趙維勇 劉志遠 畢良文 張麗珍▲
1.南京醫科大學第二附屬醫院放療科,江蘇南京 210011;2.南京市胸科醫院放療科,江蘇南京 210011
在消化系統惡性腫瘤中,大腸癌最為常見。 大腸癌患者的發病率及死亡率每年均呈增長趨勢,如今在我國,大腸癌已成為惡性腫瘤病死原因的第2 位。大腸癌確診時大多已為晚期,術前放射治療可以使腫瘤體積縮小,從而能降低直腸癌的臨床分期及局部復發率,最終達到延長生存期的目的。 近年來,放療聯合化療藥物使直腸癌療效提高,患者受益,因而在局部晚期直腸癌中,新輔助治療多選擇放化療聯合[1]。 多項研究已證實多西紫杉醇能提高非小細胞肺癌、宮頸癌、食管癌等細胞的放射敏感性[2-4]。本實驗以多西紫衫醇聯合放療作用于大腸癌細胞,探討多西紫衫醇對腸癌潛在可能的放射增敏作用。
1.1.1 主要試劑 人腸癌細胞株SW480 細胞購自上海生命科學研究院;多西紫杉醇(艾素)為江蘇恒瑞醫藥股份有限公司生產;RMI-1640 購自GIBCO BRL 公司;AnnexinV-FITC/PI 檢測試劑盒購自南京凱基生物科技發展有限公司。
1.1.2 主要儀器 生物倒置顯微鏡,CO2培養箱, 分光光度計,醫科達醫用直線加速器(瑞典),臺式低速離心機,流式細胞儀。
1.2.1 MTT 法觀察多西紫杉醇對SW480 的增殖抑制作用 設對照組、空白組及多西紫杉醇作用組。SW480細胞培養到一定數量,96 孔細胞培養板中每孔約5×103個細胞。 加入不同濃度多西紫杉醇(0.1、0.5、1、3、5、10、20、40、60 μg/mL)培養液,每個濃度及組內設3 復孔。 繼續培養24、48、72 h 后,將96 孔板進行MTT 染色,測定OD 值(λ=490 nm),計算抑制率。 抑制率(%)=(1-實驗組OD 值/對照組OD 值)×100%。 以抑制率為縱軸,多西紫杉醇濃度為橫軸,制作SW480 細胞生長抑制曲線圖。 通過概率單位加權回歸法(Bliss 法)計算IC50。
1.2.2 克隆形成法檢測多西紫杉醇對直腸癌SW480細胞的放射增敏作用 完全培養液3 mL 于5%CO2,37℃培養箱中培養24 h,細胞貼壁后,進行分組處理:對照組;多西紫杉醇組:多西紫杉醇5 μg/mL(20% IC50);放療組:不同照射劑量(0、1、2、4、6、8 Gy) 照射;多西紫杉醇+放療組:5 μg/mL 多西紫杉醇處理細胞后2 h,再分別進行不同劑量(0、1、2、4、6、8 Gy)照射。每個濃度及組內設3 復孔。 處理結束后繼續培養48 h,然后棄去含藥物的培養液, 換新鮮的不含藥物的培養液,于培養箱內培養10~14 d。 當6 孔細胞培養板中出現肉眼可見的克隆的時候,經過洗滌、固定、染色,在低倍鏡下計數大于50 個細胞的克隆數,計算相關指標。公式:貼壁率(plating efficiency,PE)=對照組每孔克隆數/每孔細胞種植數×100%; 存活率或存活分數(surviving fraction,SF)=實驗組每孔克隆數/(每孔種植數×貼壁率)。以單擊多靶數學模型擬合細胞存活曲線,計算出放療組和放療聯合藥物組的D0值, 放射增敏效應以放射增敏比(SERD0)表示,定義為單獨放療組與放療聯合藥物組的D0之比。
1.2.3 流式細胞儀檢測細胞周期分布 分組: 對照組、放療組、多西紫杉醇組和多西紫杉醇+放療組。將細胞接種于6 孔板中,待細胞貼壁后,對照組更換無藥培養液,多西紫杉醇組更換含有5 μg/mL 多西紫杉醇的培養液,放療組給以4 Gy 劑量照射;多西紫杉醇+放療組給予5 μg/mL 多西紫杉醇同時接受4 Gy 照射。組內設3 復孔。繼續培養48 h,收集細胞,洗滌、固定、PI 染色后,記錄激發波長488 nm 處紅色熒光。
1.2.4 Annexin V-FITC/PI 染色法檢測細胞凋亡實驗分四組:對照組、單純照射組、多西紫杉醇組和多西紫杉醇+放療組。待細胞貼壁后,加入相應的含藥培養基及照射處理(同“1.2.3”項下),每個濃度及組內設3 復孔。 藥物作用48 h 后, 收集細胞、 洗滌, 加入Annexin V-FITC、Propidium Iodide, 采用流式細胞儀觀察細胞凋亡的發生情況
采用SPSS 16.0 統計學軟件進行數據分析, 計量資料數據用均數±標準差(s)表示,多組間比較采用單因素方差分析, 組間兩兩比較采用LSD-t 檢驗,以P <0.05 為差異有統計學意義。
多西紫杉醇抑制SW480 細胞增殖作用與濃度呈正相關(F = 84.71,P <0.001);與時間呈正相關(F = 26.30,P <0.001)。 見表1、圖1。 后續研究選擇多西紫杉醇5 μg/mL 作用48 h, 作為放射增敏濃度和時間。
表1 多西紫杉醇對人腸癌細胞SW480 增殖的抑制作用(%,s)

