999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

細胞直接重編程
——治療糖尿病的新技術*

2014-01-25 21:08:41任麗偉楊曉菲李富榮
中國病理生理雜志 2014年12期
關鍵詞:胰島素糖尿病

任麗偉, 楊曉菲, 李富榮

(暨南大學第二臨床醫學院,深圳市人民醫院干細胞與細胞治療重點實驗室,廣東 深圳 518020)

·綜 述·

細胞直接重編程
——治療糖尿病的新技術*

任麗偉, 楊曉菲, 李富榮△

(暨南大學第二臨床醫學院,深圳市人民醫院干細胞與細胞治療重點實驗室,廣東 深圳 518020)

糖尿病是一類伴有不同程度胰島素分泌缺乏或胰島功能障礙的代謝性疾病。已成為繼心血管病和腫瘤之后嚴重危害人類健康的第三大慢性疾病和全球第五大致死疾病。其目前的治療方法主要是長期服用藥物和注射胰島素,沒有根治手段。糖尿病患者的血管、神經等長期受血糖水平波動變化的影響產生一系列的病理變化,其中發病率最高的并發癥為白內障、神經系統病變和背景性視網膜病變,給眾多患者的生活、工作帶來極大的困擾,所以尋找治愈糖尿病的新方法成為一件亟待解決的難題。胰島細胞替代治療和再生治療或將成為未來治愈糖尿病的有效途徑之一[1],但由于胰島供體缺乏,免疫排斥反應,以及各種干細胞[2-3]向胰島β細胞的轉分化效率低、成熟度差和致瘤風險等問題無法在臨床推廣和應用。近來,新發展的細胞直接重編程(cell direct reprogramming)技術,可將一種終末分化細胞直接轉變為另一種終末分化的細胞,不需要經過將成體細胞重編程為胚胎樣干細胞、再由胚胎樣干細胞分化為另一種終末分化細胞,避免了操作的復雜性,細胞免疫排斥反應以及倫理學和法律問題等。可以將體內富裕細胞直接重編程為胰島β細胞,為糖尿病患者提供缺失的胰島β細胞[4]。它有可能成為治療或治愈糖尿病的新方法。下面將圍繞體細胞直接重編程為胰島β細胞研究進展做一綜述。

1 細胞直接重編程技術與原理

細胞直接重編程是將一種已分化的細胞不經過去分化與再分化過程直接轉分化為另一種細胞。重編程包括兩個方面的內容:一是轉決定——是多/雙潛能細胞向目的細胞的分化,這種細胞在正常生理條件下不具有分化為目的細胞的能力[5];二是轉分化(即直接重編程)——一種終末分化的體細胞向另外一種終末分化體細胞的轉化。重編程應用各種手段影響基因的表達,實現細胞類型的轉變,使細胞表現出目的細胞的功能[6]。

已分化的體細胞含有生物個體生長發育的全部基因,而組織細胞生長分化的過程即是不同基因的選擇性表達過程。細胞直接重編程也是一個基因選擇性表達的過程,在直接重編程中最關鍵的誘導因素是轉錄因子。轉錄因子(transcription factor)是一群能與基因5’端上游特定序列專一性結合,從而保證目的基因在正確位置表達蛋白質分子。特定的轉錄因子與沉默的特定基因結合,干擾原有的基因表達譜表達目的基因,即完成了重編程過程。此過程獲得了特殊功能的細胞,就可以對相關細胞損傷和功能缺失類疾病進行補充。細胞直接重編程作為再生醫學的分支,可通過對體內細胞直接重編程應用于臨床疾病治療[7]。

