吳端欽,賀志雄,湯少勛,譚支良*
1中國科學(xué)院亞熱帶農(nóng)業(yè)生態(tài)研究所 亞熱帶農(nóng)業(yè)生態(tài)過程重點實驗室,湖南省畜禽健康養(yǎng)殖工程技術(shù)中心,農(nóng)業(yè)部中南動物營養(yǎng)與飼料科學(xué)觀測實驗站,長沙 410125;2 中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049
在反芻動物瘤胃代謝過程中,反芻動物在能量代謝過程中,因甲烷形式損失的能量占飼料總能(GE)的2%~12%。家養(yǎng)反芻動物每年往大氣中排放約80 Tg 甲烷,占到跟人類活動有關(guān)排放甲烷量的22%。因此,通過飼糧營養(yǎng)調(diào)控來減少反芻動物甲烷的排放量,不僅可以提高反芻動物對能量的利用效率,還將帶來良好的生態(tài)收益。
多不飽和脂肪酸對瘤胃微生物有較強的抑制作用,富含多不飽和脂肪酸的植物油如葵花籽油,可以顯著的降低甲烷的生成,降低乙酸比例,提高丙酸比例,改變瘤胃的發(fā)酵模式[1]。有研究發(fā)現(xiàn)動物日糧中補充一些天然植物油,還可以增加動物產(chǎn)品中一些對人體有益的不飽和脂肪酸(如:共軛亞油酸)的含量。Benchaar 等[2]在奶牛的日糧中添加不同水平的LSO,發(fā)現(xiàn)乳中一些對人體健康有益的脂肪酸成分(如:trans-11 18∶1,cis-9,trans-11 18∶2)的含量,隨著LSO 添加水平的增加而增加。本研究利用體外法研究添加不同水平的LSO,探索對甲烷生成、瘤胃發(fā)酵及脂肪酸中間產(chǎn)物的影響。
試驗用LSO 購自甘肅天水隴上農(nóng)家植物油加工中心,體外培養(yǎng)底物為羊草,過1 mm 篩網(wǎng)。
試驗動物為四頭安裝永久性瘤胃瘺管的瀏陽黑山羊(體重為25 ± 2 kg),單籠飼養(yǎng),作為瘤胃液供體。飼喂按照中國地方山羊營養(yǎng)需要,并結(jié)合美國NRC 營養(yǎng)需要,配制山羊日糧,精粗比為30∶70,粗飼料為當(dāng)?shù)氐挠衩捉斩挕T缟?:00 點和晚上8:00各喂一次,自由采食、飲水。
晨飼前2 h,利用手動真空管采集每頭羊的瘤胃液,放入事先預(yù)熱(39 ℃)且充滿CO2氣體的保溫瓶中。在持續(xù)通CO2的條件下,將四只羊的瘤胃液混合均勻,過四層醫(yī)用紗布,待用。
試驗底物為粉碎的羊草,LSO 為天然傳統(tǒng)壓榨法制作而成。試驗分三個處理組:對照組(Control)、底物+5% LSO 組和底物+10% LSO 組,每組三個重復(fù)。緩沖液配制參照Goering and Van Soest(1970)[3]配方。體外培養(yǎng)體系為瘤胃液:緩沖液=1:4,底物為50 mg,39 ℃條件下恒溫水浴,振蕩培養(yǎng)48 h。
用壓力傳感器(昆山雙橋傳感器測控技術(shù)有限公司)測定12、24 和48 h 產(chǎn)氣壓力,并用相應(yīng)公式轉(zhuǎn)變成產(chǎn)氣量。在培養(yǎng)12、24 和48 h 時間點,分別抽取兩管氣體(5 mL/管),測定甲烷及氫氣含量。甲烷測定利用配備了火焰-離子化檢測的7890 型氣相色譜(安捷倫),測定氣相柱為Hayesep Q 填充柱(2.44 m × 1/8 in.,2.0 mm ID),氣相柱和檢測器溫度分別為60 ℃和100 ℃,維持3 min,氮氣為載氣,流速為21 mL/min。氫氣測定所用的儀器與測定甲烷所用的為同臺儀器,柱溫設(shè)為60 ℃,維持2.5 min,其余檢測條件與測定甲烷相同。
48 h 培養(yǎng)結(jié)束后,用pH 計(型號:PHS-3C,上海精密科學(xué)儀器有限公司)立即測定發(fā)酵液的pH 值。取5 mL 發(fā)酵培養(yǎng)液,-20 ℃冷凍保存,待測。VFA濃度具體測定參照Vanzant 和Cochran(1994)[4]的方法,氨氮濃度測定參照Weatherburn(1967)[5]方法。
發(fā)酵液中脂肪酸按照Bligh 和Dyer[6]描述的方法進行提取,根據(jù)Ichihara 等[7](1996)的操作步驟進行脂肪酸甲酯化。然后用配備了火焰-離子檢測器的5890 型氣相色譜(安捷倫),氣相柱為CP-Sil 88 熔融石英毛細管柱(100 m × 0.25 mm,0.2 μm),H2為載體。升溫程序為:爐溫開始為45 ℃,維持4 min,以13 ℃升溫速度升到175 ℃,維持27 min,然后再以4 ℃升溫速度升到215 ℃,維持35 min,測定時間為86 min。
