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轉(zhuǎn)化生長因子β1降低大鼠自發(fā)性癲癇發(fā)作并抑制膠質(zhì)細胞活化*

2012-09-14 06:46:50韓遠遠劉益民
中國病理生理雜志 2012年12期
關(guān)鍵詞:癲癇實驗

韓遠遠, 劉益民, 王 玉

(安徽醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,安徽合肥230022)

癲癇是一種以自發(fā)性發(fā)作為主要特征的常見神經(jīng)系統(tǒng)疾病,大約影響0.5% ~2%的人群。顳葉癲癇(temporal lobe epilepsy,TLE)是人類最常見的癲癇類型,TLE的發(fā)生進程通常包括3個階段:由最初的腦損傷事件(如腦缺血,感染,腫瘤,創(chuàng)傷性腦損傷等)引起(急性期),進而促使腦細胞、組織和結(jié)構(gòu)的改變(沉默期),最終引起促癲癇環(huán)路重建導(dǎo)致自發(fā)性反復(fù)性驚厥的發(fā)生(慢性期)[1]。目前最常用的TLE動物模型是通過系統(tǒng)注射匹羅卡品(pilocarpine,Pilo)引起癲癇持續(xù)狀態(tài),進而引發(fā)一系列促癲癇事件的改變,最終引起慢性自發(fā)性癲癇的發(fā)作[2]。

轉(zhuǎn)化生長因子β1(transforming growth factor beta 1,TGF-β1)作為多效性的因子,在缺血性腦損傷中已被證實具有控制細胞的生長、分化、轉(zhuǎn)移,以及抗氧化、調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)和阻止細胞凋亡的作用,對興奮毒性、化學(xué)毒性、缺氧等引起的神經(jīng)元損傷具有直接保護功效[3-5]。作為內(nèi)源性免疫細胞,小膠質(zhì)細胞和星形膠質(zhì)細胞對腦新陳代謝、細胞外離子的動態(tài)平衡、血腦屏障的完整性、免疫功能及保護神經(jīng)元的正常功能起到至關(guān)重要的作用,同時膠質(zhì)細胞的激活為TLE的一個重要特征,激活的膠質(zhì)細胞會出現(xiàn)結(jié)構(gòu)和功能的改變,這些改變可以促進慢性期自發(fā)性驚厥的發(fā)生[6-7],所以激活的膠質(zhì)細胞既是癲癇的結(jié)果又是促進其原因。實驗研究表明左乙拉西坦的抗癲癇作用是通過增加TGF-β1的分泌,經(jīng)TGF-β1介導(dǎo)而實現(xiàn)的[8],但是其抗癲癇具體機制尚不確切,因此本實驗通過Pilo建立大鼠癲癇持續(xù)狀態(tài)模型,通過滴鼻給予TGF-β1,進一步驗證其抗癲癇作用,并探討TGF-β1可能的抗癲癇機制及神經(jīng)保護作用。

材料和方法

1 動物

選用成年健康雄性 SD大鼠,220~250 g,SPF級,由安徽醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。置于安靜、避光、自由攝取食水的室溫環(huán)境下飼養(yǎng)2周,以適應(yīng)環(huán)境。

2 主要試劑

重組人TGF-β1蛋白購自Peprotech,Pilo及東莨菪堿購自Sigma,免疫組化用小膠質(zhì)細胞標(biāo)志物——離子鈣結(jié)合接頭分子1(ionized calcium-binding adaptor molecule 1,Iba1)多克隆兔抗購自Wako,膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)抗體購自北京博奧森公司。

