－124.

［13］Barman TK，Arora P，Rao M，et al.Utilization of Bombyx mori larvae as a surrogate animal model for evaluation of the antiinfective potential of oxazolidinones［J］.J Infect Chemother，2008，14(2):166－169.

［14］Hamamoto H，Tonoike A，Narushima K，et al.Silkworm as a model animal to evaluate drug candidate toxicity and metabolism［J］.Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol，2009，149(3):334－339.

［15］Tansil NC，Li Y，Koh LD，The use of molecular fluorescent markers to monitor absorption and distribution of xenobiotics in a silkworm model［J］. Biomaterials，2011， 32(36):9576－9583.

［16］Matsumoto Y，Miyazaki S，Fukunaga DH，et al.Quantitative evaluation of cryptococcal pathogenesis and antifungal drugs using a silkworm infection model with Cryptococcus neoformans［J］.J Appl Microbiol，2012，112(1):138－146.

［17］Fujii T，Fujii T，Namiki S，Sex-linked transcription factor involved in a shift of sex-pheromone preference in the silkmoth Bombyx mori［J］.Proc Natl Acad Sci U S A，2011，108(44):18038－18043.

［18］增進博之.關于重金屬對無菌蠶毒性的研究［J］.江蘇蠶業，1996，3:57－61.

［19］Lee KR，Kim SW，Kim YK，et al.Silkworm hemolymph downregulates the expression of endoplasmic reticulum chaperones under radiation-irradiation［J］.Int J Mol Sci.2011，12:4456－4464.

［20］Smith GE，Summers MD，Fraser MJ.Production of human beta interferon in insect cells infected with a baculovirus expression vector［J］.Mol Cell Biol，1983，3:2l56－2165.

［21］崔紅娟，陳克平.家蠶生物反應器表達外源基因［J］.生物技術，1999，9(3):31－34.

［22］李宏，錢水華.家蠶絲腺生物反應器的研究現狀［J］.北方蠶業，2003，24(98):15－l6.

［23］Higashihashi N，Arai Y，Enjo T，et al.High-level expression and characterization of hepatitis B virus surface antigen in silkworm using a baculovirus vector［J］.J Virol Methods，1991，35(2):159－167.

［24］周耐明，張穎，金偉，等.乙肝病毒S基因在家蠶細胞及蠶體內高技表達［J］.生物工程學報，1995，11(3):211－216.

［25］于璉，宋坤華，張耀洲，等.家蠶表達傳染性法氏囊病病毒VP2蛋白的免疫原性初步研究(英文)［J］.浙江大學學報(農業與生命科學版)，2000，26(1):9－16.

［26］李姿林.多基因表達家蠶生物反應器組裝甲型H1N1流感病毒樣顆粒的研究［J］.北京農業，2011，3:145－146.

［27］Feng H，Liang M， Wang HL，et al.Recombinant canine parvovirus-like particles express foreign epitopes in silkworm pupae［J］.Vet Microbiol，2011，29，154(1－2):49－57.

［28］費建明，吳巖，占鵬飛，等.家蠶BmNPV多角體蛋白與大腸桿菌L－天冬酰胺酶Ⅱ的融合表達［J］.中國蠶業，2011，32(2):29－31.

［29］陳蔚，付凡，唐順明，等.利用 Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統在家蠶中表達人瘦素蛋白［J］.蠶業科學，2011，37(2):325－329.

［30］付凡，陳蔚，唐順明，等.利用 Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統在家蠶中表達人生長素［J］.蠶業科學，2011，37(2):320－324.

［31］姚玲.利用家蠶絲腺生物反應器表達人干擾素－ω的研究［D］.生物化學與分子生物學，2009，45－46.

［32］潘興亮.家蠶絲腺生物反應器表達 hIGF-I轉基因分泌表達載體的構建及其應用研究［D］.生物化學與分子生物學，2009，61.

［33］Kitts PA，Possee RD.A method for producing recombinant baculovirus expression vectors at high frequency［J］.Biotechniques，1993，14(5):810－817.

［34］張耀洲.家蠶生物反應器生產生物制品的方法［J］.中國科技成果，2007，5:58－59.

［35］貢成良，金勇豐，吳衛東，等.家蠶生物反應器表達 hGMCSF產業化若干問題的研究［J］.蠶業科學，2002，28(3):207－210.

［36］張曉麗，黃晨.蠶絲的綜合利片及新用途的開發［J］.安徽農業科學，2000，28(4):540－542.

［37］黃材霆.人工絲蛋白的研究［J］.蠶桑通報，32(3):l－6.

