李 巖,吳愛萍,周海英,呂 錚,高 楊,任淑華
(1唐山市工人醫院,河北唐山063000;2河北聯合大學基礎醫學院)
肺癌是常見的惡性腫瘤,其發病率及病死率很高,其中非小細胞肺癌(NSCLC)占全部肺癌的70%~80%,且70%以上的患者確診時已失去手術機會,即使采用放、化療等綜合治療仍不能提高其生存率。最近研究表明,上皮—間質轉化(EMT)可能在腫瘤的發生、發展(尤其是侵襲和轉移)中發揮重要的調控作用,其可能是腫瘤侵襲和轉移的始動因素,且與腫瘤干細胞、腫瘤放化療抵抗和耐藥密切相關[1]。Ras同源物GTP酶(Rho)信號與腫瘤的侵襲和轉移關系密切,現已證實,其下游特征性效應器Rho相關卷曲螺旋形成蛋白激酶(ROCK)參與細胞的收縮、遷移、增殖和凋亡等過程[2,3]。2012年,我們觀察了ROCK阻斷劑Y-27632對轉化生長因子-β1(TGF-β1)介導的NSCLC A549細胞EMT的調節作用,旨在探討Y-27632對TGF-β1介導的A549細胞EMT的抑制作用,為開發新的腫瘤抑制藥物Y-27632提供一定的理論基礎和實驗依據。
1.1 材料 NSCLC A549細胞購自中科院上海細胞庫,Y-27632購自Cayman chemica公司,TGF-β1購自Peprotech公司;E-鈣黏蛋白一抗、波形蛋白一抗、α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)一抗、ROCK-I一抗購自Epitomics公司;血清應答因子(SRF)一抗、心肌相關轉錄因子-A(MATF-A)一抗購自Santa cruz公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞誘導與分組 A549細胞常規培養并傳代,待細胞密度為60%左右時進行實驗。實驗分為3組,對照組在含0.2%FBS的DMEM培養條件下進行實驗;TGF-β1組在含0.2%FBS的DMEM培養條件下,加入5 ng/mL的TGF-β1誘導;Y-27632組在含0.2%FBS的DMEM培養條件下,先給予Y-27632 10 μmol預孵育1 h,再加入5 ng/mL的TGF-β1誘導[4]。在倒置顯微鏡下進行細胞形態觀察并拍照。
1.2.2 劃痕實驗檢測細胞遷移 將細胞按2× 104/孔種植于24孔板,待次融合狀態后,用200μL槍頭在其孔中央輕輕劃痕,每組8孔,48 h后在倒置顯微鏡下進行細胞形態觀察并拍照。采用IPP 6.0圖像分析軟件測算劃痕區面積,計算遷移率,遷移率越高,遷移能力越強。
1.2.3 免疫細胞化學染色檢測波形蛋白、α-SMA表達 常規制備細胞爬片[5],采用枸櫞酸鹽高壓熱修復,波形蛋白一抗、α-SMA一抗稀釋比例為1∶300,4℃過夜;二抗37℃孵育20 min,鏡下控制DAB顯色,輕度復染。
1.2.4 Western blot法檢測E-鈣黏蛋白、波形蛋白、α-SMA、ROCK、SRF、MATF-A表達 采用RIPA細胞裂解液提取總蛋白,BCA法檢測各蛋白水平,按照50μg/泳道上樣,常規行電泳及電轉。一抗4℃過夜,二抗37℃孵育1 h,行BCIP/NET顯色,至出現明顯條帶后用純水終止。采用IPP 6.0圖像分析軟件計算條帶平均光密度值(OD),經內參平衡后作為蛋白的定量分析。
1.2.5 統計學方法 采用SPSS13.0統計軟件,計量資料以±s表示,進行完全隨機設計的單因素方差分析。P≤0.05為差異有統計學意義。
2.1 3組EMT 中A549細胞的形態變化和遷移率比較 對照組作用48 h后,A549細胞形態未見明顯變化,細胞連接緊密,折光性強。TGF-β1組誘導48 h后,A549細胞形態由原來的鋪路石樣變為長梭樣或紡錘體形,細胞連接消失,間隔增大,細胞間呈離散趨勢,并隨時間延長而變化顯著。Y-27632組干預后能顯著抑制上述A549細胞變化,細胞形態基本保持原來形態,細胞間具有折光性強的細胞連接,細胞相互融合,呈鋪路石樣。3組A549細胞遷移率比較見表1。
表1 各組EMT中A549細胞遷移率比較(%,±s)

表1 各組EMT中A549細胞遷移率比較(%,±s)