3 主要方法

3.1 動物模型的建立 腹腔注射(ip)東莨菪堿1mg/kg以拮抗外周膽堿反應(yīng),30 min后,大鼠給予新鮮配制的Pilo 320 mg/kg ip,每30 min追加30 mg/kg直至癲癇持續(xù)狀態(tài)出現(xiàn)。正常對照組給予同劑量的生理鹽水注射。注射15 min后觀察大鼠行為,癲癇發(fā)作嚴(yán)重程度根據(jù)Racine標(biāo)準(zhǔn)進行分級:Ⅰ級:面部陣攣,包括眨眼、動須、節(jié)奏性咀嚼等;Ⅱ級:Ⅰ級加節(jié)律性點頭;Ⅲ級:Ⅱ級加前肢陣攣;Ⅳ級:Ⅲ級加后肢站立;Ⅴ級:Ⅳ級加摔倒或伴全身性陣攣發(fā)作。本研究以發(fā)作達4或5級癇性發(fā)作為誘導(dǎo)癲癇持續(xù)狀態(tài)成功的標(biāo)準(zhǔn)。出現(xiàn)癲癇持續(xù)狀態(tài)的大鼠,自出現(xiàn)驚厥性癇性發(fā)作后50 min,給予10%水合氯醛350 mg/kg ip終止發(fā)作。

3.2 TGF-β1滴鼻及實驗分組 建立癲癇持續(xù)狀態(tài)模型前24 h對實驗組大鼠給予滴鼻處理。重組蛋白TGF-β1(Pepro-Tech)溶于無菌PBS液中,使其濃度達到50 mg/L。具體給藥方法如下:大鼠經(jīng)10%水合氯醛腹腔麻醉后,取仰臥位,并將頭頸背用4 cm×4 cm的紗布卷稍稍墊高以有利于藥物進入后鼻腔。應(yīng)用滴鼻器經(jīng)鼻均速滴入20 μL TGF-β1(每只1 μg),兩側(cè)鼻腔交替滴入,平均每只大鼠滴鼻用時約15 min。Pilo和正常對照組應(yīng)用相同方法給予等容量的PBS溶液。

3.2.1 實驗一 癲癇模型建立后7 d,通過12 h視頻觀察大鼠自發(fā)性癲癇活動,28 d時結(jié)束。

3.2.2 實驗二 膠質(zhì)細胞免疫組化大鼠分別于建模后1、7、14、28 d取材。尼氏染色14 d取材。每組每個時點大鼠數(shù)量為5只。

3.3 動物取材及固定 實驗動物分別在癲癇持續(xù)狀態(tài)后1 d、7 d、14 d及28 d行斷頭取腦。大鼠腹腔麻醉后固定,開胸經(jīng)升主動脈插管,0.9%氯化鈉注射液100 mL快速灌注以沖凈血液,后用4%多聚甲醛100 mL先快后慢灌注固定全身,后斷頭取腦,固定于4%多聚甲醛中48 h,流水沖洗標(biāo)本18 h后常規(guī)脫水、石蠟包埋。冠狀面連續(xù)切片以觀察海馬,厚6 μm,每隔5張取1張,共收集6張,進行染色處理。

3.4 免疫組化 切片常規(guī)脫蠟至水,按SABC法進行免疫組化染色,DAB顯色,蘇木精復(fù)染,脫水透明,中性樹膠封片后鏡檢。陰性對照實驗:免疫組化染色過程中以0.02 mol/L PBS代替GFAP和Iba1蛋白Ⅰ抗孵育切片。

3.5 尼氏染色甲苯胺藍法 切片入0.1%甲苯胺藍溶液2 min,保持40℃,蒸餾水沖洗后梯度乙醇分化,自然風(fēng)干,二甲苯透明,中性樹膠封片。

4 統(tǒng)計學(xué)處理

采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,實驗一部分兩組間比較采用兩組獨立樣本的t檢驗,實驗二部分多樣本間均數(shù)比較采用單因素方差(Oneway ANOVA)分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié) 果

