李 萍,曾常茜
(1.吉林省圖們市人民醫院內科,圖們 133100;2:大連大學醫學院,大連 116622)
透骨草(Phryma leptostachyaL.var.asiatica Hara)為透骨草科植物的干燥全草入藥,具有清熱解表、活血消腫作用[1]。文獻報道,透骨草提取物對多種腫瘤細胞增殖有顯著抑制作用[2]。本實驗首次將透骨草提取物作用于人肝癌SMMC-7721細胞,觀察透骨草提取物對SMMC-7721細胞凋亡及凋亡相關蛋白caspase-9、-3、-7和X連鎖凋亡抑制蛋白(XIAP)蛋白表達的影響,探討透骨草提取物誘導SMMC-7721細胞凋亡的分子機制,旨在為透骨草抗肝癌作用的研究提供實驗依據。
1.1 藥品、試劑及儀器 人肝癌SMMC-7721細胞由吉林省腫瘤研究所提供;鼠抗人caspase-9、-3、-7抗體購自Cell Signaling Technology公司,鼠抗人XIAP單克隆抗體、SP免疫組化試劑盒購自福州邁新生物技術公司。RPMI 1640、小牛血清和胰蛋白酶為美國Gibco公司產品;藥物采自遼寧金州大黑山,經王心毓老先生鑒定為透骨草科植物(Phryma leptostachyaL.var.asiatica Hara);流式細胞儀(FACSNANTATE-SETM)為美國BD公司產品。
1.2 方法
1.2.1 透骨草提取物制備方法 采取加熱回流提取法,取干燥透骨草50 g,加8倍量75%乙醇,提取2 h,過濾,濾液水浴濃縮成干膏。
1.2.2 細胞培養 SMMC-7721細胞培養于10%小牛血清的RPMI 1640培養基中,在37℃,5%二氧化碳(CO2)的條件下培養。胰酶消化傳代,每2~3 d傳代1次,實驗選用對數生長期細胞。
1.2.3 實驗分組 SMMC-7721細胞生長至對數生長期,實驗組加入透骨草提取物溶液,終濃度為40.91 μg/mL,對照組加入 RPMI-1640培養液,繼續培養24 h。
1.2.4 流式細胞術檢測SMMC-7721細胞凋亡 分別收集經實驗組和對照組的SMMC-7721細胞,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌2次,用預冷70%乙醇4℃固定24 h,PBS洗滌2次,制成1 mL細胞懸液,加入20 U/mL Rnase,37℃水浴1 h,再加入含碘化丙啶(100 μg/mL)染色,4 ℃避光染色 30 min,流式細胞儀檢測。
1.2.5 免疫組化法檢測SMMC-7721細胞Caspase-9、-3、-7和XIAP蛋白表達 按試劑盒說明進行操作。分別收集實驗組和對照組的SMMC-7721細胞,制成細胞懸液涂片,丙酮固定。3%過氧化氫室溫孵育15 min。正常山羊血清室溫孵育15 min。分別與鼠抗人Caspase-9、-3、-7抗體、鼠抗人XIAP抗體37℃孵育2 h,PBS洗3次。與生物素標記二抗室溫孵育 15 min,PBS洗3次。與ABC液室溫孵育10 min,PBS洗3次。DAB溶液顯色,蒸餾水沖洗、蘇木素襯染、脫水、封片,顯微鏡下觀察,細胞核或細胞漿出現棕色或棕褐色顆粒判斷為陽性細胞,無棕色染色者為陰性細胞,計數200個細胞并計算陽性細胞占所有細胞的比例。
1.2.6 統計學處理 實驗數據采用SPSS18.0統計軟件,計量資料以均數±標準差(±s)表示,組間比較行單因方差分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 透骨草提取物對SMMC-7721細胞凋亡的影響 流式細胞術檢測結果顯示,未用透骨草提取物處理的對照組SMMC-7721細胞凋亡率為(3.76±1.01)%,而用 40.91 μg/mL透骨草提取物作用 24 h的SMMC-7721細胞凋亡率為(26.84±1.23)%,兩組比較,差異有統計學意義(P<0.01),見表1。
表1 流式細胞術檢測SMMC-7721細胞凋亡結果(±s,n=3)Tab.1 Apoptosis rates of SMMC-7721 cells with flowcytometry(±s,n=3)
注:與對照組比較,*P<0.05。
組別 凋亡率對照組 3.76±1.0140.91 μg/mL 透骨草提取物處理組 26.84±1.23*
2.2 透骨草提取物對SMMC-7721細胞Caspase-9、-3、-7和XIAP蛋白表達的影響 免疫組化方法觀察結果顯示,未用透骨草提取物處理的對照組SMMC-7721細胞Caspase-9蛋白高表達,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量多,經40.91 μg/mL透骨草提取物處理后的SMMC-7721細胞Caspase-9蛋白表達明顯降低,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量少,經統計學處理差異顯著(P<0.05);未用透骨草提取物處理的對照組SMMC-7721細胞Caspase-3蛋白高表達,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量多,經40.91 μg/mL透骨草提取物處理后的SMMC-7721細胞Caspase-3蛋白表達明顯降低,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量少,經統計學處理差異顯著(P<0.05);未用透骨草提取物處理的對照組SMMC-7721細胞Caspase-7蛋白高表達,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量多,經40.91 μg/mL透骨草提取物處理后的SMMC-7721細胞Caspase-7蛋白表達明顯降低,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量少,經統計學處理差異有統計學意義(P<0.05);未用透骨草提取物處理的對照組SMMC-7721細胞XIAP蛋白低表達,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量少,經40.91μg/mL透骨草提取物處理后的SMMC-7721細胞XIAP蛋白表達明顯增加,細胞漿或細胞核著棕黃色的細胞量多,經統計學處理差異有統計學意義(P<0.05),見表 2。
