999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

地木耳多糖的抗氧化活性

2013-01-28 10:32:22湯俊胡征宇
食品研究與開發 2013年9期

湯俊,胡征宇

(1.常熟理工學院生物與食品工程學院,江蘇常熟215500;2.中國科學院水生生物研究所,湖北武漢430072)

正常情況下,機體的抗氧化系統可以精確的調控自由基的產生和清除,使之處于動態平衡中,但很多因素,如輻射、污染以及機體健康狀態等都可以影響或打破這個平衡,使機體內的自由基過量積累而造成傷害,如引起脂質過氧化而改變生物膜結構及功能、損傷DNA、使蛋白質變性及酶活力喪失等,這些危害都直接或間接的導致了炎癥、衰老、心血管疾病及腫瘤的發生[1-2]。

研究證明,一些來源于高等植物或藻類的天然化合物,特別是天然多糖,具有優良的抗氧化活性[3-4],在預防心腦血管疾病、癌癥以及帕金森氏癥等神經退行性疾病方面起著非常重要的作用,因此尋找新的安全、有效、經濟的天然抗氧化劑成為人們關注的熱點[5-7]。

地木耳,學名為普通念珠藻(Nostoc commune),隸屬藍藻門念珠藻屬,是一種分布很廣的食用念珠藻。地木耳富含有多種人體所必需氨基酸、微量元素和維生素,而且蛋白質的含量高,具有很高的保健價值。本文采用體外清除超氧自由基、羥自由基、脂質自由基及對人胚腎細胞293 的超氧化歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)和谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)活性的影響等模型來評價其多糖的抗氧化活性,以期為地木耳的功用開發提供數據支持和理論參考。

1 材料與方法

1.1 多糖提取物的制備

地木耳藻體粉碎后用80%乙醇浸泡24 h,索氏提取器提取至浸出液無色。藻體懸于蒸餾水中,95 ℃水提3 h,收集上清液,濃縮后加乙醇得絮狀沉淀,離心收集并用乙醇和丙酮重復洗滌3 次,冷凍干燥,得多糖提取物。

1.2 清除超氧陰離子自由基

采用氮藍四唑還原法測定提取物對超氧自由基的清除作用。超氧自由基由還原性輔酶I/吩嗪硫酸甲酯體系產生[8]。反應體系:Tris-HCl 緩沖液(20 μmol/mL,pH 8.0)中,含有還原性輔酶I,吩嗪硫酸甲酯,氮藍四唑以及不同濃度的多糖提取物(2 μg/mL~40 μg/mL)。搖勻,室溫反應5 min,于560 nm 波長處測定吸光度值(A)并根據下列公式計算清除率。

清除率= [(A 對照-A 樣品)/A 對照]×100%

1.3 清除羥自由基活性測定

羥自由基由Fe3+/H2O2/脫氧核糖體系產生[9]。磷酸緩沖液(20 μmol/mL,pH 7.4)中,包含EDTA、FeCl3·6H2O、抗壞血酸、H2O2、脫氧核糖及不同濃度(6 μg/mL~30 μg/mL)的多糖溶液,37 ℃水浴1 h,加10%三氯乙酸及1%硫代巴比妥酸,沸水浴15 min,測定532 nm波長處吸光值,計算清除率。在不含EDTA 體系中,EDTA 由等體積的磷酸緩沖液代替[10]。

1.4 抑制蛋黃勻漿脂質過氧化活性

采用硫代巴比妥酸法測定[11]。以1.15%的氯化鉀稀釋成10%的蛋黃勻漿,現配現用。蛋黃勻漿與FeSO4(100 μmol/L),H2O(250 μmol/L)及不同濃度的提取物混勻,加蒸餾水調整體積至1 mL,37 ℃水浴1 h。然后加三氯乙酸(20%,pH 3.5)和硫代巴比妥酸(0.67%)各1.5 mL 并繼續水浴15 min。離心取上清液在532 nm處測定光吸收值,計算清除率。

1.5 人胚腎細胞293 抗氧化酶活力的測定

1.5.1 細胞存活率的測定

采用四甲基偶氮唑鹽(MTT)微量酶反應比色法測定細胞存活率[12]。人胚腎細胞293(HEK293)以4×104個/孔的密度接種于96 孔板,37 ℃,5%CO2培養箱培養24 h 后加入不同濃度(0.5 μg/mL~30 μg/mL)的多糖提取物。繼續培養24、48、72 h。在孵育的最后4 h,加入5 mg/mL 的MTT。孵育結束后,除去MTT 溶液,加入DMSO 以溶解形成的甲瓚顆粒,在570 nm 處測定光吸收值。