試驗數(shù)據(jù)利用Excel 2010 整理后,采用SAS 軟件的廣義線性模型(GLM)對數(shù)據(jù)進行顯著性分析,多重比較采用Duncan 氏法。P <0.05 表示差異性顯著。

圖1 體外添加不同水平的LSO 對總氣體產(chǎn)量的影響Fig.1 Effects of addition of different levels of linseed oil on gas production in vitro
由圖1 可以看出,在整個培養(yǎng)期間,對照組的產(chǎn)氣量均高于添加LSO 處理組,而且在13~48 h 培養(yǎng)時段中,對照組的產(chǎn)氣量極顯著高于兩個LSO 添加組(P <0.01),但是添加LSO 的兩個處理組之間差異不顯著(P >0.05)。

圖2 體外添加不同水平的LSO 對甲烷和氫氣產(chǎn)量的影響Fig.2 Effects of addition of different levels of linseed oil on CH4and H2production in vitro
圖2(I)顯示,在培養(yǎng)開始的前12 h 時段中,對照組的甲烷產(chǎn)量顯著高于(P <0.05)10% LSO 添加組,5% LSO 添加組的甲烷產(chǎn)量低于對照組,但是它們之間差異不顯著(P >0.05);在13~24 h 培養(yǎng)時段中,對照組的甲烷產(chǎn)量極顯著(P <0.01)高于兩個LSO 添加組,而5% LSO 添加組的甲烷產(chǎn)量極顯著(P <0.01)高于10%添加組;在25~48 h 培養(yǎng)階段,對照組的甲烷產(chǎn)量極顯著(P <0.01)高于兩個LSO 添加組,而5% LSO 添加組顯著(P <0.05)高于10%添加組。圖2(II)表明,在培養(yǎng)的前24 h,各組之間的氫氣產(chǎn)量均無顯著差異(P >0.05),但隨著LSO 添加量的增加而呈現(xiàn)出增加的趨勢;在25~48 h 培養(yǎng)時段,對照組的氫氣產(chǎn)量極顯著(P <0.01)低于另外兩組,同時,5% LSO 添加組顯著(P<0.05)低于10%的添加組。

表1 體外添加不同水平的LSO 對瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響Table 1 Effects of addition of different levels of linseed oil on rumen fermentation parameters in vitro
由表1 可以看出,對照組發(fā)酵液中的乙酸和丙酸濃度極顯著(P <0.01)低于LSO 添加組,并且兩個LSO 添加組之間無顯著差異(P >0.05);對照組發(fā)酵液中異丁酸和異戊酸的濃度顯著(P <0.05)低于5% LSO 添加組;對照組發(fā)酵液中丁酸和總揮發(fā)性脂肪酸的濃度極顯著低于(P < 0.01)兩個LSO 添加組,但是兩個LSO 添加組之間差異不顯著(P >0.05);對照組的乙丙比顯著(P <0.05)高于5% LSO 添加組,極顯著(P <0.01)高于10%LSO 添加組,但是兩個LSO 添加組之間差異不顯著(P >0.05)。
發(fā)酵液的pH 值隨著LSO 添加劑量的增加而下降,10% LSO 添加組極顯著(P <0.01)低于對照組,顯著(P <0.05)低于5%添加組。同樣,發(fā)酵液中的氨態(tài)氮濃度隨著LSO 添加劑量的增加而下降,對照組中氨氮的濃度極顯著(P <0.01)高于兩個LSO 添加組,而5% LSO 添加組顯著(P <0.05)高于10%組。

表2 體外添加不同水平的LSO 酸對發(fā)酵液中脂肪酸的影響(%)Table 2 Effects of addition of different levels of linseed oil on fatty acids in vitro (%)