［38］趙昀，陳秀，彭衛平，等.利用同源重組改變家蠶絲心蛋白重鏈基因［J］.生物化學與生物物理學報，2001，33(1):ll2－ll6.

［39］查幸福，鄭慧.利用轉基因改造繭絲品質［J］.四川絲綢，2003，(3):12－13.

［40］朱成鋼，金勇，史鋒，等.用絲心蛋白輕鏈基因構建轉基因家蠶基因打靶載體［J］.農業生物技術學報，2002，10(2):l71－175.

［41］李振剛，周叢照，唐恒立，等.YAC介導的天蠶絲素基向家蠶的轉移―天蠶絲素基－YAC克隆在家蠶的表達［J］.昆蟲學報，1997，40(1):1－5.

［42］松原藤好.無菌生物學在蠶絲生產科學中的應用和發展［J］.江蘇蠶業，1990，4:72－78.

［43］何中琴，錢鎮海.高質量蠶絲和其全年無菌蠶絲生產技術［J］.國外絲綢，1999，6:4－10.

［44］Patra C，Talukdar S，Novoyatleva T.Silk protein fibroin from Antheraea mylitta for cardiac tissue engineering［J］.Biomaterials.2012，33(9):2673－2680.

［45］Teramoto H，Kameda T，Tamada Y.Preparation of gel film from Bombyx mori silk sericin and its characterization as a wound dressing［J］.Biosci Biotechnol Biochem，2008，72:3189－3196.

［46］Padamwar MN，Pawar AP，Daithankar AV，et al.Silk sericin as a moisturizer:An in vivo study［J］.J Cosmet Dermatol，2005，4:250－257.

［47］Choi SS，Rhee WJ，Park TH.Inhibition of human cell apoptosis by silkworm hemolymph［J］.Biotechnol Prog.2002，18(4):874－878.

［48］Ali MM，Arumugam SB.Effect of crude extract of Bombyx mori coccoons in hyperlipidemia and atherosclerosis［J］.J Ayurveda Integr Med.2011，2(2):72－78.

［49］Kim MJ，Hong SJ，Yang J，et al.Silkworm(Bombyx mori L.)reduces vasopressin expression in the hypothalamus of streptozotocin-induced diabetic mice［J］.Neurol Res，2007，29:72－77.

［50］Yue WF，Deng W，Li XH，et al.Silkworm powder containing manganese superoxide dismutase regulated the immunity and inhibited the growth of Hepatoma 22 cell in mice［J］.Mol Biol Rep，2009，36(2):323－328.

［51］黃銀妹，孫云漢，陳萬彬，等.冬蟲夏草及其培養菌絲體中的成分分析［J］，中成藥研究，1983，(5):25.

［52］龔曉健，季暉，盧順高，等.人工蟲草多糖對小鼠免疫功能的影響［J］.中國藥科大學學報，2000，31(1):53－55.

［53］李宏，錢水華.家蠶絲腺生物反應器的研究現狀［J］.北方蠶業，2003，24:15－l6.

［54］Jung EY， LeeHS， LeeHJ， et al. Feedingsilk protein hydrolysates to C57BL/KsJ-db/db mice improves blood glucose and lipid profles［J］.Nutr Res，2010，30:783－790.

Research and Application of Gnotobiotic Silkworm

DUO Jian-ying，WANG Yin-huai，WEI Qiang
(Key Laboratory of Human Diseases Comparative Medicine，Ministry of Health;Institute of Medical Laboratory Animal Science，Chinese Academy of Medical Sciences;Key Laboratory of Human Diseases Animal Models，State Administration of Traditional Chinese Medicine;Peking Union Medical College，Beijing 100021，China)

The silkworm with no unknown organisms living in or outside its body called gnotobiotic silikworm.The foster methods of gnotobiotic silikworm is much easier then that of mammal ones，and completely overcomed seasonal and regional breeding limits.Gnotobiotic silikworm lay the foundation for its wide application in laboratory animal science.With the development of modern biotechnology，study on the application of gnotobiotic silikworm as a bioreactor generator or genetic engineering animal has been gradually developed into the practical stage.

Gnotobiotic silkworm;Laboratory animal;Bioreactor generator;Application

R33

A

1671-7856(2012)08-0068-06

10.3969.j.issn.1671.7856.2012.008.016

2012-06-05

科技重大專項－艾滋病和病毒性肝炎等重大傳染病防治，項目號2012ZX10004－501。

朵建英(1984－)，女，碩士，技師，從事悉生動物研究工作。

魏強，男，教授，博士導師，研究方向:實驗動物病毒學。E-mail:weiqiang0430@sohu.com。