1.5.2 細胞SOD,CAT 和GPx 酶的制備及活力測定

將HEK293 細胞接種于細胞培養板。24 h 后,吸除培養液,加入含有不同濃度提取物(1、5、25 μg/mL)的新鮮培養基,繼續孵育24 h。細胞經胰酶消化、PBS 清洗,離心后用超聲波破碎,14 000 g 離心15 min 收集上清,采用試劑盒測定SOD,CAT 和GPx 的酶活力。

1.6 數據處理

數據用Origin 7.0 處理,數據表示為平均值±標準差,P<0.05 為差異顯著。

2 結果

2.1 清除超氧陰離子自由基

在輔酶I 和吩嗪硫酸甲酯體系產生的超氧陰離子自由基的清除實驗中,地木耳多糖提取物表現出顯著的清除超氧自由基的活性,并且隨濃度的升高清除作用增強見圖1。

圖1 地木耳及多糖提取物清除超氧陰離子自由基Fig.1 Superoxide radical scavenging effect of polysaccharide extracts from N.commune

由圖1 可知,在提取物濃度為6 μg/mL 處,清除作用有非常顯著的上升趨勢,清除率由2 μg/mL 處的3.9%上升到44.1%。隨后,隨著多糖濃度的升高,清除活性呈現緩慢增強的趨勢,在40 μg/mL 時,清除作用達到53.9%。

2.2 清除羥自由基

地木耳多糖提取物清除不同體系產生的羥自由基,見圖2。

圖2 地木耳多糖提取物清除不同體系產生的羥自由基Fig.2 Scavenging effect of polysaccharide extract of N.commune on hydroxyl radical generated in different systems

如圖2 所示,地木耳多糖提取物對兩個體系產生的羥自由基均具有清除作用且呈現量效關系,最高清除率分別為30 μg/mL 濃度處的23.5%和24.2%。但在6 μg/mL~18 μg/mL 濃度范圍內,地木耳多糖提取物對非特異體系產生的羥自由基清除活性明顯高于特異體系。

2.3 抑制脂質過氧化

地木耳多糖提取物抑制脂質過氧化,見圖3。

圖3 地木耳多糖提取物抑制脂質過氧化Fig.3 Inhibition effect on lipid peroxidation of polysaccharide extracts from N.commune

圖3 顯示,地木耳多糖提取物對蛋黃勻漿作為介質的脂質過氧化有較顯著的抑制作用。在10 μg/mL的濃度下,脂質過氧化抑制率為3.7%,作用不顯著。但隨提取物濃度的升高,清除率顯著增強,在100 μg/mL的最高測試濃度下,清除率達到17.4%。

2.4 HEK293 細胞存活率的測定

細胞和不同濃度的多糖提取物共同孵育24、48、72 h,將對照組光吸收值設定為100%,測定細胞存活率,見圖4。

圖4 地木耳多糖提取物對人胚腎細胞293 存活率的影響Fig.4 Effect of N.commune polysaccharide extract on the viability of HEK 293cells

如圖4 所示,存活率無顯著差異,說明提取物對HEK293 細胞沒有細胞毒性作用。

2.5 酶活力測定

酶活力測定,見表1。

由表1 可以看出,在1 μg/mL 濃度處,多糖提取物對SOD、CAT、GPx 的酶活力增強作用微弱,但是隨著多糖濃度的升高,提取物對酶活力表現出顯著的增強作用。 SOD 酶活力在5 μg/mL 濃度處提升最大,為18.9%。CAT 和GPx 的酶活力均在25 μg/mL 濃度處得到最大提高,提高率分別達到31.9%、39.6%。結果表明,地木耳多糖提取物對GPx 和CAT 的酶活力影響要高于對SOD 酶活力的影響。

表1 地木耳多糖提取物對HEK293 細胞超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)酶活力的影響Table 1 Effect of N.commune extract on the activities of SOD,CAT and GPx in HEK 293 cells

3 分析與討論

自從提出衰老的自由基學說以來,大量的研究發現人類的許多疾病都與機體的自由基氧化損傷有關[13]。在尋找抗氧劑的過程中,人們發現微量元素、維生素、中草藥、食品的有效成分等均具有清除自由基的作用,而抗氧化多糖因其低毒、安全、來源廣等特點備受關注[14-15]。研究發現,多糖的抗氧化活性可能是多糖抗腫瘤、抗病毒、抗感染、抗炎癥等其他活性的作用機理之一[16-17]。