注:與對照組同期比較,*P<0.05;與TGF-β1組同期比較,#P<0.05
組別A549細胞遷移率24 h 48 h對照組30.33±5.09 64.17±4.88 TGF-β1組 60.83±5.27* 87.67±3.33* Y-27632組 41.83±4.02# 77.17±3.43#
2.2 3組EMT中A549細胞的波形蛋白、α-SMA、E-鈣黏蛋白表達比較 免疫細胞化學染色顯示,對照組無波形蛋白、α-SMA陽性表達,TGF-β1組可見波形蛋白、α-SMA陽性表達,Y-27632組能抑制波形蛋白、α-SMA陽性表達。Western blot檢測顯示,與對照組比較,TGF-β1組E-鈣黏蛋白表達下調,波形蛋白、α-SMA表達上調(P均<0.05)。與TGF-β1組比較,Y-27632組E-鈣黏蛋白表達上調,波形蛋白、α-SMA表達下調,分別是TGF-β1組的52.05%、55.65%(P均<0.05)。見表2。
表2 3組EMT中A549細胞各蛋白表達水平比較(OD,±s)

表2 3組EMT中A549細胞各蛋白表達水平比較(OD,±s)
注:與對照組比較,*P<0.05;與TGF-β1組比較,#P<0.05
組別 E-鈣黏蛋白 波形蛋白 α-SMA ROCK SRF MATF-A對照組 0.48±0.04 0.25±0.06 0.80±0.20 0.18±0.03 0.36±0.11 0.25±0.04 TGF-β1組 0.19±0.06* 0.73±0.19* 2.48±0.56* 0.66±0.24* 0.83±0.09* 0.84±0.27* Y-27632組 0.38±0.09# 0.38±0.09# 1.38±0.30# 0.29±0.03# 0.46±0.14# 0.37±0.03#
2.3 3組EMT中A549細胞ROCK、SRF、MATF-A表達比較 Western blot法檢測結果顯示,TGF-β1組能活化ROCK、SRF、MATF-A表達,其表達分別是對照組的3.67、2.31和3.36倍,差異有統計學意義(P均<0.05);而Y-27632組則能下調ROCK、SRF、MATF-A表達,其表達分別是 TGF-β1組的0.44、0.55和0.44倍,差異有統計學意義(P均<0.05)。
目前研究認為,EMT是腫瘤上皮細胞浸潤、轉移的重要機制,是上皮細胞獲得運動、遷移能力的主要調控手段。EMT的主要特征為上皮標記物如E-鈣黏蛋白等表達缺失或異位表達,而間質標記物如波形蛋白、α-SMA等出現或表達上調;上皮細胞失去原有極性,由頂—底極性變為前—后極性,即具有遷移的能力;體外培養可見上皮細胞由鋪路石樣變為梭形的成纖維細胞樣形態,伴有偽足形成[6]。本研究發現,TGF-β1誘導后A549細胞連接消失,細胞形態由鋪路石樣變為長梭形,同時遷移能力提高,E-鈣黏蛋白表達下調,波形蛋白、α-SMA表達上調,與文獻報道[6]相似,提示TGF-β1能顯著促進A549細胞發生EMT。
有研究顯示,ROCK在誘導細胞張力纖維絲形成中發揮重要的調控作用,其能促進球狀肌動蛋白(G-actin)聚合為纖維狀肌動蛋白,解聚MATF-A與G-actin的復合物,促進 MATF-A轉位入核,作為SRF的轉錄輔因子,促進其轉錄調控作用,并促進其靶基因α-SMA轉錄[7]。在腫瘤細胞中,SRF過表達能使腫瘤上皮細胞獲得間質表型,促進腫瘤細胞的遷移和侵襲;基因沉默或下調SRF表達能抑制腫瘤細胞的遷移力、侵襲力和運動力[8,9];針對SRF及其轉錄輔因子MRTF-A的siRNA能通過下調細胞的擴散、黏附和運動能力,減少腫瘤細胞的惡性潛能[10]。提示ROCK介導的SRF/MATF-A轉錄調控可能是腫瘤細胞發生EMT的重要機制之一,阻斷ROCK可能對EMT發生具有一定抑制作用。
目前研究發現,Y-27632具有多種藥理學作用,包括平喘、降壓、抗炎,以及對缺血再灌注損傷、神經系統疾患的抑制作用,其對腫瘤細胞的凋亡、黏附、遷移也有抑制作用[4,11]。本研究顯示,Y-27632干預后能通過阻斷ROCK/SRF/MATF-A調控的間質表型表達,抑制TGF-β1介導的A549細胞的EMT進程,提示Y-27632可能具有潛在抑制腫瘤細胞侵襲和轉移的作用。