1 TGF-β1具有明顯的抗癲癇作用

正常對照(control)組大鼠無癲癇發(fā)作,Pilo組大鼠癲癇持續(xù)狀態(tài)后第9 d出現(xiàn)自發(fā)性癲癇發(fā)作,TGF-β1治療組大鼠第12 d出現(xiàn),TGF-β1治療組大鼠癲癇發(fā)作次數(shù)、等級分?jǐn)?shù)及持續(xù)時間均較Pilo組有明顯減少,見表1。

表1 自發(fā)性癲癇發(fā)作的平均頻率、程度及持續(xù)時間Table 1.Average frequency,severity and duration of spontaneous seizures(±s.n=5)

表1 自發(fā)性癲癇發(fā)作的平均頻率、程度及持續(xù)時間Table 1.Average frequency,severity and duration of spontaneous seizures(±s.n=5)

*P <0.05,**P <0.01 vs Pilo group.

Group Frequency(d-1) Seizure score Seizure duration(s)Pilo 6.37 ±0.44 3.21 ±0.14 53.20 ±10.03 TGF-β1+Pilo 2.32 ±0.66** 1.90 ±0.21* 37.57 ±9.20*

2 TGF-β1抑制癲癇持續(xù)狀態(tài)后星形膠質(zhì)細胞的激活

在正常組大鼠海馬區(qū)星形膠質(zhì)細胞有基礎(chǔ)表達,數(shù)量較少,形態(tài)學(xué)表現(xiàn)為胞體較薄,周圍突起較少,為未活化的星形膠質(zhì)細胞。癲癇持續(xù)狀態(tài)后GFAP陽性細胞數(shù)量增加,1 d與正常對照組相比未見明顯差異,7 d左右數(shù)量達到高峰,14 d后逐漸減少,28 d時仍處相對較高水平。TGF-β1治療組GFAP陽性細胞數(shù)量較Pilo組顯著降低,14 d左右降至正常水平。激活的星形膠質(zhì)細胞形態(tài)學(xué)表現(xiàn)為胞體肥大,突起增大增粗,并可能出現(xiàn)極化等,見表2、圖1。

表2 不同時點海馬CA3區(qū)GFAP陽性細胞數(shù)Table 2.The number of GFAP(+)cells in hippocampal CA3 region at different time points(±s.n=5)

表2 不同時點海馬CA3區(qū)GFAP陽性細胞數(shù)Table 2.The number of GFAP(+)cells in hippocampal CA3 region at different time points(±s.n=5)

*P <0.05 vs control group;#P <0.05 vs Pilo group.

Group 1 d 7 d 14 d 28 d Control 25.35 ±10.38 27.62 ±9.89 24.57 ±13.4526.94 ±5.72 Pilo 37.38 ±7.64 117.52 ±23.01* 84.48 ±18.24* 49.67 ±9.79*TGF-β1+pilo 33.82 ±12.61 103.89 ±19.45* 49.20 ±15.91#32.77 ±13.19

Figure 1.The expression of GFAP 14 d after status epilepticus.Bar:100 μm.A:control;B:Pilo;C:TGF-β1+Pilo.圖1 癲癇持續(xù)狀態(tài)14 d后海馬CA3區(qū)GFAP的表達

3 TGF-β1抑制小膠質(zhì)細胞的活化數(shù)目

與星形膠質(zhì)細胞相似,正常組Iba1(+)數(shù)量較少,形態(tài)學(xué)表現(xiàn)為胞體較薄,周圍有大量樹枝狀突起,為未活化小膠質(zhì)細胞。在Pilo組Iba1(+)數(shù)量迅速增加,7 d達到高峰,14 d后逐漸下降,28 d降至正常水平。TGF-β1治療組Iba1陽性細胞數(shù)變化趨勢與GFAP相似,14 d左右較Pilo組有顯著降低,基本降至正常水平。活化的小膠質(zhì)細胞表現(xiàn)為胞體肥大變圓,周圍突起減少,變短增粗,見表3、圖2。

表3 不同時點海馬CA3區(qū)Iba1陽性細胞數(shù)Table 3.The number of Iba1(+)cells in hippocampal CA3 region at different time points(±s.n=5)

表3 不同時點海馬CA3區(qū)Iba1陽性細胞數(shù)Table 3.The number of Iba1(+)cells in hippocampal CA3 region at different time points(±s.n=5)

*P <0.05 vs control group;#P <0.05 vs Pilo group.

