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豬圓環病毒2型Cap蛋白ELISA檢測方法的建立及初步應用

2012-11-29 08:08:16廖園園漆世華李晶梅謝紅玲溫文生吳玉石
中國獸藥雜志 2012年6期
關鍵詞:檢測方法

廖園園,朱 薇,李 建,王 威,秦 偉,漆世華,李晶梅,謝紅玲,溫文生,吳玉石

(武漢中博生物股份有限公司,武漢 430070)

豬圓環病毒2型(Porcine circovirus type 2,PCV2)是引發斷奶仔豬多系統衰竭綜合征(Postweaning multisystemic wasting syndrome,PMWS)的主要病原,該病主要以患畜生長緩慢、進行性消瘦和多系統病理損傷為特征。除了引發PMWS外,PCV2還與豬皮炎腎炎綜合征(PDNS)、豬增生性壞死性肺炎(PNP)、仔豬先天性震顫(CT)、母豬繁殖障礙等疾病相關[1]。Cap蛋白是該病毒的主要結構蛋白,含有4個抗原表位,具有較好的免疫原性和抗原性,是檢測該病毒特異性抗體的理想靶抗原表位,也是現在基因工程疫苗研究的熱點蛋白。為建立一種敏感、特異、快速的豬圓環病毒2型Cap蛋白檢測方法,使PCV2基因工程苗的質控更快更準更方便,本研究利用雙抗體夾心法建立了一種檢測PCV2 Cap蛋白的方法,并初步應用于豬圓環病毒2型亞單位基因工程疫苗的質量檢測。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 主要試劑和儀器 偽狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)細胞毒樣品、細小病毒PPV樣品、繁殖呼吸道綜合征病毒PRRSV樣品、豬瘟病毒CSFV樣品和PCV1樣品由武漢中博生物股份有限公司實驗室保存;HRP標記的羊抗小鼠IgG二抗、HRP標記的羊抗兔IgG二抗及TMB購自Sigma公司;牛血清白蛋白(BSA)購自Ameresco公司;BCA蛋白定量試劑盒購自GE公司;酶標板購自深圳金燦華公司;其他化學試劑主要來自國藥集團化學試劑公司(分析純)。其他主要設備有包被機、洗板機、酶標儀、恒溫孵育箱。

1.1.2 PCV2 Cap蛋白的制備 提取豬圓環病毒2型(PCV2)基因組,通過設計特異性引物擴增ORF2基因片段,利用 Bac-to-Bac系統構建能表達PCV2-ORF2基因(Cap蛋白)的重組桿狀病毒,將該重組桿狀病毒感染Sf9細胞,收獲表達的Cap蛋白,通過CsCl密度梯度離心純化后作為檢測的抗原標準品。

1.1.3 PCV2多抗和單抗的制備 PCV2 Cap蛋白常規免疫健康家兔,待兔血清中 PCV2抗體用ELISA方法檢測效價達1∶1000以上,即可采血分離血清。分離的血清通過辛酸-硫酸銨沉淀法進行純化,獲得所需抗PCV2抗原純化多抗。

應用雜交瘤技術制備單抗,PCV2 Cap蛋白常規免疫BALB/c小鼠,得到抗原刺激的脾臟細胞,將脾臟細胞和小鼠的骨髓瘤細胞系進行融合,利用HAT選擇性培養基篩選雜交瘤細胞,用ELISA方法和IFA(間接免疫熒光)方法鑒定抗PCV2的雜交瘤細胞株,進行三次亞克隆化[2]后得到分泌高特異性的單克隆抗體的細胞株,通過小鼠腹水生產抗PCV2的單克隆抗體,通過辛酸-硫酸銨沉淀法將腹水進行純化,獲得的即為所需抗PCV2單克隆抗體。

