段晶晶,劉國華,黃學勇,李幸樂,王 芳,胡小寧1,,許汴利1,#
1) 鄭州大學公共衛生學院流行病學教研室 鄭州 450001 2)鄭州市疾病預防控制中心傳染病防治科 鄭州 450007 3) 河南省疾病預防控制中心傳染病預防控制所 鄭州 450016 4)鄭州市兒童醫院感染性疾病科 鄭州 450053
近年來,河南省暴發多起病毒性腦炎,經檢測主要由柯薩奇病毒B5(coxsackie virus B5, CVB5)引起[1]。CVB5是一種常見的能引起病毒性腦炎的腸道病毒,屬于腸道病毒屬小核糖核酸病毒,無包膜,單股正鏈RNA[2],其引起的病毒性腦炎在我國廣泛存在[3-4]。病毒的分離培養與PCR擴增測序是鑒定CVB5的主要方法和金標準,但由于該方法的敏感性和檢出率低、耗時長且費用高,臨床上極少采用[5],探索簡單、快速、靈敏度高的CVB5檢測方法非常有必要,為此,作者建立了檢測CVB5的巢式RT-PCR方法,報道如下。
1.1毒株、試劑與儀器CVB5、Echo6、Echo25、EV71、CVA16毒株由河南省疾病預防控制中心傳染病所實驗室分離培養和保存。52份(血清16份,糞便19份,腦脊液17份)樣本采自臨床確診的病毒性腦炎病例。RNA提取試劑盒(QIAGEN公司);RT-PCR試劑盒和PCR反應液(TaKaRa公司),PCR儀、電泳儀、凝膠成像儀(BIO-RAD公司)。
1.2引物設計與合成從GenBank下載CVB5河南分離株全基因序列,進行保守性分析,根據引物設計原則,在VP1區設計巢式PCR引物,包括外引物P1:5’-GTGGAGAGGGCCATTGCACGCGTCG-3’,P2:5’-CAGTCACGCCAGTAGGTTCAAAAT-3’,預期擴增產物大小約800 bp;內引物P3:5’-TATGATGGGT GGGCTAGGTT-3’,P4:5’-TCTGTCACGCCAGTAGGT TC-3’,預期擴增產物大小約200 bp。引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。
1.3標本RNA的提取與反轉錄按照RNA提取試劑盒說明書的操作步驟提取所有樣本RNA后,在Microtube管中加入dNTP Mixture和Random 6 mers各1 μL,已提取的RNA 2 μL,再加入RNase Free dH2O至終反應體系為10 μL, PCR儀上65 ℃ 5 min進行變性、退火。產物離心數秒后在該EP管中加入Prime ScriptTMBuffer 4 μL,RNase Inhibitor和Prime ScriptTMRTase各0.5 μL,RNase Free dH2O 5 μL,配置成20 μL反應體系。反轉錄PCR反應條件:30 ℃ 10 min,42 ℃ 30 min,95 ℃ 5 min。
1.4巢式PCR反應條件的優化PCR反應總體系為50 μL,每次反應保持其他3個條件不變,分別以cDNA 模板梯度0.5、1.0、1.5、2.0 μL,上下游引物(25 μmol/L)梯度0.4、0.8、1.0、1.2、1.6 μL,退火溫度梯度50 ℃、53 ℃、56 ℃、59 ℃、62 ℃,循環數20、25、30、35個梯度循環進行PCR反應,將產物進行瓊脂糖凝膠電泳后觀察成像結果,確定最適模板量、最佳引物量、最適退火溫度和最佳循環數。
1.5產物的檢測和鑒定取PCR反應產物8 μL,用15 g/L的瓊脂糖凝膠電泳(180 V,30 min)。根據DNA Marker(DL2000)、陽性對照和陰性對照判定結果,使用凝膠成像系統記錄結果。PCR反應結果為陽性者委托南京金斯瑞生物科技有限公司進行測序,用Blast程序進行同源性鑒定。
1.6巢式RT-PCR的評價及臨床應用①特異性:選用已經過鑒定的5株不同的CVB5毒株和4株其他腸道病毒毒株(包括Echo6、Echo25、EV71、CVA16)及陰性對照(H2O),用所建立的方法進行擴增,以驗證該方法的特異性。②敏感性:選用RD細胞進行病毒效價滴定,得到CVB5標準株病毒濃度為6.32×107TCID50mL-1后,以其為標準進行10倍連續稀釋,分別得到1 000 TCID50,100 TCID50,10 TCID50,1 TCID50,10-1~10-9TCID50,用已建立的方法進行擴增,取產物8 μL進行瓊脂糖凝膠電泳,以確定其敏感性。③重復性:將CVB5、Echo25、EV71等不同毒株及10份病毒性腦炎病例樣本分別用已建立的檢測方法重復實驗3次,以判斷其重復性。對52個臨床標本進行檢測時,分別以CVB5標準株和無菌水作為陽性和陰性對照。
2.1巢式RT-PCR反應體系和反應條件優化結果
最終確定2輪PCR擴增反應總體系均為50 μL,包括PCR反應液25 μL、cDNA模板1 μL、上下游引物各1 μL、RNase Free dH2O 22 μL。在第2輪擴增反應中,取第1輪PCR擴增產物1 μL作為第2輪的反應模板。反應條件:94 ℃ 3 min;94 ℃ 30 s,56 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,30個循環;72 ℃ 10 min。第2輪反應條件除了將第1輪的30個循環改為25個循環外,其他與第1輪相同。
2.2擴增產物的鑒定CVB5經2輪擴增,結果顯示第1輪擴增產物位于800 bp條帶處,第2輪擴增產物位于200 bp條帶處,且第2輪與第1輪相比條帶更加清晰,見圖1。測序及同源性分析結果顯示核苷酸同源性為100%,證明該擴增產物的確是CVB5的VP1區基因片段。
2.3巢式RT-PCR的特異性第1輪擴增,5株CVB5毒株均出現800 bp的目的條帶,且條帶清晰可見,無其他雜帶,而Echo6、Echo25、EV71、CVA16及陰性對照均無目的條帶,見圖2。第2輪擴增,5株CVB5毒株在200 bp處均出現目的條帶,而其余4株病毒及陰性對照未見目的條帶,見圖3。結果與預期一致,證明該方法對CVB5毒株具有高度特異性。