表1 多西紫杉醇對人腸癌細胞SW480 增殖的抑制作用(%,s)
0.1 0.5 1351 0 20 40 60 1.11±2.43 2.34±1.56 8.30±1.54 10.30±1.39 21.33±1.23 28.44±0.99 34.21±1.43 40.34±1.23 45.22±1.51 1.33±2.01 3.89±2.18 10.22±1.19 13.45±1.29 23.92±2.20 38.65±1.23 49.67±1.00 54.76±1.18 57.33±1.35 3.11±2.39 8.22±2.30 17.33±1.23 22.13±1.76 35.33±2.01 44.11±1.24 56.33±1.02 61.21±1.10 63.11±1.94

圖1 多西紫杉醇對人腸腺癌細胞SW480 增殖的抑制作用
由表2 可見,SF 及克隆形成隨著照射劑量的升高而降低。 使用單擊多靶模型對SF 和放射劑量進行曲線擬合,見圖2。 根據擬合的細胞存活曲線及相關公式,得出相應參數D0、Dq、SER 值,多西紫杉醇+放射組的Dq、SF2值均低于單純放療組,見表3,提示多西紫杉醇可使SW480 細胞的放射敏感性明顯增強,其SER 值為1.73。
流式細胞儀結果顯示, 多西紫杉醇作用后,SW480 細胞周期發生變化,G2/M 期細胞比例由(32.19±0.47)%增高到(46.24±0.07)%,多西紫杉醇+放療組增高到(58.08±0.05)%,差異有統計學意義(P<0.05)。 見表4、圖3。

表2 多西紫杉醇、多西紫杉醇聯合放射線的細胞存活分數

圖2 根據單擊多靶模型擬合細胞存活曲線

表3 不同組別細胞存活曲線的主要參數
表4 多西紫杉醇聯合或不聯合放療對人腸癌SW480 細胞周期的影響(%,s)

表4 多西紫杉醇聯合或不聯合放療對人腸癌SW480 細胞周期的影響(%,s)
注:與對照組比較,#P < 0.05;與放療組比較,*P < 0.05
對照組多西紫杉醇組放療組多西紫杉醇+放療組38.29±0.85 32.42±0.28 28.91±0.27 23.63±0.32 29.52±0.51 21.34±0.58 21.72±0.46 18.29±0.45 32.19±0.47 46.24±0.07#49.37±0.35#58.08±0.05#*

圖3 多西紫杉醇聯合或不聯合放療對人腸癌SW480 細胞周期的影響
流式細胞儀檢測各組細胞經不同處理后的細胞凋亡的改變,結果顯示,多西紫杉醇可提高放療誘導的凋亡(P < 0.05)。 見表5。
表5 多西紫杉醇不聯合或聯合放射線對人腸癌細胞SW480 凋亡的影響(%,s)

