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H5N1禽流感病毒核酸多重RT—PCR檢測方法的建立

2013-01-01 00:00:00廖秀云等
湖北畜牧獸醫(yī) 2013年4期

摘要:根據(jù)禽流感病毒的基質(zhì)蛋白(M)基因序列和H5亞型禽流感病毒血凝素(HA)基因、神經(jīng)氨酸酶(NA)基因設(shè)計并合成了三對特異性引物,用于建立H5N1禽流感病毒核酸的RT-PCR分型鑒定方法。試驗證明,建立的多重PCR方法可以將H5N1與H6N2、H9N2有效區(qū)分。該方法具有較好的靈敏度和特異性,適合在基層動物防疫和監(jiān)督部門進行H5N1禽流感病毒核酸的檢測。

關(guān)鍵詞:禽流感病毒;H5N1;多重RT-PCR;檢測

中圖分類號:S854.43 文獻標(biāo)識碼:A 文章編號:1007-273X(2013)04-0005-03

高致病性禽流感是一種嚴重危害養(yǎng)禽業(yè)發(fā)展的烈性傳染病,被OIE列為必須通報的傳染病[1]。禽流感病毒(Avian influenza virus,AIV)屬于正粘病毒科A型流感病毒屬,AIV除了可感染禽類外,部分亞型還可感染人、豬、馬等。AIV基因組由包括基質(zhì)蛋白(M)基因、血凝素(HA)基因和神經(jīng)氨酸酶(NA)基因在內(nèi)的8個負鏈單股RNA片斷組成,其中M基因組序列高度保守,HA基因組變異性最強,NA基因組變異次之。HA基因和NA基因某些位點的變異可導(dǎo)致不同的HA亞型和NA亞型[1],目前發(fā)現(xiàn)AIV有16個HA亞型和10個NA亞型,其中H5、H7亞型常表現(xiàn)為高致病性,除了給養(yǎng)禽業(yè)帶來嚴重經(jīng)濟損失外[2],還可感染人,甚至導(dǎo)致死亡[3]。目前,病毒分離、血清學(xué)試驗仍是診斷AI和對AIV進行定型普遍采用的方法,但病毒分離不僅操作繁瑣、復(fù)雜和耗時,難以對AI進行快速診斷,還存在潛在散毒的危險。PCR方法是一種基因體外擴增技術(shù),可以在數(shù)小時內(nèi)對某片斷基因擴大數(shù)百萬倍。該技術(shù)具有特異性強、敏感性高、檢測快速等特點,已廣泛應(yīng)用于生物學(xué)、醫(yī)學(xué)、獸醫(yī)學(xué)的各個領(lǐng)域。多重分型PCR是一種特殊PCR形式,其最突出的特點是一次反應(yīng)可以達到既分型又能夠鑒定亞型的目的,在A、B、C三種流感及其他病源混合感染的鑒別診斷上具有獨特優(yōu)勢和很高的實用價值[4,5]。根據(jù)RT-PCR技術(shù)的原理,研究建立了鑒定H5、N1、M1的多重RT-PCR分型技術(shù)。

1 材料與方法

1.1 試驗用材料

AIV H5N1抗原,購自哈爾濱維科生物技術(shù)開發(fā)公司;AIV H6N2、H9N2病毒以及新城疫病毒Lasota疫苗株(NDV)、雞減蛋綜合征病毒(EDSV)和傳染性支氣管炎病毒(IBV),本室留存。

1.2 生化試劑

Ex-Taq E、dNTP (25 mol/L,內(nèi)含Mg2+)、RNA酶抑制劑、反轉(zhuǎn)錄酶AMV、10×PCR buffer以及 DNA Marker DL2000 均購自寶生物工程(大連)有限公司;RNA提取液購自科登生物工程有限公司;0.1% DEPC水由本室自制;二甲基亞砜購自上海生工生物工程有限公司。

1.3 引物設(shè)計及合成

參考基因庫中禽流感病毒M基因、HA基因和NA基因序列,經(jīng)Clustalx序列軟件比對后,選擇在保守區(qū)域用Primer Primer5.0軟件設(shè)計了3對引物(表1)上述引物均由上海生工生物工程有限公司合成。

1.4 病毒RNA的提取

(1)1.5 mL離心管中加入120 μL RNA提取液和120 μL樣品,混勻,室溫放置5 min。

(2)加入120 μL -20℃預(yù)冷的氯仿,混勻,室溫放置3 min。

(3)12 000 r/min, 4 ℃離心5 min,取上清120 μL于另一離心管中,加120 μL -20℃預(yù)冷異丙醇,室溫放置5 min。

(4)12 000 r/min, 4 ℃離心10 min,棄上清,加入600 μL -20 ℃預(yù)冷75%乙醇,上下顛倒,12 000 r/min, 4 ℃離心5 min,棄上清。室溫放置約3 min近干燥。

(5)加20 μL 0.1% DEPC處理過的水溶解沉淀RNA,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.5多重RT-PCR

采用總體積為50 μL的多重PCR反應(yīng)體系,即10×PCR buffer 5 μL,2.5 mmol/L dNTP混合液5 μL,40 U/μL的Rnase Inhibitor 1 μL,5 U/μL的Taq E 1 μL,反轉(zhuǎn)錄酶(AMV)1 μL,二甲基亞砜3 μL,10 pM/μL的 M1、N1、H5基因的上下游引物各0.5 μL,提取的病毒RNA模板1 μL,最后加0.1% DEPC處理過的水補足至50 μL。振蕩離心混勻后,在PCR儀上設(shè)定程序進行擴增,通過對反轉(zhuǎn)錄條件及多重PCR變性、退火、延伸的溫度和時間以及循環(huán)次數(shù)等的優(yōu)化,最終確定其反應(yīng)參數(shù)為50 ℃反轉(zhuǎn)錄30 min,94 ℃預(yù)變性2 min后,進入94 ℃變性30 s,50 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,共循環(huán)35次,然后72 ℃延伸8 min,于12 ℃結(jié)束多重PCR擴增。