2 體細胞直接重編程為胰島β細胞

2.1 胰腺其它細胞直接重編程為胰島β細胞 胰腺中β細胞外的其它細胞應該是與β細胞同源性最接近的群體,它們之間具有更多相同的表觀遺傳特點[2],并且與β細胞有著相似的周圍環境,利于重編的β細胞功能的激發。胰十二指腸同源盒1(pancreatic and duodenal homeobox factor 1, Pdx1)作為胰腺分化的第一個轉錄因子,在β細胞中高表達,在胰腺外分泌細胞中低表達,卻未在α細胞中表達[8]。Zhou等[9]利用腺病毒在胰腺細胞中優先感染外分泌細胞,而不是α細胞等內分泌細胞這一現象,將裝有轉錄因子的腺病毒直接注入小鼠胰腺,獲得外分泌細胞向β細胞直接重編程的最佳轉錄因子組合——Pdx1+ 神經元素3(neurogenin 3, Ngn3)+肌腱膜纖維肉瘤癌基因同系物A(v-maf musculoaponeurotic fibrosareoma oncogene homologue A, MafA)。形成的胰島素分泌細胞散落在外分泌細胞間,其形態、超微結構和基因表達均與正常β細胞相似。重編的胰島素分泌細胞周圍有新血管形成,如此一來,分泌的胰島素就可迅速進入血液循環并運送至全身而發揮作用,降低血糖水平。但是幾乎所有被標記的重編β細胞兼具備外分泌細胞的特征。2012年,Akinci等[10]選擇AR42j-B13 的外分泌細胞系為對象做體外實驗,同樣利用轉錄因子Pdx1、 Ngn3和MafA的組合同時轉染,之后外分泌細胞系特性消失,細胞停止分裂并出現形態扁平的變化。直接重編程后的細胞基因表達也發生改變,外分泌細胞有關的基因表達受到抑制,而內分泌的胰島素基因表達上調。分泌的胰島素可逆轉高血糖水平,但其分泌不具葡萄糖刺激性。但是,若細胞以恒定速率分泌胰島素,機體將存在高糖不降或低血糖的風險。另外,直接重編程的胰島素分泌細胞成熟度很低,胰島β細胞的其它重要基因,如葡萄糖轉運載體-2(glucose transporter-2, Glut2)和形成 ATP敏感性鉀通道-KATP通道中心通透孔的亞基-kir6.2未能表達,并且其在體內誘導的胰島素分泌細胞的形態似外分泌細胞。之后,Lima等[11]分離人體胰島外分泌細胞并在體外培養,發現其迅速去分化為單層間質細胞,將Pdx1、Ngn3、MafA和配對盒基因4(paired box gene,Pax4)等4種轉錄因子導入該細胞,獲得了分泌胰高血糖素的α樣細胞。為獲得β樣細胞,他們將分離的人體外分泌細胞在無血清培養基中培養,并向其中加入上皮向間質轉化的抑制劑——Rho相關類激酶和轉化生長因子-β1抑制劑,最終獲得了葡萄糖敏感的胰島素分泌細胞。該細胞經腎包膜下移植入非肥胖糖尿病/重癥聯合免疫缺陷(nonobese diabetic/severe combined immunodeficiency disease, NOD/SCID)小鼠后緩解了血糖水平,有一定的治療效果。 Lee等[12]特異性地將人體胰島外分泌細胞中的導管細胞分離出來,證明其可直接重編程為β樣細胞,并找到了比Pdx1+Ngn3+MafA更高效率的轉錄因子組合——Pdx1、Ngn3、MafA和配對盒6(paired box gene 6,Pax6)。

Al-Hasani等[13]構建轉基因小鼠使Pax4在胰島α細胞中表達,獲得了過度增生的胰島β細胞團,并且胰島內的其它內分泌細胞(α細胞、D細胞等)數量均有一定程度的增加。在胰腺的正常胚胎發育過程中,胰腺內分泌細胞的分化不是同時發生的,α細胞的分化要先于β細胞[14-15]。他們發現Pax4在α細胞中的錯誤表達,使其轉變為β細胞,并且激活了整個胰腺內分泌細胞的再生,并對β細胞的再生過程作了詳細的研究。Pax4在α細胞中的異位表達動員導管內皮前體細胞重新表達Ngn3,Ngn3調節小鼠的上皮間質轉化,導管內皮細胞隨之增殖分化為α細胞,α細胞之后轉化為β細胞。這一過程與胚胎胰腺的發育一致。并且此增殖過程可被多次誘導。Xiao等[16]激活胰腺導管細胞中Ngn3的表達,卻沒有出現導管細胞向β細胞的轉化。