表5 多西紫杉醇不聯合或聯合放射線對人腸癌細胞SW480 凋亡的影響(%,s)
注:與對照組比較,#P < 0.05;與放療組比較,*P < 0.05
對照組多西紫杉醇組放療組多西紫杉醇+放療組1.43±0.05 18.33±0.32#8.98±0.03#21.54±0.22#*
直腸癌常使用放療作為局部治療方法,在直腸癌的綜合治療中,放療扮演著重要角色。但臨床上,直腸癌患者對放射治療的敏感性表現各異,可能是因為腫瘤細胞乏氧的程度有差異, 同時腫瘤本身存在異質性,并且直腸癌放療可以引起消化道出血、疼痛、穿孔等放療反應, 尤其是在超過正常組織耐受劑量情況下,反應更為強烈,患者難以耐受。高效低毒的放射增敏劑可提高直腸癌放療效果, 提高患者生活質量,成為腫瘤放射治療的研究熱點[1]。
多西紫杉醇是一種半合成的紫杉醇類抗腫瘤新藥,作用于細胞的微管系統,在腫瘤細胞有絲分裂時,能促進微管聚合,同時抑制微管解聚,使游離微管減少,影響細胞有絲分裂的進行,引起腫瘤細胞死亡。多項研究證實,多西紫杉醇對頭頸部惡性腫瘤、卵巢癌、非小細胞肺癌和乳腺癌等多種細胞株都有抑制增殖的作用,同時腫瘤細胞的凋亡增加。深入研究發現,多西紫杉醇可引起細胞bcl-2 基因磷酸化而失活,同時bax基因過度表達,從而誘導了腫瘤細胞凋亡增加[5-6]。 另外,大量的動物實驗及臨床研究證實,多西紫杉醇能提高宮頸癌、非小細胞肺癌、乳腺癌等細胞的放射敏感性[2-3]。 本研究表明, 多西紫杉醇對大腸癌細胞系SW480 有類似作用, 多西紫杉醇對大腸癌細胞系SW480 的生長抑制作用有一定的劑量和時間依賴性;多西紫杉醇+放療組的D0、Dq、SF2值均比單純照射組低,5 μg/mL 多西紫杉醇SER 值為1.73;SW480 細胞經多西紫杉醇處理后對射線更敏感,細胞凋亡增加,多西紫杉醇+放療組凋亡發生率為(21.54±0.22)%,明顯高于單獨放療組。本研究顯示多西紫杉醇對大腸癌細胞系SW480 有放射增敏作用, 說明多西紫杉醇對SW480 細胞是一種良好的放射增敏劑。
細胞對放射線的敏感性與所處的細胞周期時相相關,G2/M 期最敏感,S 期對放射抗拒[7]。 不同化療藥物作用機制和環節不同,大多可改變細胞周期。 有目的使用化療藥物,從而改變細胞周期,可增加放射敏感性,對腫瘤治療有重要意義。有研究表明,多西紫杉醇具有放射增敏作用,表現為腫瘤細胞G2/M 期阻滯,同時乏氧細胞再氧合,從而對射線敏感性增加[2]。本研究發現,多西紫杉醇可以使SW480 細胞的G2/M 期比例升高(46.24±0.07)%比(32.19±0.47)%,多西紫杉醇+放療組更高達(58.08±0.05)%,S 期比例降低。 提示多西紫杉醇使細胞周期重新分布, 各期比例變化,G2/M 期腸癌細胞比例增加, 放療后細胞凋亡明顯增加。
綜上所述,本實驗顯示,多西紫杉醇對大腸癌細胞具放射增敏作用,其機制可能是改變了腸癌細胞的周期分布,誘導其凋亡增加。 本實驗探索為直腸癌的治療提供了新的手段和方法,但其分子機制及臨床使用的時機、劑量和策略仍需進一步探索和深入研究。
[1] Nilsson PJ,van Etten B,Hospers GA,et al.Short-course radiotherapy followed by neo-adjuvant chemotherapy in locally advanced rectal cancer-the RAPIDO trial[J].BMC Cancer,2013,13:279.
[2] Tabuchi S,Ozawa S,Koyanagi K,et al. Radiation-sensitizing effect of low-concentration docetaxel on human esophageal squamous cell carcinoma cell lines [J]. Exp Ther Med,2011,2(4):601-606.
[3] Chen Y,Pandya KJ,Hyrien O,et al.Preclinical and pilot clinical studies of docetaxel chemoradiation for Stage Ⅲnon-smallcell lung cancer[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2011,80(5):1358-1364.
[4] Xia S,Yu S,Fu Q,et al. Inhibiting PI3K/Akt pathway increases DNA damage of cervical carcinoma Hela cells by drug radiosensitization [J]. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2010,30(3):360-364.
[5] Pereira MC,de Bessa-Garcia SA,Burikhanov R,et al. Prostate apoptosis response-4 is involved in the apoptosis response to docetaxel in MCF-7 breast cancer cells [J]. Int J Oncol,2013,43(2):531-538.
[6] Manandhar S,Choi BH,Jung KA,et al. NRF2 inhibition represses ErbB2 signaling in ovarian carcinoma cells:implications for tumor growth retardation and docetaxel sensitivity [J].Free Radic Biol Med,2012,52(9):1773-1785.
[7] Milanovi D,Firat E,Grosu AL,et al. Increased radiosensitivity and radiothermosensitivity of human pancreatic MIA PaCa-2 and U251 glioblastoma cell lines treated with the novel Hsp90 inhibitor NVP-HSP990 [J]. Radiat Oncol,2013,8:42.