從表2 中可以看出,添加LSO 對發(fā)酵液中的一些中長鏈脂肪酸(C15∶0-C17∶0)沒有顯著影響,同樣發(fā)酵液中長鏈脂肪酸(C18∶0)的含量,也沒有顯著變化,但是隨著LSO 添加量的增加,C18∶0 的含量有增加的趨勢;同樣,添加LSO 對發(fā)酵液中C18∶1、t11-TVA 和C18∶1,C11 的含量也沒有達到顯著影響;對照組發(fā)酵液中C18∶1,C9 的含量極顯著(P <0.01)高于5% LSO 添加組,顯著(P <0.05)高于10% LSO 添加組;對照組發(fā)酵液中沒有檢測到共軛亞油酸的兩種同分異構(gòu)體(C18 ∶2,c9t11-CLA 和C18∶2,t11t13-CLA),而添加LSO 處理中這兩種同分異構(gòu)體的含量較為豐富;添加LSO 對C18 ∶2、c9t11-CLA 的含量沒有顯著影響,5% LSO 添加組發(fā)酵液中C18∶2、t11t13-CLA 的含量顯著(P <0.05)高于10% LSO 添加組;添加LSO 對TSFA、TMUFA、TPUFA、Ttrans、TCLA、Tn-3PUFA 和Tn-6PUFA 的含量均沒有顯著影響,但是LSO 添加組中發(fā)酵液中的TMUFA、TPUFA、Ttrans 和TCLA 含量高于對照組。
在本研究中,富含多不飽和脂肪酸的LSO 降低了總產(chǎn)氣量和甲烷生成量,隨著添加劑量的增加,抑制總氣體和甲烷產(chǎn)量的效果也顯著增強(圖1、圖2I),但是氫氣的產(chǎn)量卻是增加的(圖 2II)。Wanapat 等[8]綜述了前人所報道的一些體內(nèi)和體外試驗,認為當(dāng)日糧添加植物油時,對瘤胃發(fā)酵和甲烷的生成均有顯著影響。本研究與上述報道一致。反芻動物采食飼料后,飼料經(jīng)過瘤胃微生物降解可生成揮發(fā)性脂肪酸和氫氣。在本研究中,添加亞麻籽油增加了氫氣的產(chǎn)量,這可能是由于亞麻籽油中的不飽和脂肪酸對甲烷菌的抑制,減少了甲烷菌對氫的利用,導(dǎo)致了氫氣產(chǎn)量的增加。
本研究中富含多不飽和脂肪酸的LSO 顯著改變了瘤胃發(fā)酵類型,不同劑量添加組顯著增加了總揮發(fā)性脂肪酸含量(P < 0.01),降低了(P <0.01)乙酸比例,提高了(P <0.01)丙酸比例,降低了(P <0.05 或P <0.01)乙酸丙酸比例。Pilajun和Wanapat[9]也觀察到了類似的結(jié)果。添加LSO 發(fā)酵48 h 后pH 顯著被降低,這可能是因為添加的LSO 經(jīng)過微生物作用,釋放出自由脂肪酸以及發(fā)酵液中揮發(fā)性脂肪酸的增加所導(dǎo)致。本研究中添加LSO 顯著降低了發(fā)酵液中的銨態(tài)氮濃度,Jalc 等[10]進行的體外發(fā)酵試驗,添加亞麻酸處理組也觀察到了類似的結(jié)果。這可能是由于不飽和脂肪酸抑制發(fā)酵液中的瘤胃原蟲和細菌所造成的。
瘤胃中脂肪代謝是瘤胃微生物首先將飼料中的糖脂、磷脂和甘油三脂等進行水解,釋放出自由的脂肪酸,然后進行氫化、異構(gòu)等過程。在本試驗中,添加LSO 增加了發(fā)酵液中的飽和脂肪酸的比例(C18∶0),而這是反芻動物日糧中補充植物油一個典型特征。對照組中C18∶1,C9 所占總脂肪酸比例顯著(P <0.05 或P <0.01)高于LSO 添加組,這可能是由于處理組中其他脂肪酸的含量增加,因此C18∶1,C9 比例相對較低。對照組中沒有檢出兩種共軛亞油酸(cis9,trans11-CLA,trans11,trans13-CLA),但是LSO 添加組均有檢測到這兩種共軛亞油酸。Loor等[11]在奶牛日糧中添加LSO,也發(fā)現(xiàn)增加了十二指腸流中的cis9,-trans11-CLA 和trans11,trans13-CLA的含量。Flachowsky 等[12]給飼喂日糧(精粗比為70∶30 干物質(zhì)基礎(chǔ))的奶牛每天補充200 g LSO,發(fā)現(xiàn)十二指腸流中TMUFA、TPUFA、Ttrans 和TCLA 的含量得到大幅度的提高。本研究中,添加LSO 組發(fā)酵液中也發(fā)現(xiàn)了類似的結(jié)果。
綜上所述,體外添加富含多不飽和脂肪酸的LSO 顯著抑制了甲烷生成,瘤胃發(fā)酵模式向丙酸型發(fā)酵轉(zhuǎn)變,而且效果隨著添加水平的增加而顯著加強。同時,添加LSO 提高了發(fā)酵液中對人體有益的脂肪酸的含量,有利于這些脂肪酸沉積到動物產(chǎn)品中,改善動物產(chǎn)品的質(zhì)量。
1 Beauchemin KA,McGinn SM,Benchaar C,et al.Crushed sunflower,flax,or canola seeds in lactating dairy cow diets:Effects on methane production,rumen fermentation,and milkproduction.J Dairy Sci,2009,92:2118-2127.