1.6 PCR產(chǎn)物分析

取7 μL多重PCR產(chǎn)物與2 μL Loading Buffer上樣緩沖液混合,在1.5%瓊脂糖凝膠上以100 V電壓進行電泳28 min,然后置數(shù)碼凝膠系統(tǒng)觀察拍照,分析記錄結(jié)果。

回收、純化229、380、878 bp的cDNA擴增片段,送上海生工生物工程有限公司進行測序,并用DNAStar基因分析軟件分析測序結(jié)果。

1.7 H5N1多重RT-PCR 敏感性試驗

用建立的多重RT-PCR 反應(yīng)體系對10倍系列稀釋的禽流感H5N1抗原進行檢測,檢驗該體系對各稀釋度抗原模板的敏感度。

1.8 委托樣本的檢測

用建立的多重RT-PCR 反應(yīng)體系對5份已知AIV H9樣本、1份已知AIV H6樣本和360份禽咽肛拭子盲樣進行檢測,與出口檢疫正式采用的熒光RT-PCR檢測方法比較。

2 結(jié)果

2.1 多重RT-PCR特異性試驗

經(jīng)多重RT-PCR擴增,其產(chǎn)物與DNA分子量標(biāo)準比較,顯示H5N1抗原擴增出380、878、229 bp3條帶,而H6N2、H9N2病毒僅擴增出M1cDNA1條帶,NDV、IBV、EDSV則無條帶呈陰性,與理論預(yù)期值一致(圖1)。

2.2H5N1多重RT-PCR敏感性試驗

對禽流感H5抗原做HA試驗,病毒滴度為1:256。抗原分別做10倍系列稀釋,10-1、10-2、10-3倍抗原稀釋液多重RT-PCR檢測結(jié)果陽性;抗原做10-4及以上倍數(shù)稀釋,多重RT-PCR檢測結(jié)果陰性。敏感度試驗表明,多重RT-PCR 對抗原的最低檢測稀釋度為10-3,是一種較為靈敏的檢測方法(圖2)。

2.3 委托樣本的檢測

5份已知AIV H9樣本、1份已知AIV H6樣本檢測結(jié)果顯示,僅擴增出229 bp M1cDNA1條帶,360份禽咽肛拭子樣本則無條帶呈陰性,與熒光RT-PCR 方法檢測結(jié)果一致,符合率達100%,說明該多重RT-PCR方法可以用于基層動物防疫和監(jiān)督部門的檢測。

3 討論

AIV H5亞型不僅感染家禽,引起大批死亡,造成嚴重的經(jīng)濟損失,還可感染其他動物和人,有重要的公共衛(wèi)生意義。傳統(tǒng)的病毒分離和血清學(xué)試驗無法對流行的AIV亞型進行快速檢測鑒別。本試驗根據(jù)AIV 基因易變異的特性及多重分型PCR引物設(shè)計原則,參考基因庫中AIV HA基因、NA基因和M基因序列,分別針對H5、N1和M1基因設(shè)計了3對特異性引物,其中M1(S,A)是A型流感的通用引物。而H5、N1為分別針對H5、N1亞型的特異性引物,能夠分別特異性地檢測相對應(yīng)的亞型。利用這3對引物,通過對多重RT-PCR擴增條件的優(yōu)化,建立了快速檢測鑒定AIV H5亞型的多重RT-PCR分型技術(shù)。

該多重RT-PCR分型方法檢測結(jié)果顯示,AIV H5N1在380、878、229 bp位置同時出現(xiàn)3條cDNA擴增帶,而H6N2、H9N2病毒僅擴增出M1 cDNA 1條帶,傳染性支氣管炎病毒、新城疫Lasota疫苗株(NDV)和減蛋綜合征病毒則呈陰性。多重RT-PCR 敏感性試驗結(jié)果表明,H5N1抗原最低檢測稀釋度為10-3。H5亞型特異性試驗結(jié)果表明,僅H5呈陽性,其他H6、H9亞型和NDV、IBV、EDSV均呈陰性。對所擴增片段進行回收、純化并測序,其測序結(jié)果經(jīng)DNAStar基因分析軟件分析,這些片段分別與AIV HA基因、NA基因和M基因有著高度同源性,提示這些擴增基因的序列與原參考序列的基因來源一致,即分別來源于AIV的H5亞型HA基因、NA基因和M基因,表明該多重RT-PCR分型方法具有高度特異性。

同時,該多重RT-PCR分型法不需要進行多次PCR擴增,在數(shù)小時內(nèi)就可完成對AIV H5亞型的快速檢測鑒別,能夠在分型同時一步鑒定到亞型,達到快速診斷和鑒別AIV的雙重目的,對及時有效控制AIV感染有重要意義,對AIV H5亞型感染制定有效的防制措施具有實用價值和指導(dǎo)意義。

參考文獻:

[1] SENNE D A, PANIGRAHY B, kAWAOKA Y, et al. Survey of the hemagglutinin(HA) cleavage site sequence of H5 and H7 avian influenza viruses: amino acid sequence at the HA cleavage site as a marker of pathogenicity potential[J]. Avian Dis, 1996, 40:425-437.

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[3] HIEN T T, LIEM NT, DUNG NT, et al. Avian influenza A(H5N1) in 10 patients in Vietnam[J]. NEngl JMed, 2004, 350:1179-1188.

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