調節人體血糖的胰島內分泌細胞不僅包括β細胞,α和δ細胞也在糖代謝的過程中起重要作用。若是糖尿病的治療只考慮到降糖激素而忽略了升糖激素,其結果得不償失。Li等[17]應用以胰腺腺泡細胞為靶細胞的腺病毒,將Pdx1、Ngn3和MafA三個轉錄因子按照不同組合轉染腺泡細胞。Pdx1+Ngn3+MafA組獲得了經腺泡細胞轉化而來的β樣細胞,Ngn3+MafA組獲得了α樣和δ樣特殊分化的2種細胞,而單獨的轉錄因子Ngn3將腺泡細胞轉化為δ樣細胞。這就強調了Ngn3在建立胰島內分泌狀態及其獨自提高δ細胞特殊分化的的重要作用。所以在進行重編程的過程中應著重強調各個轉錄因子發揮作用的時間及順序,以獲得在正常胰島環境中的β細胞,穩定血糖。

Akinci等[10]還對直接重編程細胞的染色質進行研究,證明Pdx1、 前胰島素原1(preproinsulin 1, Ins1)和Ins2基因啟動子組蛋白尾部的修飾與基因活性具有直接關系,直接重編后的細胞Ins1啟動子的DNA CpG島的甲基化減少。Bramswig等[18]也發現胰島α細胞和β細胞在組蛋白修飾上的差別——絕大部分α細胞中組蛋白H3第4位賴氨酸的三甲基化修飾(histone H3 lysine 4 trimethylation, H3K4me3) 和組蛋白H3第27位賴氨酸上三甲基化(histone H3 lysine 27 trimethylation, H3K27me3) 同時存在,而β細胞一般只有其中一種形式,即H3K4me3 或H3K27me3。H3K4me3通常與基因的激活有關,H3K27me3則與轉錄抑制有關。這2個標記出現在同一個基因上時被稱為二價標記,它多出現在多潛能、未分化的細胞。那么就表明α細胞的分化程度比β細胞低。這與在胚胎的發育過程中,α細胞的分化先于β細胞是一致的[14]。Pdx1的表達在α細胞中存在H3K27me3的這一抑制信號,將H3K27me3抑制則Pdx1得到激活,通過表觀遺傳的可塑性應用組蛋白甲基化抑制劑將α細胞直接重編為β樣細胞。

另外,甲狀腺激素可與核內受體結合以調控依賴配基的轉錄因子,進而增強或減弱基因的表達,甲狀腺激素受體α(thyroid hormone receptor α,TRα)對β細胞團的增殖起著重要作用,可以讓胰島恢復功能[19]。實驗使用L-3,5,3-三碘甲狀腺氨酸處理腺泡細胞,增強TRα與磷酸肌醇3激酶的亞基——P85α的聯合,促進蛋白激酶B的活化,激活Pdx1、Ngn3、MafA在腺泡細胞的表達,而降低外分泌細胞基因表達,上調內分泌細胞基因表達。這在一定程度上說明了機體內的代謝物質或器官是相互作用的,對于糖尿病的臨床治療具有指導作用。

