徐 珺,袁國林,呂婷婷,田小龍,黃 瑩
(襄陽市中心醫院,湖北襄陽441021)
目前,急性白血病(AL)的治療手段主要是化療和干細胞移植。隨著醫學科技迅速發展,雖然一定程度上提高了急性髓細胞白血病(AML)的緩解率,但由于微小殘留白血病(MRD)的存在,復發仍是影響患者無病生存的重要因素,因此,最大限度地殺滅殘留腫瘤細胞是防止復發的關鍵。樹突狀細胞(DC)免疫治療是其主要的方法,也是目前細胞免疫治療的熱點。為探討化療聯合DC回輸治療AML的臨床療效,我們進行了相關研究。現報告如下。
1.1 臨床資料 選擇2009年11月~2011年11月我院收治的AML患者21例,男11例、女10例,年齡21~70歲、中位年齡42歲,均符合張之南主編的《血液病學》中的 AML診斷標準[1],M1 3例、M2 15例、M4 2例、M5 1例;均為化療后獲得細胞形態學完全緩解者。將患者隨機分為對照組10例,觀察組11例,兩組臨床資料有可比性。
1.2 方法
1.2.1 DC制備及鑒定 觀察組簽署知情同意書后,用血細胞分離機采集其外周血單個核細胞,經淋巴細胞分離液離心獲得單個核細胞,置于37℃、5%CO2培養箱中,培養2 h后洗去非貼壁細胞,將獲得單個核細胞中的貼壁細胞調整密度為5×106/mL進行培養。加入粒單細胞集落刺激因子(GM-CSF)1 000 U/mL、白介素 4(IL-4)500 U/mL、TNF-α 500 U/mL,培養單個核細胞分化為成熟DC。培養10 d后,收集懸浮的DC,在光鏡下觀察其形態結構,采用流式細胞術檢測DC表型。取培養的DC行免疫治療。
1.2.2 治療方法 兩組均行常規化療,方案如下:①MA方案:米托蒽醌10 mg靜滴,第1~3天;阿糖胞苷(AraC)0.1 g靜滴,12 h一次,第1~7天。②DA方案:柔紅霉素40 mg靜滴,第1~3天;AraC 0.1 g靜滴,12 h一次,第1 ~7 天;或 AraC 1.0 g靜滴,12 h一次,第1~3天。③AA方案:阿克拉霉素40 mg靜滴,第1~3天;AraC 0.1 g靜滴,12 h一次,第1~7天。④HA方案:高山尖杉酯堿4 mg靜滴,第1~3天;AraC 0.1 g靜滴,12 h一次,第1~7天。⑤CAG方案:阿霉素10 mg靜滴,第1~4天;AraC 0.15 mg靜滴,第1~14天。在常規化療基礎上,觀察組在患者雙頸部、腋下、腹股溝淋巴結區6部位行DC 106個/次皮下注射,2 d一次,6次為一療程,間歇2個月后治療第2個療程。
1.2.3 評價方法 依照張之南主編的《血液病學》中的療效評價標準,療效指標包括持續緩解率、復發率、中位生存時間。采用流式細胞儀檢測MRD細胞。
1.2.4 統計學方法 采用 SPSS17.0統計軟件,計量數據以±s表示,組間比較用t檢驗;計數資料用百分比表示,組間比較用χ2檢驗。P≤0.05為差異有統計學意義。
2.1 DC形態 在倒置顯微鏡下,成熟DC貼壁生長,細胞體積增大,大小不等。培養初可見多數圓形貼壁細胞,加入GM-CSF、IL-4 48 h后,懸浮細胞增多;72 h后大量細胞集落,細胞數增多,體積增大,細胞表面伸出毛刺樣突起;第5天多數細胞重新貼壁;第6天懸浮細胞增多,細胞聚集,表面突起增多;加入TNF-α后第7~8天集落分散,細胞懸浮生長,分布較均勻,大小為成熟單核細胞的1.0~1.5倍,可見典型的樹枝樣突起。電鏡下見細胞表面大量褶皺和粗細不等的樹枝樣突起;透射電鏡下見細胞形態不規則,表面伸出多級突起,細胞核清晰,細胞質內線粒體豐富,粗面內質網發達,可見溶酶體。
2.2 DC表型鑒定 體外培養10 d后的DC表型為CD83+(67±4)%,HLA-DR+(75±6)%,CD11c(62±8)%,提示DC成熟。
2.3 兩組療效比較 觀察組11例共接受DC治療44次,其中1例8次、2例6次、8例3次。DC治療后,持續緩解7例(64%)、復發4例(36%),中位生存時間18個月。對照組10例治療6個療程后,持續緩解2例(20%)、復發8例(80%),中位生存時間9個月。兩組持續緩解率、復發率及中位生存時間比較P均<0.05。
2.4 兩組MRD細胞比較 觀察組治療后MRD細胞<10-4個,對照組 MRD細胞10-2~10-4個,兩組比較 P <0.05。
2.5 不良反應 觀察組皮下注射DC順利,無反應,除3例輕微發熱(體溫37.8℃,自行降至正常)、2例全身疼痛(對癥處理后2 d緩解)外,未見其他不良反應。
自20世紀60年代以來,隨著抗腫瘤新藥的應用,明顯改善了AL患者的近、遠期療效。但經化療后到臨床及血液學完全緩解,體內仍有106~108個MRD細胞,其成為白血病緩解期短、復發快的主要原因。研究發現[2],在完全緩解的AL患者中,80%因MRD復發影響長期生存。因此,化療后MRD細胞是復發的主要根源,治療MRD成為降低復發亟待解決的難題。近年研究發現,細胞免疫治療在消除MRD細胞、降低復發率、提高患者總生存率方面具有重要地位。
