安玉會,王潔瓊,徐 衍,崔海濤,馬乾坤,李芳芳,何一昕
(鄭州大學基礎醫學院生物化學與分子生物學教研室 河南鄭州 450001)
1980年至2005年,全球癌癥的年發病人數增加了1倍,從600萬人上升到1 200萬人[1]。據1999年的統計,肝癌的病死率在各種癌癥中排第4位,在男性則為第3位,共有42.7萬人死于肝癌[2]。肝癌在世界人口的標化死亡率為17.72/10萬,在中國人口的標化死亡率為13.45/10萬[3]。
盡管化療藥物可以快速縮小腫瘤的體積,但治療后的復發仍高比率的出現于腫瘤病人中。其根本原因是這些化療藥物在根除癌干細胞方面是低效率的。新的研究發現,天然存在的營養性化合物為癌的化學預防提供了可能[4],因為它們能直接或間接地影響癌干細胞的增殖途徑[5]。對靈芝的抗癌作用研究表明,靈芝能抑制癌的侵潤和轉移,具有良好的腫瘤化學防治作用[6],但抑制機理不明,是否是靈芝對癌干細胞發揮了作用,尚未見到相關報道。本文報告靈芝對人肝癌細胞中己糖激酶活性和肝癌干細胞中CD133蛋白的抑制作用。
1.1 細胞分組并進行藥物處理 取對數生長期的肝癌SMMC7721細胞進行96孔鋪板,每孔接種細胞104個。細胞貼壁后,分別用不同濃度(100、200、300、400、500 μg/ml)的靈芝L08處理24 h、48 h、72 h。其中每種藥物每個濃度做3個平行實驗,設置一個對照組和100、200、300、400、500 μg/ml的陽性對照組(環磷酰胺組)。
1.2 腫瘤細胞抑制率的測定 將加藥處理24 h、48 h、72 h后的肝癌SMMC7721細胞培養液中加入MTT (5 mg/ml),每孔20 μl,孵育4 h。終止孵育時,小心棄去孔內液體,每孔加入150 μl的DMSO,利用酶標儀在450 nm測定其OD值。抑制率(%)=(對照組OD值-加藥處理組OD值)/對照組OD值×100%。
1.3 己糖激酶活性測定的測定 處理細胞后終止培養,破裂細胞。按照己糖激酶試劑盒操作流程進行加樣,混勻,記錄30 s時340 nm波長處的吸光度(A1值),將比色皿中的反應液倒入預先編號的試管中,放入37℃水浴20 min,測定20 min30 s的吸光度(A2值)。HK活性(U/g protein)=(A2-A1)/毫摩爾消光系數×1/(反應時間×比色光徑)×反應體系中樣本稀釋倍數×1 000。
1.4 CD133蛋白的測定方法 收集處理24 h后的細胞反復凍融并離心。收集上清液測定蛋白含量。取蛋白樣品,加入等量的loading buffer。振蕩混勻,煮沸5 min,離心后110 V電泳至膠下緣。取膠,轉膜,室溫封閉2 h。洗膜3次后加入一抗(1 μg/ml)。洗膜后加入辣根過氧化物酶標記的羊抗兔抗體(即二抗),室溫孵育1 h。洗膜并用辣根過氧化酶-DAB法染色。出現明顯的棕色蛋白條帶停止染色。用灰度儀掃描棕色蛋白條帶。
1.5 統計學分析 MTT和己糖激酶活性測定所得的數據利用SPSS 17.0進行數據分析,各組分別同陰性對照組、陽性對照組進行t檢驗分析。不同藥物濃度的組內進行F檢驗分析,數據用±s表示。組間數據比較用t檢驗。檢驗水準α=0.05。
2.1 靈芝L08對細胞增殖的抑制 靈芝L08對人肝癌SMMC7721細胞的增殖具有明顯的抑制作用。與化療藥物環磷酰胺比,200 μg/ml以下濃度的靈芝L08作用人肝癌SMMC7721細胞24 h,其抑制率低于環磷酰胺。但作用時間超過48 h以上,200 μg/ml的靈芝L08均比同樣濃度的環磷酰胺對人肝癌SMMC7721細胞的增殖具有更強的抑制作用。并且,隨著靈芝L08濃度和作用時間的增加,其抑制率更高。不同濃度的靈芝L08和環磷酰胺對細胞增殖作用的抑制率,見表1~3。
表1 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理24 h增殖的影響(±s)

表1 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理24 h增殖的影響(±s)
靈芝L08組總F=25.41,P<0.05;環磷酰胺組總F=22.45,P<0.05。
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表2 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理48 h增殖的影響(±s)

表2 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理48 h增殖的影響(±s)
靈芝L08組總F=53.37,P<0.05;環磷酰胺組總F=32.11,P<0.05。
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表3 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理72 h增殖的影響(±s)