表2 SMMC-7721細胞Caspase-9、-3、-7和XIAP蛋白表達結果(±s,n=3)Tab.2 The expression of protein of Caspase-9、-3、-7 and XIAP in SMMC-7721 cells(±s,n=3)

表2 SMMC-7721細胞Caspase-9、-3、-7和XIAP蛋白表達結果(±s,n=3)Tab.2 The expression of protein of Caspase-9、-3、-7 and XIAP in SMMC-7721 cells(±s,n=3)
注:與對照組比較,*P<0.05。
組別 Caspae-9 Caspase-3 Caspae-7 XIAP對照組 51.2±1.9 59.8±2.2 42.6±1.5 11.4±1.040.91 μg/mL 透骨草提取物處理組 14.7±1.2*17.3±1.1*11.2±0.8*43.7±2.3
現代研究表明,中醫藥在防治腫瘤過程中扮演著不可替代的角色[3-4]。中藥物抗腫瘤的活性與藥物引起腫瘤細胞發生凋亡密切相關[5-7]。本實驗將透骨草提取物作用于SMMC-7721細胞,結果表明SMMC-7721細胞凋亡率顯著高于對照組,說明透骨草提取物可誘導SMMC-7721細胞凋亡。
Caspases是以天冬氨酸為底物的半胱氨酸蛋白酶,在細胞凋亡調控過程中具有重要作用[8-9]。當細胞在損傷因素作用或接受凋亡信號時,促使細胞色素C從線粒體中釋放出來并與凋亡酶激活因子-1結合,形成多聚體,并促使Caspase-9前體與其結合形成凋亡小體,導致Caspase-9被激活,激活的Caspase-9再激活Caspase-3、-7,導致細胞凋亡[10]。本研究結果表明40.91 μg/mL透骨草提取物處理SMMC-7721細胞 24 h后,Caspase-9、-3、-7蛋白表達水平與對照組相比顯著下降,說明透骨草提取物可能通過激活Caspase級聯反應誘導SMMC-7721細胞凋亡。
XIAP是最有效的內源性Caspases抑制因子,其在多種腫瘤細胞中過表達[11]。XIAP抑制細胞凋亡的機制主要是XIAP的BIR2結構域與Caspase-3、Caspase-7結合,而XIAP的BIR3結構域與Caspase-9結合,從而抑制細胞凋亡[12]。本研究結果表明40.91 μg/mL透骨草提取物處理SMMC-7721細胞24 h,XIAP蛋白表達水平與對照組相比顯著增高,說明透骨草提取物通過抑制XIAP,進而通過Caspase級聯反應誘導SMMC-7721細胞凋亡。
總之,透骨草提取物能通過XIAP/Caspase信號通路誘導人肝癌SMMC-7721細胞凋亡,透骨草提取物是否通過其他的凋亡相關蛋白誘導SMMC-7721細胞凋亡,有待進一步深入研究。
[1]高 松.遼南地區藥用植物圖鑒[M].北京:科學技術出版社,2008:196.
[2]曾常茜,高 松,沈 陽,等.透骨草提取物對腫瘤細胞體外增殖的影響[J].遼寧中醫雜志,2009,36(11):1952-1954.
[3]鄭文科,商洪才.中醫藥在防治腫瘤的特色和優勢[J].天津中醫藥大學學報,2010,29(3):166-168.
[4]賈英杰,李小江,張麗麗,等.中醫藥結合血管內介入治療原發性肝癌的臨床研究進展[J].天津中醫藥,2011,28(1):87-88.
[5]Fluhr H,Wenig H,Spratte J,et al.Non-apoptotic Fas-induced regulation of cytokines in undifferentiated and decidualized human endometrial stromal cells depends on caspase-activity[J].Mol Hum Reprod,2011,17(2):127-134.
[6]陳 軍,張蘊超,李小江,等.消巖湯劑拆方配伍對MCF-7乳腺癌細胞生長及凋亡機制研究[J].天津中醫藥,2010,27(5):403-405.
[7]康立源,周志煥,張 萌,等.三七總皂苷對缺氧復氧致皮質神經元損傷細胞凋亡相關基因及蛋白表達的影響[J].天津中醫藥大學學報,2010,29(1):22-25.
[8]Lu J,Xu SY,Zhang QG,et al.Bupivacaine induces apoptosis via mitochondria and p38 MAPK dependent pathways[J].European journal of pharmacology,2011,657(1):51-58.
[9]Takai N,Narahara H.Human endometrial and ovarian cancer cells:histone deacetylase inhibitors exhibit antiproliferative activity,potently induce cell cycle arrest and stimulate apoptosis[J].Curr Med Chem,2007,14(24):2548-2553.
[10]Kang TH,Bang JY,Kim MH.Atractylenolide III,a sesquiterpenoid,induces apoptosis in human lung carcinoma A549 cells via mitochondria-mediated death pathway[J].Food Chem Toxicol,2011,49(2):514-519.
[11]Schimmer AD,Dalili S,Batey RA,et al.Targeting XIAP for the treatment of malignancy[J].Cell Death Differ,2006,13(2):179-188.
[12]Warbinek RH,Schmid JA,Stehlik C,et al.Activation of NF-κB by XIAP,the Chromosome-linked inhibitor of apoptosis,in endothelial cells involves[J].TAKI J Bio Chem,2001,275:22064-22068.