2.2 肝細胞直接重編程為胰島β細胞 肝臟和胰腺同來源于腹側內胚層的雙潛能細胞,肝細胞和胰腺細胞之間可以相互轉化,并且認為胰腺組織中有類似肝卵圓細胞存在,而這種細胞可以通過移植而轉分化為功能性肝細胞[4]。肝臟和胰腺在功能上也是相互聯系,尤其是在糖代謝方面[8]。那么肝臟與胰腺的同源性和肝臟細胞向胰島β細胞的轉化就有據可依。在體外實現肝細胞向胰島β細胞的直接重編程不僅需要特定的轉錄因子,而且對細胞培養的微環境有特殊要求。最適的微環境和合適的轉錄因子都是直接重編程成功的關鍵。在轉錄因子水平,是Pdx1啟動了胰腺在早期前腸階段的分化,將胰腺與十二指腸、肝臟和膽管分開[20]。Cao等[21]將大鼠的肝細胞系細胞中轉染Pdx1-VP16獲得胰腺內分泌祖細胞,經實驗對比發現了在體外獲取具有功能的胰島素分泌細胞的一個必要微環境——高糖培養基。轉錄因子Pax4具有促進Pdx1表達上調的作用,并提高轉分化細胞的葡萄糖刺激性[22],促胰島素分泌肽-4與胰高血糖素樣肽1有53%的同源性,亦可強化Pdx1的作用[23]。高糖培養基作為向β細胞轉化的促進因子,恰好模擬了2型糖尿病發生發展中由于胰島素抵抗引起的胰島素分泌增多的代償過程。

對于肝臟細胞進一步直接重編程為胰島β細胞而非胰腺外分泌細胞,Yechoor等[24]發現只用Ngn3就足以將肝臟前體細胞直接重編程功能完整的β細胞:(1)可逆轉高血糖; (2)葡萄糖刺激性的胰島素分泌;(3)具有β細胞的特異性轉錄;(4)具有胰島的特異性轉錄級聯;(5)分泌胰島的4種激素;(6)不能將肝細胞完全直接重編程為成熟的胰島β細胞。在體內肝臟的卵原細胞也僅僅在Ngn3單獨的轉錄因子作用下獲得了功能較為完整β細胞,并可長時間逆轉糖尿病小鼠的血糖[25]。Limbert等[26]對骨髓間充質干細胞的實驗也說明單獨依靠Ngn3就足以啟動與β細胞系有關的最主要的基因如Pdx1的表達。

Hickey等[27]將分化程度高且相對豐富的膽囊細胞進行直接重編程,應用Pdx1、MafA和Ngn3三者組合的轉錄因子進行轉染。細胞經轉染2 d后即表達胰島素和其它與β細胞相關的基因和蛋白。但是結果不理想,直接重編程的細胞不成熟。其多種內分泌激素的分泌,不受葡萄糖的刺激。將其移植入糖尿病小鼠體內發現移植部位有胰島素分泌細胞,但沒有降糖作用。RNA測序結果顯示誘導后的細胞跟正常胰島細胞相比,上千個基因表達存在差異,但膽囊的上皮細胞相對成纖維細胞更容易直接重編程成胰島β細胞。

Banga等[28]用另一種Pdx1、Ngn3和MafA的轉錄因子組合,通過小鼠的尾靜脈注入體內,僅在肝臟出現胰島素分泌細胞。重編的胰島素分泌細胞形態為離散的導管細胞,經分離檢測后發現其均為Y染色體性別決定區域相關的高速泳動族框因子9 [SRY (sex determining region Y) box 9,SOX9]陽性細胞。而SOX9+細胞起源于導管細胞發展的平臺期,是導管時期的早期細胞,并且自出生以后只在小導管中表達,在大導管中無表達。直接重編程的胰島β細胞有一定的成熟度(β細胞相應的標志——胰島素分泌顆粒、C-肽、葡萄糖刺激的胰島素分泌等),并與周圍的小血管聯系將分泌的胰島素注入血流,但胰島素的分泌量不足以使血糖恢復正常水平,還具有其它細胞的特征[導管樣形態、細胞角蛋白19(cytokeratin,CK19)陽性、上皮性鈣黏附蛋白(epithelium cadherin,E-cadherin)陽性、分泌胰高血糖素等]。由于不同的轉錄因子作用在細胞分化的不同時段,Berneman-Zeitouni等[29]按照Pdx1、Pax4、MafA的順序,3種轉錄因子隔天轉染1個,獲得了比同時轉染更高的直接重編程效率。另外,NK6 同源框1作為成熟β細胞中表達的轉錄因子,可以激活Ngn3和Isl-1等β細胞的標志,還可以促進Pdx1直接重編程肝細胞為β細胞的成熟,或許對直接重編程β細胞的成熟具有關鍵作用[30]。

