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轉染isl1基因促進骨髓間充質干細胞向心肌樣細胞分化*

2012-07-31 14:06:16李杏肖李曉紅林秋雄肖定璋劉曉穎單志新朱杰寧麥麗萍夏慧蘇余細勇
中國病理生理雜志 2012年1期

李杏肖,李曉紅,林秋雄,肖定璋,劉曉穎,單志新,朱杰寧,麥麗萍,夏慧蘇,余細勇

(廣東省心血管病研究所,廣東省人民醫(yī)院,廣東省醫(yī)學科學院,廣東 廣州 510080)

骨髓間充質干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)有較高的端粒酶活性[1],具有自我更新和多向分化潛能。在一定環(huán)境下可轉變生成心肌細胞,移植時不會引起免疫排斥反應[2],對人體來講是相對安全的[3]。因此,探索用BMSCs修復損傷的心肌組織,重建新生血管,為缺血性心臟病治療帶來新的希望。體外實驗證明,在心臟發(fā)生和多能心臟祖細胞分化為心肌細胞系、內皮細胞系和平滑肌細胞系的過程中,LIM(Lin-11、Isl-1和Mec-3)同源結構域轉錄因子Islet 1(insulin transcription factor 1,Isl1)發(fā)揮著十分重要的作用[4-6]。Moretti等[7]進一步的研究發(fā)現(xiàn),Isl1+心臟祖細胞可分化為心肌細胞。

將未分化的骨髓間充質干細胞直接移植入體內,其將自主分化為多種細胞類型,并可形成畸形瘤。為了避免畸形瘤的形成,在移植前,干細胞必須分化為特定的細胞系。另外,目前研究表明,單一條件下,骨髓間充質干細胞成肌分化率并不高。因此,本研究采用微環(huán)境和轉錄因子Isl1聯(lián)合應用的策略觀察骨髓間充質干細胞向心肌細胞分化的能力,為基因治療提供進一步的理論基礎和實踐依據(jù)。

材料和方法

1 主要試劑

人骨髓間充質干細胞生長完全培養(yǎng)基購于Cyagen,按說明書配制,4℃ 保存;DMEM/F12培養(yǎng)基購于HyClone;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購于Gibco。Polybrene和 puromycin購于 Sigma;Standard Transwell Insert購于 Corning。新生 SD乳鼠(1~3 d)購自廣州市白云區(qū)龍歸嶺南科研動物養(yǎng)殖場。Trizol購于Molecular Research Center;GoTap? Green Master Mix購于 Promega;PrimeScriptTMRT Reagen Kit及SYBR? Premix Ex TaqTM購于 TaKaRa。GAPDH(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,磷酸甘油醛脫氫酶)、心肌肌鈣蛋白T(cardiac troponin T,cTnT)、心肌肌鈣蛋白 I(cardiac troponin I,cT-nI)、α-輔肌動蛋白(α-actinin)和辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標記的Ⅱ抗均購于Sant Cruz;FITC(fluorescein isocyanate,異氰酸熒光素)標記Ⅱ抗購于Invitrogen;Isl1蛋白抗體購于Proteintech Group;二脒基苯基吲哚(4,6-diamidino-2- phenylindole,DAPI)購于 Sigma。

2 方法

2.1 骨髓間充質干細胞的分離和培養(yǎng) 本實驗采用骨穿法獲取人體骨髓,聯(lián)合應用差速貼壁法和密度梯度離心法分離獲得BMSCs。樣本置于人BMSCs生長完全培養(yǎng)基(Cyagen)中,于37℃、5%CO2、飽和濕度的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。72 h后更換培養(yǎng)液,棄去未貼壁細胞,此時貼壁細胞即為BMSCs。當細胞達80%融合時即可進行傳代。

2.2 穩(wěn)定細胞株BMSC-isl1的制備及鑒定 本實驗采用慢病毒LVS-isl1(廣州賽業(yè)生物科技有限公司制備)感染 BMSCs。感染時,加入8 mg/L polybrene。感染后第2 d,換液(不含 polybrene)。感染后第3 d,開始穩(wěn)定細胞株的篩選(0.5 mg/L puromycin),10~12 d后即可形成抗puromycin的穩(wěn)定表達Isl1的細胞株,命名為BMSC-isl1。攜帶EGFP但不攜帶Isl1的慢病毒感染BMSCs,篩選獲得的穩(wěn)定表達細胞株,命名為BMSC-vehicle。

獲得穩(wěn)定表達的細胞株后,RT-PCR檢測BMSC-isl1中Isl1 mRMA的表達水平;Western blotting檢測BMSC-isl1中Isl1蛋白表達水平。