Group 1 d 7 d 14 d 28 d Control 19.38 ±6.52 21.22 ±8.02 20.29 ±4.71 17.61 ±7.44 Pilo 48.45 ±8.38* 112.65 ±11.81* 104.11 ±9.36* 25.98 ±5.17 TGF-β1+pilo 43.36 ±7.57* 97.17 ±9.45* 32.28 ±8.31#21.49 ±6.72

Figure 2.The expression of Iba1 14 d after status epilepticus.Bar:100 μm.A:control;B:Pilo;C:TGF-β1+Pilo.圖2 癲癇持續(xù)狀態(tài)14 d后海馬CA3區(qū)Iba1的表達

4 TGF-β1減少神經(jīng)元死亡

正常組大鼠CA3區(qū)見大量致密的椎體細胞,排列整齊,形態(tài)完整,胞漿內(nèi)尼氏小體豐富;癲癇持續(xù)狀態(tài)14 d后Pilo組細胞形態(tài)不完整,細胞腫脹,破裂,輪廓模糊,排列紊亂,細胞間距加大,胞漿內(nèi)尼氏小體減少;TGF-β1治療組存活神經(jīng)元較Pilo組明顯增多,見圖3。正常組CA3區(qū)神經(jīng)元數(shù)目為104.56 ±12.33;,Pilo組為39.47 ±10.89;TGF-β1治療組為87.62±8.57;TGF-β1治療組與 Pilo組相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.01)。

Figure 3.Nissl-stained sections of hippocampal CA3 region 14 d after status epilepticus.Bar:100 μm.A:control;B:Pilo;C:TGF-β1+Pilo.圖3 癲癇持續(xù)狀態(tài)14 d后海馬CA3區(qū)Nissl染色結(jié)果

討 論

TGF-β1是多功能的轉(zhuǎn)化生長因子,其生物作用依據(jù)細胞類型和環(huán)境而發(fā)生變化。它在免疫調(diào)節(jié)、細胞生長分化、細胞外基質(zhì)的合成及貯存、胚胎發(fā)育、創(chuàng)傷修復(fù)、骨骼重建和中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育等方面發(fā)揮著十分重要的作用。目前大量實驗表明TGF-β1可以通過多種途徑促進缺血缺氧性腦損傷所引起的神經(jīng)細胞的康復(fù),并在阿爾茨海默病、帕金森病、AIDS腦病等多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病中發(fā)揮神經(jīng)保護作用[9-10]。但是外源性TGF-β1相對分子質(zhì)量較大,不易通過血腦屏障到達中樞。經(jīng)鼻給藥作為一種無創(chuàng)的,非侵入性的,相對比較方便的途徑可使藥物分子通過嗅部黏膜沿包繞在嗅神經(jīng)束周圍的連接組織或嗅神經(jīng)元軸突到達腦脊液或腦部,因而可繞過血腦屏障進入中樞神經(jīng)系統(tǒng),發(fā)揮治療作用。實驗表明經(jīng)鼻TGF-β1可以在迅速進入嗅球、紋狀體、丘腦和大腦皮層等腦區(qū)[11]。