超氧陰離子自由基和羥自由基是最具代表性的活性氧自由基。在機體的氧化反應中,超氧陰離子自由基通常最先形成,其本身活性較弱,但可通過形成其他多種有破壞作用的自由基而使其功能放大。羥自由基是毒性最強的自由基,它幾乎能與所有的功能性生物大分子起反應,造成生物體的巨大傷害,例如攻擊膜質,引發脂質過氧化[18-19]。脂質過氧化則是由于不飽和脂肪酸鏈的氫被抽掉而引發的特征性鏈式反應,是導致細胞膜損傷的主要原因。

本實驗結果表明,地木耳多糖提取物能有效的清除超氧自由基、羥自由基、抑制蛋黃勻漿過氧化反應,還可顯著提高抗氧化酶的活性。

羥自由基的清除活性測定,一般采用位點特異和非特異兩個體系。地木耳多糖提取物對位點特異體系產生的羥自由基的清除活性高于非特異體系,分析其原因,可能是由于位點非特異體系中有EDTA 的存在,對體系中的二價鐵離起到螯合作用,使羥自由基的產生受到限制。而在位點特異體系中,EDTA 被磷酸緩沖液代替,自由基的生成和提取物對金屬離子及對自由基的清除作用都不會受到限制,因而清除率要高于非特異體系。

SOD、CAT 和GPx 是生物體抗氧化酶系統中非常重要的三種酶。一般情況下,它們參與并介導自由基的產生與淬滅,維持體內自由基的正常代謝水平[20]。SOD 催化超氧陰離子發生歧化反應,生成H2O2,而H2O2和其它內源及外源的過氧化物又可被CAT 和GPx 進一步清除。實驗結果表明,地木耳多糖提取物可顯著提高三種抗氧化酶的活性,有效的降低細胞所受到的自由基的危害。

黃澤波等對念珠藻多糖組分及結構進行了研究并發現,地木耳多糖含有半乳糖、葡萄糖、木糖、海藻糖等組分[21]。這些單糖都是有效的還原劑,其抗氧化作用可能與其組分的還原性質有關。

綜上所述,地木耳多糖提取物抗氧化活性顯著,可以作為天然抗氧化劑的優良來源。

[1] Luo D, Fang B. Structural identification of ginseng polysaccharides and testing of their antioxidant activities[J].Carbohydrate Polymers,2008,72(3):376-381

[2] Wang Q S,Zhao X Y,He S Z,et al.Differential Proteomics Analysis of Specific Carbonylated Proteins in the Temporal Cortex of Aged Rats: The Deterioration of Antioxidant System[J]. Neurochemical Research,2010,35(1):13-21

[3] Andrea D H, Svenja K, Roland U, et al. Fucoidans and fucoidanases-focus on techniques for molecular structure elucidation and modification of marine polysaccharides[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2009,82(1):1-11

[4] Chen B L,You W L,Huang J,et al.Isolation and antioxidant property of the extracellular polysaccharide from Rhodella reticulata[J].World Journal of Microbiology and Biotechnology,2010,26(5):833-840

[5] Cho M L, Chen Y, Sang M K, et al. Molecular characterization and biological activities of watersoluble sulfated polysaccharides from Enteromorpha prolifera[J].Food Science and Biotechnology,2010,19(2):525-533

[6] Didyk N P,Blum O B.Natural antioxidants of plant origin against ozone damage of sensitive crops[J].Acta Physiologiae Plantarum,2011,33(1):25-34

[7] Tang J,Hu Z Y,Chen X W.Free radical scavenging and antioxidant enzymes activation of polysaccharide extract from Nostoc sphaeroides[J]. American Journal of Chinese Medicine,2007,35(5):887-896

[8] Nishikimi M,Appaji N,Yagi K.The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulphate and molecular oxygen[J].Biochemical and Biophysical,Research Communications,1972,46(2):849-854

[9] Halliwell B, Gutteridge J M, Aruoma O I. The deoxyribose method:A simple "test-tube" assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals[J]. Analytical Biochemistry,1987,165(1):215-219

[10] Sun C,Wang J W,Fang L,et al.Free radical scavenging and antioxidant activities of EPS2,an exopolysaccharide produced by a marine filamentous fungus Keissleriella sp.YS 4108[J].Life Science,2004,75(9):1063-1073

[11] Desmarchelier C,Lisboa R R,Coussio J,et al.Antioxidant and free radical scavenging activities in extracts from medicinal trees used in the'Caatinga'region in northeastern Brazil[J].Journal of Ethnopharmacology,1999,67(1):69-77

[12] Hansen M B,Nielsen S E,Berg K.Re-examination and further development of a precise and rapid dye method for measuring cell growth/cell kill[J]. Journal of Immunological Methods, 1989,119(2):203-210