圖1 2輪PCR反應的電泳結果

圖2 特異性實驗第1輪擴增結果

圖3 特異性實驗第2輪擴增結果
2.4巢式RT-PCR的敏感性第1輪PCR反應的敏感性達到10 TCID50,見圖4。第2輪PCR反應敏感性達到10-4TCID50,見圖5。
2.5巢式RT-PCR的重復性分別用已建立的檢測方法對CVB5、Echo25、EV71等不同毒株及10份病毒性腦炎病例樣本重復測定3次,所有結果均一致。
2.6臨床樣品檢測結果對52份病毒性腦炎樣本用所建立的巢式RT-PCR方法進行擴增,其中有10份為陽性,陽性率為19.23%,分別為血清4份(4/16)、糞便3份(3/19)、腦脊液3份(3/17),經測序鑒定全部為CVB5。而用病毒分離VP1測序方法得到陽性僅6份,分別為血清2份、糞便3份、腦脊液1份,且均來自于巢式RT-PCR結果為陽性的10份樣本。

圖4 靈敏性實驗第1輪擴增結果

圖5 靈敏性實驗第2輪擴增結果
病毒性腦炎是常見的中樞神經系統感染性疾病,嚴重威脅兒童的身心健康,臨床上主要由醫生根據患兒的癥狀體征、腦脊液和腦電圖檢查等進行確診,但無法得到病原學診斷。病毒的分離培養是目前鑒定CVB5的金標準,但該方法存在操作繁瑣、耗費時間長、病毒分離成功率低等問題[6]。PCR作為一種新的分子生物學檢測技術,具有操作簡單、快速、靈敏度和特異度高、易標準化等特點,已被越來越多地用于腸道病毒的診斷[7]。該研究建立的巢式RT-PCR方法一般在5 h內即能完成包括RNA提取在內的CVB5的檢測,在采集當天即可以出結果,從而節約了大量的時間、人力和物力,降低了經濟成本。初步研究結果也顯示其特異性強,靈敏度達到10-4TCID50,且重復性好。用建立的巢式RT-PCR方法對臨床52份不同的病毒性腦炎樣本進行檢測,結果陽性的10份樣本經測序鑒定全部為CVB5,而病毒分離方法僅顯示6份陽性(均來自已檢測為陽性的10份樣本),說明該方法較病毒分離方法具有更高的靈敏度。
綜上所述,該研究建立的巢式RT-PCR檢測方法具有簡單快速、靈敏度和特異度高、重復性好且經濟合理等特點,有效地解決了病毒分離方法存在的問題,為CVB5感染的流行病學調查和實驗室檢測提供了一種更為快速、敏感和可靠的手段。但由于CVB5是RNA病毒,核酸極易降解,同時PCR極易造成標本之間的污染,尤其是2次PCR反應,因此實驗操作中要保證標準的PCR操作環境和嚴格的實驗規程,以確保結果的準確性和可靠性。
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