引物序列:Isl1正義鏈 5'-GCTCGTCGTCGACAACGGCTC-3',反義鏈 5'-CAAACATGATCTGGGTCATCTTCTC-3';β-actin正義鏈5'-GCGAATGTTTCCGCTGTGTAG -3',反義鏈 5'-AGCTTACAAAGGCGACACATC -3'。

2.3 乳鼠心肌細胞的分離、培養(yǎng) 新生1~3 d SD乳鼠,取出心臟,加入0.25%胰酶反復消化至組織塊消化完全,2500 r/min離心10 min,去上清。用培養(yǎng)基將沉淀的細胞重懸并轉入至培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。2 h后顯微鏡觀察并計數(shù),將未貼壁細胞轉入Transwell小室(直徑為0.4 μm)中培養(yǎng)。

2.4 模擬心肌微環(huán)境的非接觸共培養(yǎng) BMSCs和乳鼠心肌原代細胞用Transwell小室以1:10的比例共培養(yǎng),下層分別種植BMSCs、BMSC-vehicle或者BMSC-isl1,上層種植乳鼠心肌原代細胞。加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,放入37℃培養(yǎng)箱,隔天換液。

2.5 Isl1的調控能力考察 共培養(yǎng)1周結束后,觀察BMSCs分化為心肌樣細胞的能力,并在mRNA水平和蛋白水平進行檢測。(1)Real-timePCR檢測心臟特異性轉錄因子GATA結合蛋白4(GATA-binding protein 4,GATA4)、NK2 轉錄因子 5(NK2 transcription factor related,locus 5,NKx2.5)和肌細胞增強因子 2C(myocyte enhancer factor 2C,MEF2C),以及心肌特性基因蘭尼堿受體2(ryanodine receptor 2,RyR2)mRNA表達水平;(2)Western blotting檢測心肌特異性蛋白cTnT的表達;(3)免疫熒光檢測心肌特異性蛋白α-actinin和cTnI的表達。

引物序列:GATA4正義鏈 5'-GCTGGAGCTCAAGGAGACTC -3',反義鏈 5'-TACTGATTTTCCAGCCATTTCA-3';Nkx2.5正義鏈 5'-GCTCCCAACATGACCCTGAG-3',反義鏈 5'- TGCCCATGGACTCTCGGAG-3';MEF2C正義鏈5'-ATATCATTGGCGTATGGCAC -3',反義鏈 5'- AAAAAGCCACAAATGCTTTG-3';RyR2正義鏈 5'-TACCAG-CAAGCCCGACTC -3',反義鏈 5'-ACCTTGAGAGCAACGAGGAA-3';β-actin正義鏈5'-GCCAACACAGTGCTGTCTG -3',反義鏈 5'-TACTCCTGCTTGCTGATCCA -3'。

3 統(tǒng)計學處理

結 果

1 穩(wěn)定細胞株BMSC-isl1的鑒定

慢病毒感染BMSCs后,從mRNA水平和蛋白水平兩個層面對細胞進行了鑒定。RT-PCR和Western blotting結果均顯示,BMSCs、BMSC-vehicle中無Isl1的表達,BMSC-isl1組Isl1有較高表達,見圖1。表明已成功獲得過表達Isl1的穩(wěn)定細胞株BMSC-isl1。

Figure 1.Identification of stable BMSC -isl1 cell line.Representative RT-PCR(A)and Western blotting assays(B)of Isl1 are shown.BMSCs were maintained in human MSC complete medium and transfected with LVS-isl1 when cells reached 70%confluence.After 48 h,BMSCs were treated with puromycin(2 mg/L).After 7~10 d treatment of puromycin,cells were harvested and total RNA and cell lysates were subject to RT - PCR and Western blotting assays,respectively.圖1 BMSC-isl1中Isl1 mRNA及蛋白的表達

2 共培養(yǎng)1周后檢測Isl1的調控能力

Real-time PCR檢測結果顯示(圖2),BMSCs組和BMSC-vehicle組相比,心肌特異性轉錄因子GATA4、Nkx2.5和MEF2C,以及心肌特異蛋白RyR2 mRNA表達差異無統(tǒng)計學意義(均P>0.05)。BMSC-isl1組心肌特異性轉錄因子GATA4、Nkx2.5和MEF2C,以及心肌特異蛋白RyR2 mRNA的表達較之BMSCs組和BMSC-vehicle組均有提高,且差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。

Figure 2.Effects of Isl1 on BMSC differentiation tested by examining the mRNA expression of GATA4,Nkx2.5,MEF2C and RyR2.BMSCs,BMSC-vehicle and BMSC-isl1 stable cell line were co-cultured with neonatal rat ventricular myocytes for 1 week.The cells were collected and total RNA was subject to real-time PCR analysis..n=3.*P<0.05 vs BMSCs or BMSC -vehicle.圖2 微環(huán)境中Isl1對BMSCs分化能力的影響