[1]Martin FT,Dwyer RM,Kelly J,et al.Potential role ofmesenchymal stem cells(MSCs)in the breast tumour microenvironment: stimulation of epithelial to mesenchymal transition(EMT)[J].Breast Cancer Res Treat,2010,124:317-326.
[2]Morgan-Fisher M,Wewer UM,Yoneda A.Regulation of ROCK activity in cancer[J].JHistochem Cytochem,2013,61(3):185-198.
[3]Rath N,Olson MF.Rho-associated kinases in tumorigenesis:reconsidering ROCK inhibition for cancer therapy[J].EMBO Rep,2012,13(10):900-908.
[4]Wang L,Xue L,Yan H,et al.Effects of ROCK inhibitor,Y-27632,on adhesion andmobility in esophagealsquamous cell cancer cells[J].Mol Biol Rep,2010,37(4):1971-1977.
[5]徐洪,宋旭東,李瑩,等.貼壁細胞在載玻片爬片的新方法[J].中國應用生理學雜志,2009,25(2):283-285.
[6]Wu YD,Zhou BP.New insights of epithelial-mesenchymal transition in caneermetastasis[J].Acta Biochim Biophys Sin,2008,40 (7):643-650.
[7]Miralles F,Posern G,Zaromytidou AI,etal.Actin dynamics control SRF activity by regulation of its coactivator MAL[J].Cell,2003,113(3):329-342.
[8]Farra R,Dapas B,Pozzato G,etal.Serum response factor depletion affects the proliferation of the hepatocellular carcinoma cells HepG2 and JHH6[J].Biochimie,2010,92(5):455-463.
[9]Bell JL,Haak AJ,Wade SM,etal.Optimization of novel nipecotic bis(amide)inhibitors of the Rho/MKL1/SRF transcriptional pathway as potential anti-metastasis agents[J].Bioorg Med Chem Lett,2013,23(13):3826-3832.
[10]Medjkane S,Perez-Sanchez C,GaggioliC,etal.Myocardin-related transcription factors and SRF are required for cytoskeletal dynamics and experimentalmetastasis[J].Nat Cell Biol,2009,11 (3):257-268.
[11]Xu XT,Song QB,Yao Y,et al.Inhibition of RhoA/ROCK signaling pathway promotes the apoptosis of gastric cancer cells[J].Hepatogastroenterology,2012,59(120):2523-2526.