表3 靈芝L08和環磷酰胺對肝癌SMMC7721細胞處理72 h增殖的影響(±s)
靈芝L08組總F=24.28,P<0.05;環磷酰胺組總F=57.16,P<0.05。
抑制率(%)組別 n OD值0.58±0.024 0.54±0.021 0±0.025 0±0.020 100 μg/ml 6 0.50±0.032 0.48±0.016 17.27±0.027 14.01±0.017 200 μg/ml 6 0.45±0.018 0.44±0.012 25.21±0.020 20.83±0.020 300 μg/ml 6 0.39±0.062 0.35±0.025 37.53±0.045 41.31±0.023 400 μg/ml 6 0.22±0.039 0.26±0.017 71.64±0.037 60.72±0.018 500 μg/ml 6 0.12±0.006 0.14±0.025 92.20±0.010 86.環磷酰胺正常對照靈芝L08環磷酰胺 靈芝L08 6 63±0.022
2.2 靈芝L08對己糖激酶活性的抑制 靈芝L08和環磷酰胺均能降低人肝癌SMMC7721細胞己糖激酶的活性。隨著靈芝L08和環磷酰胺濃度的增加,它們對己糖激酶的抑制率也逐步增加。但隨著它們對細胞作用時間的增加,各濃度對應組的抑制作用則逐步降低。不同濃度的靈芝L08和環磷酰胺對細胞中己糖激酶的抑制率,見表4~6。
表4 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞24 h對己糖激酶活性的影響(±s)

表4 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞24 h對己糖激酶活性的影響(±s)
抑制率(%)組別 n OD值0.277±0.011 0.689±0.031 0±0.016 0±0.027 100 μg/ml 6 0.232±0.026 0.573±0.023 16.3±0.023 16.9±0.021 200 μg/ml 6 0.227±0.025 0.567±0.026 18.1±0.021 17.8±0.023 300 μg/ml 6 0.221±0.016 0.548±0.018 20.3±0.020 20.5±0.020 400 μg/ml 6 0.209±0.019 0.536±0.030 24.6±0.017 22.3±0.025 500 μg/ml 6 0.196±0.023 0.531±0.016 29.3±0.024 23環磷酰胺正常對照靈芝L08環磷酰胺 靈芝L08 6.0±0.017
靈芝L08組總F=27.89,P<0.05;環磷酰胺組總F=45.31,P<0.05。
表5 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞48 h對己糖激酶活性的影響(±s)

表5 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞48 h對己糖激酶活性的影響(±s)
靈芝L08組總F=32.36,P<0.05;環磷酰胺組總F=27.03,P<0.05。
抑制率(%)組別 n OD值0.265±0.019 0.667±0.018 0±0.020 0±0.019 100 μg/ml 6 0.230±0.016 0.562±0.026 13.3±0.017 15.8±0.023 200 μg/ml 6 0.222±0.014 0.558±0.017 16.3±0.018 16.4±0.018 300 μg/ml 6 0.216±0.024 0.550±0.024 18.5±0.022 17.6±0.022 400 μg/ml 6 0.204±0.013 0.533±0.019 23.1±0.016 20.1±0.020 500 μg/ml 6 0.194±0.027 0.530±0.036 26.8±0.024 20環磷酰胺正常對照靈芝L08環磷酰胺 靈芝L08 6.6±0.027
表6 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞48 h對己糖激酶活性的影響(±s)

表6 靈芝L08和環磷酰胺處理肝癌SMMC7721細胞48 h對己糖激酶活性的影響(±s)
靈芝L08組總F=25.75,P<0.05;環磷酰胺組總F=35.38,P<0.05。
抑制率(%)組別 n OD值0.263±0.016 0.660±0.034 0±0.017 0±0.027 100 μg/ml 6 0.227±0.013 0.559±0.033 13.7±0.016 15.4±0.025 200 μg/ml 6 0.219±0.019 0.556±0.028 16.8±0.020 15.8±0.023 300 μg/ml 6 0.214±0.013 0.548±0.023 18.7±0.023 17.0±0.022 400 μg/ml 6 0.201±0.014 0.534±0.030 23.6±0.020 19.1±0.024 500 μg/ml 6 0.194±0.023 0.531±0.036 26.3±0.024 19環磷酰胺正常對照靈芝L08環磷酰胺 靈芝L08 6.6±0.025
2.3 靈芝L08對SMMC772細胞CD133蛋白水平的影響 靈芝L08能降低癌干細胞的標志物蛋白CD133的水平,并且隨著靈芝濃度的增加,CD133蛋白的水平顯著降低。環磷酰胺也能少量降低CD133蛋白的水平,但隨著環磷酰胺濃度的增加,CD133蛋白的水平并沒有明顯的改變。不同濃度的靈芝L08和環磷酰胺對肝癌干細胞中CD133蛋白水平的影響見圖1、圖2和表7。

表7 靈芝L08和環磷酰胺處理SMMC772細胞后CD133蛋白條帶的灰度值(±s)