1.2 ELISA方法的建立

1.2.1 最佳抗體包被濃度、單抗使用濃度和二抗使用濃度的確立 按照方陣滴定方法優化ELISA反應條件。以pH 9.6碳酸鹽緩沖液將純化的抗PCV2- Cap 多抗稀釋至終濃度為 0.5、1、2、4 μg/mL,100 μL/孔包板,4 ℃ 過夜。PBST 洗板后,加1%BSA封閉2 h。抗原標準品用PBS稀釋,濃度為 3.2、1.6、0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0 μg/mL,100 μL/孔,同時設陰性對照,37 ℃,1 h。PBST 洗板后,分別加入終濃度為1、2、4 μg/mL 的抗 PCV2 -Cap單抗,100 μL/孔,37 ℃,1 h。PBST 洗板后,分別加入1∶20000、1∶40000、1∶80000稀釋的二抗,100 μL/孔,37 ℃,1 h。PBST 洗板后加入 TMB 底物溶液,100 μL/孔,37 ℃ 10 min。加入1 mol/L 的H2SO450 μL/孔,終止反應,于酶標儀 450 nm 讀數,每個稀釋度重復一次,取其平均值。應用軟件CurveExper進行結果分析[3]。

1.2.2 封閉液的確定 以最佳多抗濃度包被酶標板,洗滌,分別用含 0.5%BSA、1%BSA、1.5%BSA、2%BSA、5%脫脂乳、2%明膠[4]及1%BSA+0.5%酪蛋白的 PBST,200 μL/孔,37 ℃封閉2 h,抗原標準品按1.2.1項方法稀釋,進行ELISA測定,其他步驟同1.2.1項。比較各組陰、陽性樣品的OD值和P/N值以選擇合適的封閉液。

1.2.3 封閉時間的選擇 以最佳多抗濃度包被酶標板,洗滌,用確定的封閉液200 μL/孔,分成3組,分別為37℃ 封閉1 h,37℃ 2 h,37℃ 3 h,4℃24 h。封閉后,抗原標準品按1.2.1項方法稀釋,進行ELISA測定,其他步驟同1.2.1項。比較各組陰、陽性樣品的OD值和P/N值,以選擇合適的封閉時間。

1.2.4 單抗反應時間的確定 酶標板按照確定的條件包被和封閉后,抗原標準品按1.2.1項方法稀釋,進行ELISA測定,單抗反應時間分別為30、45、60、75 min,其他步驟同 1.2.1 項。比較各組陰、陽性樣品的OD值和P/N值,以選擇最佳單抗反應時間。

1.2.5 酶標二抗反應時間的確定 酶標板按照確定的條件包被和封閉后,抗原標準品按1.2.1項方法稀釋,進行ELISA測定,酶標二抗反應時間分別為30、45、60、75 min,其他步驟同 1.2.4 項。比較各組陰、陽性樣品的OD值和P/N值,以選擇最佳酶標二抗反應時間。

1.2.6 特異性試驗 分別取Sf9陰性細胞裂解樣品、BSA、PRV細胞毒樣品、PPV樣品、PRRSV樣品、CSFV樣品、PCV1樣品、PCV2基因工程苗樣品,1∶10和1∶100稀釋后進行ELISA測定。同時設立標準品和陰性對照。

1.2.7 重復性試驗 取3個不同批次的試劑盒,分別檢測PCV2基因工程苗樣品和陰性細胞樣品,每份樣品重復檢測4次,計算批內及批間變異系數。

1.2.8 比較試驗 分別應用本方法和蛋白電泳及BandScan軟件進行蛋白含量分析,兩種方法對三批PCV2基因工程疫苗進行檢測,比較結果。

2 結果

2.1 最佳抗體包被濃度、單抗使用濃度和二抗使用濃度的確立 方陣試驗如表1所示,相關系數(γ)值越高、標準誤(S)值越低的組別,包被條件和單抗及二抗濃度的條件越佳。確定多抗最佳包被濃度為1 μg/mL,單抗最佳濃度為2 μg/mL,二抗最 佳稀釋度為1∶40000。

