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鴨坦布蘇病毒病的研究進展

2012-12-09 07:44:03胡奇林孫敏華
養禽與禽病防治 2012年10期
關鍵詞:檢測方法

胡奇林 孫敏華

(廣東省農業科學院獸醫研究所,廣東省獸醫公共衛生公共實驗室 廣州 510640)

鴨坦布蘇病毒(Duck Tembusu Virus,DTMUV)病又稱“鴨黃病毒病”、“鴨出血性卵巢炎”或“鴨產蛋下降-死亡綜合征”等,是自2010年春季以來我國主要蛋鴨飼養區出現的一種新的禽傳染病。該病臨床上以蛋鴨采食量下降,產蛋量驟然減少,即5天內減蛋超過90%或者絕產為主要癥狀,以卵泡膜出血、充血,卵泡變形為主要病變,給我國水禽業造成了嚴重經濟損失。本文對該病的研究現狀作一綜述。

1 病原學

2010年曹貞貞等[1]從我國部分地區發病鴨群中分離到黃病毒YY5,認為可能是鴨坦布蘇病毒病的病原。2010年滕巧泱、顏丕熙等[2]對上海、浙江和江蘇發病鴨場進行病原分離也獲得了本病毒。2010年萬春和[3]等自表現產蛋驟降的病死種鴨中分離到有囊膜、直徑為30~50nm的病毒WR株。2010年Su等[4]從發病鴨臟器中分離出了一種新型黃病毒BYD,與坦布蘇病毒關系密切,證明是鴨坦布蘇病毒病病原。隨后,李玉峰等[5]、黃梅欣等[6]和孫敏華等[7-8]分別從山東蛋鴨、江蘇產蛋鵝和廣東產蛋鴨、肉鴨中分離到DTMUV。

DTMUV屬于黃病毒科(Flaviviridae)黃病毒屬。DTMUV顆粒呈球形,直徑約50nm,有囊膜,表面有纖突[1-4]。DTMUV對乙醚、氯仿及去氧膽酸鹽敏感。病毒不耐熱,50℃以上加熱60 min活性喪失。適宜pH范圍為6~9,pH<5或pH>10時感染性喪失[9]。DTMUV不能凝集雞、鴨、鵝、鴿、鼠、兔、豬和人的紅細胞[1,4-5]。

DTMUV經尿囊腔接種鴨胚3~5d后死亡,表現為絨毛尿囊膜增厚、水腫,胚體水腫、出血。DTMUV能在鴨胚、雞胚、鴨胚成纖維細胞及Vero細胞中增殖,主要在感染細胞的胞漿內復制[5,9]。DTMUV能在鴨胚成纖維細胞增殖,并產生細胞病變(CPE),表現為折光性增強,細胞變圓及融合,最終崩解死亡[9]。

DTMUV基因組是不分節段的單股正鏈RNA,含10990個核苷酸。基因組由5'端和3'端非編碼區(UTR)及一個開放閱讀框(ORF)組成,基因組順序為5'-UTR-C-prM/M-E-NS1-NS2A/2B-NS3-NS4A/4BNS5-UTR-3'。基因組ORF翻譯后合成一多聚蛋白前體,在宿主信號肽酶和病毒絲氨酸蛋白酶的催化下切割成為C、M和E 3個結構蛋白 (C為衣殼蛋白,M為膜蛋白,E為包膜蛋白)和7種非結構蛋白(NS1、NS2A、NS2B、NS3、NS4A、NS4B 和 NS5)[10]。

2 流行病學

2.1 易感動物

自然條件下,蛋鴨(紹興鴨、縉云麻鴨、山麻鴨、金定鴨、康貝爾鴨、臺灣白改鴨等)、肉種鴨(櫻桃谷鴨、北京鴨等)、野鴨種鴨、肉鴨、產蛋鵝及肉鵝均會發病,蛋雞也會發病,番鴨未見發病[1-2,6,11]。