星形膠質(zhì)細胞對腦細胞外環(huán)境的控制中起關(guān)鍵作用,具有限制胞外鉀離子和興奮性氨基酸谷氨酸鹽堆積的作用。活化的星形膠質(zhì)細胞在其分子、細胞結(jié)構(gòu)、形態(tài)學(xué)及功能學(xué)方面會發(fā)生改變,包括:(1)降低了鉀離子通道(Kir4.1)和水通道蛋白4(aquaporin 4,AQP4)的表達,損害了膠質(zhì)細胞對腦組織內(nèi)鉀離子的緩沖能力,促使神經(jīng)元興奮閾值降低,增加同步化放電和突觸的可塑性,最終使神經(jīng)元去極化,同時可激活N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)受體等;(2)使谷氨酸鹽的代謝受阻,膠質(zhì)細胞可表達谷氨酸鹽受體,并能促進谷氨酸鹽的吸收和代謝,活化的膠質(zhì)細胞對谷氨酸鹽清除能力降低,造成谷氨酸鹽蓄積可使細胞的興奮性增加。導(dǎo)致神經(jīng)元同步去極化放電及自發(fā)性癲癇發(fā)作;(3)降低縫隙連接,星形膠質(zhì)細胞通過彼此縫隙連接共同形成大的細胞網(wǎng)絡(luò)以促進對腦內(nèi)小分子蛋白的緩沖能力[12-14],活化的膠質(zhì)細胞對蛋白的緩沖能力降低。同時激活的星形膠質(zhì)細胞可增加血腦屏障的滲透性,促使血液中鉀離子滲透入腦組織,鉀離子的蓄積本身可以作為癲癇發(fā)作的一個誘因[13],所以星形膠質(zhì)細胞的激活可增加神經(jīng)元的興奮性,癲癇的易感性。因此抑制星形膠質(zhì)細胞的活化數(shù)量,可使神經(jīng)元的興奮性降低并可在一定程度上改善血腦屏障的通透性。

小膠質(zhì)細胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中固有的免疫源性細胞和免疫監(jiān)視細胞并在免疫炎癥反應(yīng)中起著重要作用,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)感染、腫瘤、外傷、中毒等情況下小膠質(zhì)細胞可快速激活,表現(xiàn)為阿米巴樣,吞噬死亡的細胞,并釋放生長因子促進組織恢復(fù)。但過量活化的小膠質(zhì)細胞可分泌和釋放如基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)、氧自由基、NO、IL-1β、TNF-α等炎癥因子和神經(jīng)毒性因子,并激活經(jīng)典和旁路補體途徑,可導(dǎo)致腦氧化應(yīng)激,神經(jīng)毒性,神經(jīng)元損傷、破壞和死亡,同時激活的小膠質(zhì)細胞可促進星形膠質(zhì)細胞的活化[15]。目前大量實驗表明炎性因子可直接誘導(dǎo)癲癇的發(fā)作[16],因此活化的小膠質(zhì)細胞可直接損害腦神經(jīng)細胞并可間接促進神經(jīng)元的興奮性。本實驗觀察到經(jīng)鼻滴入TGF-β1可抑制小膠質(zhì)細胞的過量活化,14 d達到高峰,同時癲癇持續(xù)狀態(tài)后14 d時尼氏染色顯示存活神經(jīng)元較Pilo組明顯增加,因此我們認(rèn)為與TGF-β1抑制小膠質(zhì)細胞的過度活化而發(fā)揮神經(jīng)保護作用有關(guān)。同樣在缺血缺氧性腦損傷的基礎(chǔ)實驗中亦觀察到TGF-β1可顯著抑制小膠質(zhì)細胞的活化[17]。因此TGF-β1通過抑制小膠質(zhì)細胞的活化可以改善腦組織炎癥因子和神經(jīng)毒性因子的表達發(fā)揮神經(jīng)保護作用。

綜上所述,本實驗觀察到經(jīng)鼻滴入TGF-β1有效降低了自發(fā)性癲癇發(fā)作,抑制膠質(zhì)細胞活化和阻止了癲癇所引起的神經(jīng)元死亡,同時我們認(rèn)為TGF-β1抑制慢性期自發(fā)性癲癇的發(fā)作和發(fā)揮神經(jīng)保護作用是通過抑制膠質(zhì)細胞活化實現(xiàn)的。

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