表7 靈芝L08和環磷酰胺處理SMMC772細胞后CD133蛋白條帶的灰度值(±s)
靈芝L08組總F=215.88,P<0.05;環磷酰胺組總F=82.21,P<0.05。
P組別 n 環磷酰胺空白對照組灰度值靈芝L08環磷酰胺 靈芝L08 3 348.25±7.993 354.75±9.205 100 μg/ml 3 257.50±8.510 249.00±5.401 0.000 0.000 200 μg/ml 3 202.25±6.156 234.75±5.360 0.000 0.000 400 μg/ml 3 101.00±4.916 246.25±3.198 0.000 0.000
實驗結果顯示,靈芝 L08能抑制人肝癌SMMC7721細胞的增殖。隨著濃度和時間的增加,靈芝L08比同樣濃度的環磷酰胺對細胞的抑制率更高。腫瘤組織即使在氧供應充分的條件下也主要以無氧糖酵解獲取能量[7],而己糖激酶是催化無氧糖酵解第一步反應的關鍵酶[8]。靈芝L08能抑制人肝癌細胞己糖激酶的活性,從而可抑制癌細胞通過無氧糖酵解獲取增殖的能量,阻止人肝癌細胞的增殖。
Suetsugu等[9]證實,CD133蛋白陽性的肝癌細胞具有癌干細胞樣的性質。Lingala等[10]證明在肝細胞癌表面存在著CD133蛋白。在先前的研究中,作者也證實人肝癌SMMC7721細胞系中存在著CD133陽性的癌干細胞[11]。靈芝 L08降低人肝癌干細胞的CD133蛋白的水平,一方面表明靈芝L08抑制了人肝癌干細胞的CD133基因的表達,因此降低了CD133蛋白水平??赡莒`芝L08抑制了人肝癌干細胞的增殖,減少了人肝癌干細胞數,因此CD133蛋白水平有了明顯降低。但是,靈芝是因為抑制了CD133基因的表達才阻止了肝癌干細胞的增殖,還是抑制了肝癌干細胞增殖才降低了CD133蛋白的水平,須要進一步研究。但可以肯定肝癌干細胞增殖的抑制和減少,阻止了癌細胞的增殖、浸潤、轉移和復發可能。
在中國、日本、朝鮮和亞洲許多國家,靈芝曾被用作傳統藥物治療多種疾?。?2]。對靈芝的抗癌作用研究表明,靈芝能抑制癌細胞的侵潤和轉移,具有良好的腫瘤化學預防作用[6]。本研究的結果表明,靈芝可抑制肝癌細胞己糖激酶的活性,因而也就抑制了肝癌細胞和癌干細胞增殖的能量來源。同時,靈芝也降低了CD133蛋白的水平,抑制了癌干細胞的增殖。靈芝作為公認的傳統草藥在癌的預防和治療中必將發揮更大的作用。
[1] Sasco A J.Cancer and globalization[J].Biomedicine and Pharmacotherapy,2008,62(2):110-121.
[2] 張思維,雷正龍,李光琳,等.中國腫瘤登記地區2006年腫瘤發病和死亡資料分析[J].中國腫瘤,2010,19(6):356-365.
[3] 毛鎖寶.2003年-2007年原發性肝癌的發病率及相關因素分析[J].中外醫學研究,2009,7(14):170-171.
[4] Koch U,Krause M,Baumann M.Cancer Stem cells at the crossroads of current cancer therapy failure-Radiation oncology perspective[J].Seminars in Cancer Biology,2010,20(2):116-124.
[5] Li Y Y,Wicha M S,Schwartz S J,et al.Implications of cancer stem cell theory for cancer chemoprevention by natural dietary compounds[J].Journal of Nutritional Biochemistry,2011,22(9):799-806.
[6] Weng C J,Yen G C.The in vitro and in vivo experimental evidences disclose the chemopreventive effects of Ganoderma lucidum on cancer invasion and metastasis[J].Clin Exp Metastasis,2010,27(5):361-369.
[7] 趙迎超,伍鋼.己糖激酶與惡性腫瘤的關系研究進展[J].腫瘤防治研究,2006,33(9):694-696.
[8] Miller S,Ross-Inta C,Giulivi C.Kinetic and proteomic analyses of S-nitrosoglutathione-treated hexokinase A:consequences for cancer energy metabolism[J].Amino Acids,2007,32(4):593-602.
[9] Suetsugu A,Nagaki M.Characterization of CD133+hepatocellular carcinoma cells as cancer stem/progenitor cells[J].Biochem and Biophys Res Comm,2006,351(4):820-824.
[10]Lingala S,Cui Y Y,Chen X L,et al.Immumohistochemical staining of cancer cell markers in hepatocellular carcinoma[J].Experimental and Molecular Pathology.2010,89(1):27-35.
[11]安玉會,宋丹,楊麗君,等.大豆黃酮對肝癌SMMC7721細胞和CD133腫瘤干細胞增殖的影響[J].河南醫學研究,2010,19 (4):385-388.
[12]Li Y Q,Wang S F.Anti-hepatitis B activities of ganoderic acid from Ganoderma lucidum[J].Biotechnol Lett,2006,28(11):837-841.