表1 PCV2-Cap ELISA方陣滴定實驗結果分析

2.2 封閉液的確定 結果見表2。1%BSA的P/N值最高,封閉效果最好。

表2 封閉液的確定

2.3 最佳封閉時間的確定 結果見表3。用1%BSA封閉2 h的效果最好。

表3 封閉時間的確定

2.4 最佳單抗反應時間的確定 結果見表4。當反應時間為60 min的時候,效果最佳,P/N值最高。

表4 單抗反應時間的確定

2.5 最佳二抗反應時間的確定 結果見表5。當二抗反應時間為60 min的時候,效果最好。

表5 二抗反應時間的確定

2.6 特異性試驗 用該方法分別檢測Sf9陰性細胞裂解樣品、BSA、PRV細胞毒樣品、PPV樣品、PRRSV樣品、CSFV樣品和PCV1樣品,結果均為陰性;檢測PCV基因工程苗樣品為陽性,最低檢測量可達5 ng。標明該方法具有很好的特異性和靈敏度。

2.7 重復性試驗 該方法制備的3批試劑盒檢測PCV2基因工程苗樣品和陰性細胞樣品的結果為:批內變異系數2% ~4%,批間變異系數3% ~6%,均小于10%,表明該方法有較好的重復性。

2.8 比較試驗 通過對三批PCV2基因工程疫苗樣品檢測發現:雙抗體夾心法檢測結果分別為60、87、102 μg/mL。對應蛋白電泳及BandScan軟件分析的 Cap 蛋白含量分別為 66、92、110 μg/mL,實驗結果表明這兩種方法檢測結果差異不大。

3 討論

目前,國內外采用的PCV2檢測技術主要有病毒分離培養、間接免疫熒光、免疫酶單層實驗(IMPA)、原位雜交(ISH)、聚合酶鏈式反應(PCR)等。其中PCR熒光定量檢測方法靈敏度高,是現在實驗室檢測PCV2病毒的首選方法。但是此方法使用的儀器昂貴,對操作人員要求較高,不適合推廣普及到基層單位和豬場。本研究利用雙抗體夾心法建立了一種檢測PCV2 Cap蛋白的方法,并初步應用于豬圓環病毒2型亞單位基因工程疫苗的質量檢測,使用效果好。

本方法建立的關鍵是標準品的制備,PCV基因組由一條共價閉合環狀單股DNA構成,包含兩個大的開放閱讀框架ORF1和ORF2,分別編碼病毒蛋白復制酶(Rep)和病毒衣殼蛋白(Cap)。Cap蛋白是病毒的主要結構蛋白,是檢測該病毒特異性抗體的理想靶抗原。由于該病毒在體外培養不產生細胞病變,病毒繁殖能力低,難于獲得高產量的病毒抗原用于診斷目的。本方法中的Cap蛋白來源于昆蟲桿狀病毒表達系統,本系統表達外源蛋白產量高、免疫活性好、產物易純化、反應背景低,在多種動物疫病診斷中得到應用[5]。同時還建立了檢測PCV2衣殼蛋白抗體水平的方法,用以反映PCV2的抗體水平,對豬群PCV2抗體水平進行監測,以確切了解豬體免疫水平或感染狀況。這兩種方法的建立,為有效預防和控制PCV2的侵襲和傳播,避免因該病發生而引起重大經濟損失具有重要的意義。

本研究初步建立了一種PCV2-Cap抗原檢測方法,后續工作還需要完成試劑盒的組裝以及試劑盒敏感性、特異性和穩定性的研究并加強試劑盒的優化。

[1] 龔乾龍,王 歡,鄧治邦.檢測豬圓環病毒方法的研究進展[J].上海畜牧獸醫通訊,2010,(6):17 -19.

[2] Ed Harlow,David Lane.Antibodies:A Laboratory manual[M].Publisher:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1988:139 -240.

[3] 王 伶,楊人強,游志剛,等.巧用CurveExpert軟件分析ELISA標準曲線擬合方程及數據分析[J].實驗與檢驗醫學,2008,26(4):412-428.

[4] 唐秋艷,王云龍,陳興業.免疫診斷試劑實用技術[M].北京:海洋出版社,2009.

[5] 劉長明,陸月華,張超范,等.豬圓環病毒2型重組Cap蛋白在昆蟲桿狀病毒中的表達[J].中國預防獸醫學報,2005,27(6):479-482.

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