研究發現,惡性腫瘤患者免疫力低下,缺乏強有力的抗腫瘤免疫應答,腫瘤抗原不能有效地提呈給淋巴細胞,是造成腫瘤細胞逃逸、增生活躍的原因[3]。DC是目前公認的體內功能最強大的專職性抗原提呈細胞,其能激活靜息型T細胞,主要參與細胞免疫及T細胞依賴性體液免疫反應,在抗白血病細胞免疫應答中起重要作用。來源于外周血單核細胞的DC稱為mDC,主要表達CD33、HLA-DR和CD11c;來源于漿細胞樣的DC稱為pDC,主要表達HLA-DR和 CD123。研究表明,mDC通過合成和分泌IL-12促使靜息Th細胞向Th1細胞分化,引發Th1反應,啟動Th1細胞分泌IL-12,進一步促進Th1細胞分泌干擾素γ,以增強細胞毒T細胞的功能,在腫瘤免疫效應中發揮關鍵作用[4]。研究發現,完全緩解的AML患者存在DC功能低下。國內外學者對AML患者骨髓中DC亞群的定量分析顯示,其mDC功能和數量降低[5~8]。AL的發生、發展與機體免疫功能失調密切相關,免疫系統無法識別和清除惡變和突變的細胞,致使腫瘤細胞逃逸機體免疫系統的監視和清除;另外,化療無法及時清除惡性腫瘤綜合治療后的MRD細胞,最終需動員機體的免疫功能方可達到其作用[9]。我們前期的研究發現[10],完全緩解 AML 患者行 G-CSF、GM-CSF 治療后,其DC活性升高,促淋巴細胞的增殖能力增強,且偏向mDC生長。本研究顯示,觀察組用G-CSF、GM-CS治療后,DC高表達 CD83、HLA-DR和CD11c,主要為mDC細胞;與對照組比較,其持續緩解率高、中位生存時間長、復發率低。
研究表明,MRD能早期判斷患者體內的殘留白血病細胞,預測其復發率,早于臨床預測復發3~6個月[2]。本研究發現,觀察組行DC治療后的MRD細胞比率明顯低于化療后,且其MRD細胞<10-4個的比率明顯高于對照組,說明DC治療可明顯清除MRD細胞。提示DC治療具有抗腫瘤細胞作用,可在一定程度上減少疾病的復發。本研究結果與國內外相關報道一致[11~13]。
綜上所述,DC治療能明顯清除完全緩解AML患者的殘留白血病細胞,預防復發,值得臨床推廣應用。
[1]張之南.血液病學.2版.北京:人民衛生出版社,2012:154-155.
[2]孔令環,韓梅,肖中平,等.動態監測微小殘留病對B-ALL預后的臨床意義[J].中國實驗診斷學,2013,17(1):94-97.
[3]謝寧,周健,宋永平,等.耐地塞米松B細胞淋巴瘤細胞逃逸同種異體NK細胞的殺傷及其機制[J].中國腫瘤生物治療雜志,2012,19(3):247-251.
[4]Yamamoto M,Kamigaki T,Yamashita K,et al.Enhancement of anti-tumor immunity by high levels of Th1 and Th17 with a combination of dendritic cell fusion hybrids and regulatory T cell depletion in pancreatic cancer[J].Oncol Rep,2009,22(2):337-343.
[5]Han P,Story C,McDonald T,et al.Immune escape mecha nisms of childhood ALL and a potential countering role for DC like leukemia cells[J].Cytotherapy,2002,4(2):165-175.
[6]Mohty M,Vialle-Castellano A,Nunes JA,et al.IFN-alpha skews monocyte differentiation into Toll-like receptor 7 expressing dendritic cells with potent functional activities[J].J Immunol,2003,171(7):3385-3393.
[7]Caruso DA,Fraser S,Hardy K,et al.Costimulation molecule expression and subset dist ribution of blood dendritic cells in normal children and newly diagnosed pediat ric leukemia and lymphoma patients[J].Exp Hematol,2008,36(12):1691-1703.
[8]林海榮,王亞哲,王東俠,等.急性髓系白血病患者骨髓中樹突狀細胞亞群的定量分析[J].中國實驗血液學雜志,2009,17(5):17-19.
[9]Santegoets SJ,van den Eertwegh AJ,van de Loosdrecht AA,et al.Human dendritic cell line models for DC differentiation and clinical DC vaccination studies[J].J Leukoc Biol,2008,84(17):1364-1373.
[10]袁國林,徐珺,田小龍,等.G-CSF和GM-CSF對完全緩解AML患者樹突狀細胞亞群影響的體內外研究[J].現代中西醫結合雜志,2010,19(23):2880-2882.
[11]劉躍均,吳德沛,孫愛寧,等.化療聯合自體DCIK細胞治療急性白血病的臨床研究[J].中國免疫學雜志,2010,26(6):552-556.
[12]江浩,劉開彥,童容,等.化療聯合自體細胞因子誘導殺傷細胞治療急性白血病的臨床觀察[J].中華內科雜志,2005,44(3):198-201.
[13]Koistinen P,R?ty R,It?l? M,et al.Long-term outcome of intensive chemotherapy for adults with de novo acute myeloid leukaemia(AML):the nationwide AML-92 study by the finnish leukaemia group[J].Eur J Haematol,2007,78(6):477-486.