但是,肝臟本身也是機體攝取、儲存、合成和代謝葡萄糖的主要場所,在機體糖代謝中起著重要的作用,若是肝臟損傷亦會影響糖代謝或是導致肝性糖尿病。所以在體內對肝臟直接重編程β細胞實驗,結果顯示對肝臟沒有明顯損傷[28],但仍需考慮對肝臟細胞是否存在損傷。

2.3 其它細胞直接重編程為β細胞 肝膽細胞和胰腺細胞都在胚胎發育的過程來源于內胚層,它們之間的重編程屬于同一胚層之間的轉化。那么,是否存在跨胚層重編程的可能性呢?

Mauda-Havakuk等[31]完成了這種設想,將屬外胚層細胞的角質細胞直接重編程為β細胞。Pdx1作為向β細胞方向轉化的轉錄因子轉染角質細胞,獲得了胰島素分泌細胞,轉化效率為12.6%左右。直接重編程的細胞不僅分泌胰島素還分泌胰島其它內分泌激素——胰高血糖素、生長抑素,未有外分泌基因(淀粉酶)、肝臟基因——乙醇脫氫酶1b(alcohol dehydrogenase 1 b, ADH1b)和甲胎蛋白(alpha-fetoprotein, AFP)的表達。 Pdx1將角質細胞向胰島素分泌細胞的重編程還誘導出了內胚層的標志基因SOX17和GATA結合蛋白4(GATA binding protein 4,GATA4)的表達。

由于β細胞胰島素基因的組蛋白都是高度乙酰化并且比胰島中的其它細胞基因的甲基化程度低。Katz等[32]聯合Pdx1和羅咪酯肽(組蛋白脫乙酰酶抑制劑)、5-氮雜胞苷(不能被甲基化的胞嘧啶核苷類似物),將人皮膚纖維母細胞重編為胰島素、胰高血糖素分泌細胞。該細胞胰島素的分泌受葡萄糖的刺激,移植到糖尿病小鼠體內可降低其血糖。

3 展望

細胞直接重編程作為再生醫學的新興分支,用于細胞治療糖尿病等細胞不可逆性損傷疾病,展現出其獨特的優勢。直接重編程的細胞來源豐富,不僅可在同胚層的體細胞間進行轉化,還可以進行跨胚層轉化;另外,直接重編程的過程省卻了干細胞的環節,既規避了醫學倫理問題,又縮短去分化及再分化的復雜操作步驟與時間,還降低這一過程中畸胎瘤的發生;此外,若用于治療的重編細胞來源于自身細胞,就可避免免疫排斥反應,不用再像器官移植患者一樣長期服用免疫抑制劑。不同類型的糖尿病都是胰島素分泌不足(相對缺乏或者是絕對缺乏)所致,所以若是在體內經直接重編程技術形成具有生理性胰分泌模式的胰島素分泌細胞,其胰島素的分泌受到體內環境的反饋調節,穩定血糖在正常水平,那么,將可能治愈糖尿病。從此,糖尿病患者擺脫對胰島素注射的依賴和血糖大幅波動產生的各種并發癥,直接重編成技術可成為糖尿病治療的最有效手段。但是,目前重編仍有許多問題需要解決。首先,體細胞向β細胞的轉化效率較低,約20%左右;其次,重編程的β細胞的成熟度低,其表達多種細胞的標志基因,表達譜會介于重編細胞和β細胞之間。解決以上2個問題,必須從以下方面著手:選擇合適的體細胞來源,篩選合適的轉錄因子及組合,加強表觀遺傳的修飾和探索最適的重編程環境;另外,在直接重編程獲得β細胞同時,還需考慮血糖調控的α細胞,防止低血糖的發生。重編的β細胞在1型糖尿病患者是否仍舊會受到自身免疫損傷破壞也需要證明[33],以防止重編治療失敗。細胞直接重編程作為剛剛起步的新學科,有很多問題需要解決,但是,直接重編程給糖尿病等正常細胞缺乏、損傷性疾病的治療帶來曙光,成為新型的疾病治療策略。

[1] Efrat S, Russ HA. Making beta cells from adult tissues[J]. Trends Endocrinol Metab, 2012, 23(6): 278-285.