2 Benchaar C,Romero-Pérez GA,Chouinard PY,et al.Supplementation of increasing amounts of linseed oil to dairy cows fed total mixed rations:Effects on digestion,ruminal fermentation characteristics,protozoal populations,and milk fatty acid composition.J Dairy Sci,2012,95:4578-4590.
3 Goering HK,Van Soest PJ.Forage fiber analysis(apparatus,reagents,procedures,and some applications).Agric.Handbook,1970,No.379.ARS-USDA,Washington,DC.
4 Vanzant ES,Cochran RC.Performance and forage utilization by beef cattle receiving increasing amounts of alfalfa hay as a supplement to low-quality,tallgrass-prairie forage.J Anim Sci,1994,72:1059-1067.
5 Weatherburn MW.Phenol-Hypochlorite reaction for determination of ammonia.Anal Chem,1967,39:971-974.
6 Bligh EG,Dyer WJ.A rapid method of total lipid extraction and purification.Can J Biochem Phys,1959,37:911-917.
7 Ichihara K,Shibahara A,Yamamoto K,et al.An improved method for rapid analysis of the fatty acids of glycerolipids.Lipids,1996,31:535-539.
8 Wanapat M,Kongmun P,Poungchompu O,et al.Effects of plants containing secondary compounds and plant oils on rumen fermentation and ecology.Trop Anim Health Pro,2012,44:399-405.
9 Pilajun R,Wanapat M.Effect of coconut oil and mangosteen peel supplementation on ruminal fermentation,microbial population,and microbial protein synthesis in swamp buffaloes.Livest Sci,2011,141:148-154.
10 Jalc D,Certik M,Kundrikova K,et al.Effect of unsaturated C-18 fatty acids(oleic,linoleic and alpha-linolenic acid)on ruminal fermentation and production of fatty acid isomers in an artificial rumen.Vet Med-Czech,2007,52:87-94.
11 Loor JJ,Ueda K,F(xiàn)erlay A,et al.Biohydrogenation,duodenal flow,and intestinal digestibility of trans fatty acids and conjugated linoleic acids in response to dietary forage:concentrate ratio and linseed oil in dairy cows.J Dairy Sci,2004,87:2472-2485.
12 Flachowsky G,Erdmann K,Huther L,et al.Influence of roughage/concentrate ratio and linseed oil on the concentration of trans-fatty acids and conjugated linoleic acid in duodenal chyme and milk fat of late lactating cows.Arch Anim Nutr,2006,60:501-511.