2.2 發病日齡

產蛋鴨,主要發生于120~300日齡;主要見于210~280日齡;肉鴨主要見于10~40日齡,多在20日齡左右[4,5]。

2.3 發病率、致死率

蛋鴨發病率達90%~100%,死亡率小于10%,多數在5%以下;肉鴨發病率10%~30%,死亡率為10%~20%[4,5-6]。

2.4 病程

一般為 10~30d[4,5]。

2.5 傳播途徑

推測可能與蚊蟲有關,同時本病可以經鴨直接傳播[2]。該病毒能經糞便排毒,污染環境、飼料、飲水、器具及運輸工具等而造成傳播[7]。

2.6 傳播速度

一般在1周左右可以感染一個養殖小區或聚養區的所有鴨群。一旦某個鴨場發生該病,很快以該場為中心,快速擴散,幾天內可傳遍周邊區域,特別是在鴨棚密集區傳播更迅速,發病更嚴重[1,4]。

3 臨床癥狀

產蛋鴨發病后,主要表現采食量下降,產蛋量驟然減少,即5天內減蛋超過90%或者絕產,拉綠色糞便為主要癥狀,病程持續20~30d,隨后鴨群逐漸康復,產蛋率回升。肉鴨發病后,主要表現為發熱、食欲減退、搖頭和癱瘓等癥狀[1,4-5]。

4 病理變化

病死鴨病變主要在卵巢,初期可見部分卵泡充血和出血,中后期可見卵泡嚴重出血、變性和萎縮,嚴重時破裂,引發卵黃性腹膜炎,少部分鴨輸卵管內出現膠凍樣或干酪樣物。肝臟輕微腫大,有出血或瘀血,有些鴨表面有針尖狀白色點狀壞死。部分鴨脾臟腫大、小腸黏膜出血,野鴨病變基本同上[1,4-5]。

5 檢測技術

5.1 分子生物學方法

Su等[4]建立了針對DTMUV E基因的RT-PCR方法,擴增片斷為401bp。萬春和等[13]參照GenBank上登錄的黃病毒科黃病毒屬NS5基因片段序列設計引物,建立能檢測引起DTMUV的RT-PCR方法。該方法能使鴨坦布蘇病毒病毒擴增出1條約470 bp的特異性片段,最低可檢出20pg病毒核酸,具有較好的特異性、敏感性和準確性。顏丕熙等[14]建立了檢測鴨坦布蘇病毒的套式RT-PCR方法,該套式RT-PCR比常規RT-PCR敏感性高10倍。Wang等[15]建立了針對DTMUV E基因的RT-LAMP方法。該方法比常規RT-PCR方法敏感80倍,可檢測到2拷貝/μL病毒核酸。最近,Yan等[16]建立了針對E基因的TaqMan探針熒光定量RT-PCR,該方法比常規RT-PCR敏感100倍,最低可檢測到50個拷貝的病毒核酸。高緒慧等[17]利用RT-PCR方法擴增DTMUV的NS3基因406bp的特異性片段,回收并純化PCR產物,用地高辛標記,制備核酸探針試驗結果表明,該探針具有良好的特異性;該探針對鴨黃病毒的RNA最低檢出限量為100μg/L。對疑似黃病毒感染鴨的肝臟、肺臟、脾臟、輸卵管、卵泡膜和泄殖腔棉拭子進行檢測,以卵泡膜的檢出率最高。張帥等[18]設計了1對特異性引物,建立了DTMUV的一步法RT-PCR檢測方法。該方法具有特異、快速、敏感和準確等特點,可以檢出1.82個TCID50的病毒核酸,對2010年至2011年6月份前的106份產蛋下降鴨群臨床病料進行了檢測,結果顯示樣品陽性率為46.2%。

5.2 血清學方法

姬希文等[19]以純化的FX2010株作為包被抗原,建立了檢測DTMUV血清抗體的間接ELISA法,該方法具有較高的敏感性和特異性,可以用于該病的診斷和流行病學調查。