Western blotting檢測結果顯示(圖3),BMSCs組和BMSC-vehicle組相比,cTnT的表達差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),BMSC-isl1組與 BMSCs組及BMSC-vehicle組相比,cTnT的表達增加,且差異有統(tǒng)計學意義(均 P <0.05)。

Figure 3.Effects of Isl1 on BMSC differentiation tested by examining the expression of cTnT.BMSCs,BMSC -vehicle and BMSC-isl1 stable cell line were co-cultured with neonatal rat ventricular myocytes for 1 week.The cells were harvested and cell lysates were subject to Western blotting assay..n=3.*P<0.05 vs BMSCs or BMSC -vehicle.圖3 微環(huán)境中Isl1對BMSCs cTnT表達的影響

免疫熒光結果顯示(圖4),BMSCs組和BMSC-vehicle組內BMSCs有少量 α-actinin和cTnI的表達,而且2組表達量相近。BMSC-isl1組內心肌特異性蛋白α-actinin和cTnI的表達量比BMSCs組及BMSC-vehicle組有顯著提高。

Figure 4.Immunostaining of α -actinin and cTnI in BMSCs,BMSC -vehicle and BMSC -isl1 stable cell line(×400).BMSCs,BMSC-vehicle and BMSC-isl1 stable cell line were seeded on coverslip and co-cultured with neonatal rat ventricular myocytes for 1 week,then the cells were fixed and stained.圖4 微環(huán)境中 Isl1對BMSCs α-actinin和cTnI表達的影響

討 論

盡管BMSCs的研究較多,但多為現(xiàn)象的觀察,其誘導分化為心肌細胞的調控機制知之甚少,甚至完全不了解,以致于目前所有的方法均誘導效率偏低,存活時間短,無法真正滿足臨床治療的需要。

無論是在胚胎期心臟發(fā)生,還是在干細胞向心肌分化過程中,Nkx2.5和 GATA4的表達是必需的[8]。GATA4是心臟前體細胞的最早期標志之一,是心臟發(fā)育過程中的重要轉錄因子[9]。Nkx2.5具有顯著的心臟特異性表達的特點,對心肌細胞的分化起到重要作用[10]。Nkx2.5的激活常常意味著心肌分化程序的啟動[11]。MEF2C被稱為心肌增強因子,含有2個LIM同源結構域蛋白IslI結合位點,進一步研究表明,在小鼠胚胎發(fā)育的心臟前期發(fā)生過程中,MEF2C是IslI的直接下游靶基因[12]。無獨有偶,微環(huán)境誘導下,BMSC-isl1向心肌樣細胞分化過程中,我們也觀察到MEF2C基因表達的升高。

微環(huán)境誘導下,BMSC-isl1組 GATA4、Nkx2.5和MEF2C等心臟轉錄因子的基因表達有明顯的增加,提示心肌分化程序已經(jīng)啟動,且表明BMSC-isl1向心肌方向分化的能力高于BMSCs和BMSC-vehicle組。

RyR2是主要在心肌細胞肌質網(wǎng)上表達的Ca2+釋放通道,大多數(shù)RyR2分布在肌質網(wǎng)的膜區(qū)[13]。肌鈣蛋白是肌肉收縮的調節(jié)蛋白,具有高度的心肌特異性。心肌肌鈣蛋白(cardiac troponin,cTn)由3種不同基因的亞基組成:cTnT、cTnI和cTnC。在心肌細胞收縮和舒張過程中發(fā)揮重要作用[14]。α-actinin是區(qū)分肌細胞和非肌細胞彈力纖維的標志。α-actinin的表達密度隨著心肌細胞的成熟同步增多[15]。

實驗中共培養(yǎng)環(huán)境下,BMSCs、BMSC-vehicle和BMSC-isl13組細胞中檢測到心肌特異性蛋白RyR2、cTnT、cTnI以及 α -actinin的表達,結果和同類文獻報道相同[11],說明3組細胞均向心肌樣細胞分化。其中,BMSCs組和BMSC-vehicle組各mRNSA和蛋白的表達量相當,說明慢病毒對BMSCs的分化能力沒有影響。BMSC-isl1組較其它2組mRNA和蛋白的表達均明顯提高,即BMSC-isl1的心肌分化能力要高于另外2組,提示Isl1對BMSCs向心肌樣細胞分化起促進作用。

綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn),在乳鼠心肌原代細胞共培養(yǎng)的微環(huán)境中,Isl1具有提高BMSCs向心肌細胞分化的能力。這一結果為提高干細胞定向分化效率探索了新的途徑,亦使干細胞治療走向臨床又向前邁進了一步。

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