[2] 蔣旭超,謝志芳,章衛平,等.胰島β細胞發育與再生的研究進展[J].中國病理生理雜志,2013,29(10):1854-1858.

[3] 唐小龍,張 洹,朱康兒,等.PDX1聯合NKX6.1促進骨髓間充質干細胞分化為胰島β樣細胞[J].中國病理生理雜志,2009,25(8):1591-1599.

[4] Shen J, Cheng Y, Han Q, et al. Generating insulin-producing cells for diabetic therapy: existing strategies and new development[J]. Ageing Res Rev, 2013, 12(2): 469-478.

[5] Manohar R, Lagasse E. Transdetermination: a new trend in cellular reprogramming[J]. Mol The, 2009,17(6): 936-938.

[6] Slack JM. Metaplasia and transdifferentiation: from pure biology to the clinic[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2007, 8(5): 369-378.

[7] Morris SA, Daley GQ. A blueprint for engineering cell fate: current technologies to reprogram cell identity[J]. Cell Res,2013, 23(1): 33-48.

[8] Yi F, Liu GH, Izpisua BJC. Rejuvenating liver and pancreas through cell transdifferentiation[J]. Cell Res, 2012,22(4): 616-619.

[9] Zhou Q, Brown J, Kanarek A, et al.Invivoreprogramming of adult pancreatic exocrine cells to beta-cells[J]. Nature,2008,455(7213): 627-632.

[10]Akinci E, Banga A, Greder LV, et al. Reprogramming of pancreatic exocrine cells towards a beta (β) cell character using Pdx1, Ngn3 and MafA[J]. Biochem J, 2012, 442(3): 539-550.

[11]Lima MJ,Muir KR,Docherty HM,et al.Suppression of epithelial-to-mesenchymal transitioning enhancesexvivoreprogramming of human exocrine pancreatic tissue toward functional insulin-producing beta-like cells[J]. Diabetes, 2013,62(8): 2821-2833.

[12]Lee J, Sugiyama T, Liu Y, et al. Expansion and conversion of human pancreatic ductal cells into insulin-secreting endocrine cells[J]. Elife, 2013,2: e00940.

[13]Al-Hasani K, Pfeifer A, Courtney M, et al. Adult duct-lining cells can reprogram into beta-like cells able to counter repeated cycles of toxin-induced diabetes[J]. Dev Cell,2013, 26(1): 86-100.

[14]Murtaugh LC, Melton DA. Genes, signals, and lineages in pancreas development[J]. Annu Rev Cell Dev Bio, 2003, 19: 71-89.

[15]Akinci E, Banga A, Tungatt K, et al. Reprogramming of various cell types to a beta-like state by Pdx1, Ngn3 and MafA[J]. PLoS One,2013, 8(11): e82424.

[16]Xiao X, Guo P, Shiota C, et al. Neurogenin 3 activation is not sufficient to direct duct-to-beta cell transdifferentiation in the adult pancreas[J]. J Biol Chem, 2013, 288(35): 25297-2508.

[17]Li W, Nakanishi M, Zumsteg A, et al.Invivoreprogramming of pancreatic acinar cells to three islet endocrine subtypes[J]. Elife,2014, 3: e01846.

[18]Bramswig NC, Everett LJ, Schug J, et al. Epigenomic plasticity enables human pancreatic alpha to beta cell reprogramming[J]. J Clin Invest, 2013,123(3): 1275-1284.

[19]Furuya F, Shimura H, Asami K, et al. Ligand-bound thyroid hormone receptor contributes to reprogramming of pancreatic acinar cells into insulin-producing cells[J]. J Biol Chem,2013,288(22): 16155-16166.

[20]Gittes GK. Developmental biology of the pancreas: a comprehensive review[J]. Dev Bio, 2009, 326(1): 4-35.