[13] Parvaiz A,Maryam S,Satyawati S.Reactive oxygen species,antioxidants and signaling in plants[J]. Journal of Plant Biology, 2008, 51(3):167-173

[14] Dhan P, Neeraj K. Cost Effective Natural Antioxidants[J].Nutrition and Health,2011,(4):163-187

[15] Dong C H, Yao Y J. In vitro evaluation of antioxidant activities of aqueous extracts from natural and cultured mycelia of Cordyceps sinensis[J].LWT-Food Science and Technology,2008,41(4):669-677

[16] Schepetkin I A,Quinn M T.Botanical polysaccharides:Macrophage immunomodulation and therapeutic potential[J]. International Immunopharmacology,2006,6(3):317-333

[17] Yazdanparast R, Ardestani A. In vitro antioxidant and free radical scavenging activity of Cyperus rotundus[J]. Journal of Medicinal Food,2007,10(4):667-674

[18] Tseng Y H, Yang J H, Mau J L. Antioxidant properties of polysaccharides from Ganoderma tsugae[J]. Food Chemisty, 2008,107(2):732-738

[19] Wang J, Zhang Q, Zhang Z, et al. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica[J].International Journal of Biological Macromolecules,2008,42(2):127-132

[20] Nevcihan G,Cengiz S,Bektas T,et al.Evaluation of antioxidant activities of 3 edible mushrooms: Ramaria flava(Schaef.: Fr.) Quél,Rhizopogon roseolus (Corda)T.M.Fries.,and Russula delica Fr.[J].Food Science and Biotechnology,2010,9(3):691-696

[21] Huang Z,Liu Y,Paulsen B S,et al.Studies on polysaccharides from three edible species of Nostoc(Cyanobacteria) with different colony morphologies: comparison of monosaccharide compositions and viscosities of polysaccharides from field colonies and suspension cultures[J].Journal of Phycology,1998,34(6):962-968

主站蜘蛛池模板: 欧美日韩国产综合视频在线观看| 97青草最新免费精品视频| igao国产精品| 亚洲欧美自拍中文| 国产99精品视频| 国产美女91视频| 欧美一级高清片欧美国产欧美| 麻豆AV网站免费进入| 久久久国产精品免费视频| 精品国产成人高清在线| av在线人妻熟妇| 国内精品久久久久鸭| 69av免费视频| 午夜丁香婷婷| 国产精品熟女亚洲AV麻豆| 亚洲国产欧美自拍| 91亚瑟视频| 亚洲婷婷在线视频| 国产日本一线在线观看免费| 在线观看无码a∨| 亚洲一级毛片免费看| 制服丝袜亚洲| 久久青草免费91观看| 少妇露出福利视频| 国产69精品久久久久妇女| 99这里只有精品免费视频| 青青久久91| 国产精品嫩草影院av| 99久久精品久久久久久婷婷| 性欧美在线| 永久成人无码激情视频免费| 国产成人一区免费观看| 日本一本在线视频| 亚洲精品另类| 美女内射视频WWW网站午夜 | 成人午夜天| 亚洲精品成人福利在线电影| 亚洲欧美另类色图| 亚洲天堂2014| 露脸国产精品自产在线播| 亚洲欧美日韩动漫| 91极品美女高潮叫床在线观看| 国产午夜福利片在线观看| yjizz国产在线视频网| 毛片手机在线看| 91精品啪在线观看国产91九色| 免费中文字幕一级毛片| 九九久久精品免费观看| 性网站在线观看| 日韩黄色在线| 91精品国产一区| 亚洲无码熟妇人妻AV在线| 日韩一二三区视频精品| 亚洲an第二区国产精品| 亚洲日韩Av中文字幕无码| 一级毛片免费播放视频| 亚洲精品日产精品乱码不卡| 欧美成人午夜视频免看| 91视频首页| 久久久精品久久久久三级| 真实国产乱子伦视频| 无码免费试看| 亚洲精品无码不卡在线播放| 国产情侣一区| 亚洲国产日韩在线成人蜜芽| 72种姿势欧美久久久大黄蕉| 久久久久国色AV免费观看性色| 国产成人做受免费视频| 无码人妻免费| 久久青草免费91观看| 亚洲天堂日本| 久久6免费视频| 亚洲经典在线中文字幕| 国产精品自拍合集| 亚洲AⅤ永久无码精品毛片| 国产人成乱码视频免费观看| 99热这里只有精品免费国产| 伊人欧美在线| 日韩无码真实干出血视频| 男女男免费视频网站国产| 五月激情婷婷综合| 国产91全国探花系列在线播放 |