6 防治技術

6.1 預防

6.1.1 綜合防治措施 ①建立良好的生物安全體系。養殖場選址時遠離高速公路、屠宰場、活禽交易市場和養殖密集區;不要從疫區引進種禽和購買苗禽;實行全進全出飼養制度;搞好養殖場周圍的環境衛生,清除污水、垃圾和衛生死角,減少蚊子的孳生,做好驅蚊和滅蚊;病死禽和糞便統一無害化處理。②加強飼養管理,改善養殖環境。如降低飼養密度,冬春季節注意通風和保溫,保證鴨舍的溫度和濕度。杜絕雞、鴨和鵝混養。

6.1.2 疫苗 目前尚無有效防制DTMUV的商品化的疫苗。萬春和等[20]2011年報道,研制出鴨黃病毒油乳劑滅活疫苗,攻毒試驗結果表明,免疫實驗組蛋鴨和空白對照組蛋鴨平均產蛋率下降無差異,且觀察期內均未見發病死亡,觀察期滿撲殺后均無肉眼可見病變。而未免疫攻毒組蛋鴨減蛋明顯,4天內平均產蛋率下降為40.85%,比疫苗免疫組平均產蛋率低39.15%。

6.2 治療

發病后可以采取以下綜合治療措施,如在飲水中添加復合維生素,并通過飲水適當給予抗生素,以防止鴨群繼發感染細菌病。同時,應對各種用具與設備、運輸車輛及種蛋進行嚴格消毒,墊料與病死鴨應進行焚燒或生物處理。在發病流行期間,做好封棟、封場工作,做好飼養人員的生活安排,管理人員與生產人員必須隔離。

采集發病1周后鴨群血液,無菌操作分離血清,應用于發病鴨群,可緩解癥狀,提高食欲,加快鴨群產蛋性能恢復[21]。

[1]曹貞貞,張存,黃瑜,等.鴨出血性卵巢炎的初步研究[J].中國獸醫雜志,2010,46(12):3-6.

[2]滕巧泱,顏丕熙,張旭,等.一種新的黃病毒導致蛋鴨產蛋下降及死亡 [J].中國動物傳染病學報.2010,18(6):1-4.

[3]萬春和,施少華,程龍飛,等.一種引起種(蛋)鴨產蛋驟降新病毒的分離與初步鑒定[J].福建農業學報,2010,25(6):663-666.

[4]Su J L,Li S,Hu X D,et al.Duck Egg-Drop Syndrome Caused by BYD Virus,a New Tembusu-Related Flavivirus[J].PLoS One,2011,6(3):e18106.

[5]李玉峰,馬秀麗,于可響,等,一種從鴨新分離的黃病毒研究初報[J].畜牧獸醫學報,2011,42(6):885-891.

[6]黃梅欣,李銀,趙冬敏,等,新型鵝黃病毒JS804毒株的分離和鑒定[J].江蘇農業科學,2011,27(2):354-360.

[7]Li L L,An H J,Sun M H,et.al.Identification and genomic analysis of two duck-origin Tembusu virus strains in southern China[J].Virus Genes.2012 Aug;45(1):105-12.

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[9]廖敏,牟小東,耿陽,等.鴨傳染性產蛋減少癥(暫定名)的病原分離初報 [J].中國動物傳染病學報,2011,19(1):22-26.

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[15]Wang Y L,Yuan X Y,Li Y F,et al.Rapid detection of newly isolated Tembusurelated Flavivirus by reversetranscription loopmediated isothermal amplification assay[J].Virol J.2011,8:553.

[16]Yan L P,Yan P X,Zhou J W,et al.Establishing a TaqMan-Based Real-Time PCR Assay for the rapid detection and quantification of the newly emerged duck tembusu virus[J].Virol J.2011,8:464.

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[19]姬希文,閆麗萍,顏丕熙,等.鴨坦布蘇病毒抗體間接ELISA檢測方法的建立 [J].中國預防獸醫學報,2011,33(8):630-634.

[20]萬春和,施少華,傅光華,等.鴨黃病毒油乳劑滅活疫苗研制及免疫效果測定.養禽與禽病防治,2011,10:20-22.

[21]沈志強.當前鴨新發流行病的研究與防控技術.中國家禽,2011,,3(14):39-40

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