[21]Cao LZ, Tang DQ, Horb ME, et al. High glucose is necessary for complete maturation of Pdx1-VP16-expressing hepatic cells into functional insulin-producing cells[J]. Diabetes, 2004, 53(12): 3168-3178.

[22]Tang DQ, Cao LZ, Chou W, et al. Role of Pax4 in Pdx1-VP16-mediated liver-to-endocrine pancreas transdifferentiation[J]. Lab Invest, 2006, 86(8): 829-841.

[23]Aviv V, Meivar-Levy I, Rachmut IH, et al. Exendin-4 promotes liver cell proliferation and enhances the PDX-1-induced liver to pancreas transdifferentiation process[J]. J Biol Chem, 2009,284(48): 33509-33520.

[24]Yechoor V, Liu V, Espiritu C, et al. Neurogenin 3 is sufficient for transdetermination of hepatic progenitor cells into neo-isletsinvivobut not transdifferentiation of hepatocytes[J]. Dev Cell, 2009, 16(3): 358-373.

[25]Li Y, Zhao LJ, Xia FZ, et al. Transdifferentiation of hepatic oval cells into pancreatic islet beta-cells[J]. Front Biosci (Landmark Ed), 2012, 17: 2391-2395.

[26]Limbert C, Path G, Ebert R, et al. PDX1- and NGN3-mediatedinvitroreprogramming of human bone marrow-derived mesenchymal stromal cells into pancreatic endocrine lineages[J]. Cytotherapy, 2011, 13(7): 802-813.

[27]Hickey RD, Galivo F, Schug J, et al. Generation of islet-like cells from mouse gall bladder by directexvivoreprogramming[J]. Stem Cell Res,2013, 11(1): 503-515.

[28]Banga A, Akinci E, Greder LV, et al.Invivoreprogramming of Sox9+cells in the liver to insulin-secreting ducts[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2012, 109(38): 15336-15341.

[29]Berneman-Zeitouni D, Molakandov K, Elgart M, et al. The temporal and hierarchical control of transcription factors-induced liver to pancreas transdifferentiation[J]. PLoS One, 2014,9(2): e87812.

[30]Gefen-Halevi S, Rachmut IH, Molakandov K, et al. NKX6.1 promotes PDX-1-induced liver to pancreatic beta-cells reprogramming[J]. Cell Reprogram, 2010, 12(6): 655-664.

[31]Mauda-Havakuk M, Litichever N, Chernichovski E, et al. Ectopic PDX-1 expression directly reprograms human keratinocytes along pancreatic insulin-producing cells fate[J]. PLoS One, 2011,6(10): e26298.

[32]Katz LS, Geras-Raaka E, Gershengorn MC. Reprogramming adult human dermal fibroblasts to islet-like cells by epigenetic modification coupled to transcription factor modulation[J]. Stem Cells Dev, 2013, 22(18): 2551-2560.

[33]Tang DQ, Shun L, Koya V, et al. Genetically reprogrammed, liver-derived insulin-producing cells are glucose-responsive, but susceptible to autoimmune destruction in settings of murine model of type 1 diabetes[J]. Am J Transl Res, 2013, 5(2): 184-199.

Cell direct reprogramming: a new technique for treating diabetes

REN Li-wei, YANG Xiao-fei, LI Fu-Rong

(TheKeyLaboratoryofStemCellandCellularTherapy,TheSecondClinicalMedicalCollege,ShenzhenPeople’sHospital,JinanUniversity,Shenzhen518020,China.E-mail:frli62@163.com)

Diabetes is characterized by an absolute or relative deficiency in β-cell mass, which cannot be reversed with existing therapeutic strategies. The restoration of the endogenous islet β-cells can stabilize the level of blood glucose. The islet β-cells can be obtained from the directional differentiation of stem cells, but the process is complex and has the risk of teratomas generation. Cell direct reprogramming, one terminal differentiated cell can transdifferentiate into another kind of terminal differentiated cell, which is other than directional differentiation from stem cells. Direct reprogramming gives rise to the generation of islet β-cells from one terminal differentiated cell, may be preferable for diabetes therapy because of its unique advantage.

細胞直接重編程; 糖尿病; 胰島β細胞

Cell direct reprogramming; Diabetes; Islet β-cells

1000- 4718(2014)12- 2284- 05

2014- 05- 07

2014- 07- 25

國家自然科學基金資助項目(No.81270857); 深圳市基礎研究項目(No.JCYJ20120618153743791)

R587.1

A

10.3969/j.issn.1000- 4718.2014.12.031

△通訊作者 Tel: 0755-25533000-2450; E-mail: frli62@163.com

猜你喜歡
胰島素糖尿病
如何選擇和使用胰島素
人人健康(2023年26期)2023-12-07 03:55:46
糖尿病知識問答
中老年保健(2022年5期)2022-08-24 02:35:42
糖尿病知識問答
中老年保健(2022年1期)2022-08-17 06:14:56
糖尿病知識問答
中老年保健(2021年5期)2021-08-24 07:07:20
糖尿病知識問答
中老年保健(2021年9期)2021-08-24 03:51:04
糖尿病知識問答
中老年保健(2021年7期)2021-08-22 07:42:16
糖尿病知識問答
自己如何注射胰島素
門冬胰島素30聯合二甲雙胍治療老年初診2型糖尿病療效觀察
糖尿病的胰島素治療
主站蜘蛛池模板: 亚洲黄色高清| 91久久大香线蕉| www.亚洲国产| 中文字幕色站| 国产黄色片在线看| 蜜桃臀无码内射一区二区三区| 国产精品久久国产精麻豆99网站| 亚洲伊人电影| 亚洲高清无码精品| 欧美一级黄片一区2区| 人妻精品全国免费视频| 国产区免费| 国产视频一区二区在线观看| 日韩欧美国产中文| 国产情侣一区二区三区| 欧美福利在线| 91在线无码精品秘九色APP| 中文字幕va| 久久综合伊人77777| 精品福利视频导航| 欧美三级视频在线播放| 亚洲色图另类| 毛片免费试看| 激情综合网激情综合| 自慰网址在线观看| 欧美日韩免费| 69综合网| 亚洲国产欧美自拍| 在线看片免费人成视久网下载| 亚洲国产欧美国产综合久久| 99热这里只有精品2| 欧美伊人色综合久久天天| 伊人色综合久久天天| 国产亚洲精久久久久久久91| 成人夜夜嗨| 2021国产乱人伦在线播放| 国产精品伦视频观看免费| 欧美精品v欧洲精品| 无码免费的亚洲视频| 特级做a爰片毛片免费69| 日本黄网在线观看| 亚洲精品不卡午夜精品| 国产精品视频久| 国产精品亚洲综合久久小说| 亚洲国内精品自在自线官| 国产午夜在线观看视频| 网友自拍视频精品区| 2022国产91精品久久久久久| 国产在线日本| 最新国产你懂的在线网址| 国产乱论视频| 国产成人亚洲精品无码电影| 亚洲水蜜桃久久综合网站| 国产精品九九视频| 婷婷伊人久久| 亚洲欧洲美色一区二区三区| 中国丰满人妻无码束缚啪啪| 在线观看欧美精品二区| 国产人成在线视频| 国产欧美一区二区三区视频在线观看| 国产人成在线视频| 性欧美久久| 日韩一级毛一欧美一国产| 婷婷亚洲最大| 亚洲经典在线中文字幕| 中文字幕乱码中文乱码51精品| 亚洲swag精品自拍一区| 国产精品白浆无码流出在线看| www.av男人.com| 日韩a级毛片| 国产欧美日本在线观看| 免费在线国产一区二区三区精品| 国产亚洲日韩av在线| 无码有码中文字幕| 99爱在线| 国产又粗又爽视频| 高潮毛片免费观看| 青青草国产一区二区三区| 久久久久久国产精品mv| 91在线精品麻豆欧美在线| 一本大道香蕉久中文在线播放| 一区二区日韩国产精久久|