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聚羥基脂肪酸酯高產(chǎn)菌株的篩選

2014-04-10 16:19:29張松梅
科技創(chuàng)新與應用 2014年12期

張松梅

摘 要:目的:探討聚羥基脂肪酸酯產(chǎn)生菌的篩選方法。方法:從土壤中取樣,經(jīng)過尼羅藍熒光初篩、蘇丹黑染色復篩,篩選菌株。結果:成功地獲得聚羥基脂肪酸酯生產(chǎn)菌并將其命名為Rhizobium sp.H2-5,其胞內產(chǎn)物產(chǎn)率為36.96%。結論:通過尼羅藍熒光初篩、蘇丹黑染色復篩進行聚羥基脂肪酸酯高產(chǎn)菌株篩選,方法準確、可靠,值得應用推廣。

關鍵詞:聚羥基脂肪酸酯;尼羅藍;篩選

1 材料與方法

1.1 材料及試劑

Ls-C50L立式壓力蒸汽滅菌器(江陰濱江醫(yī)療設備廠);HZQ-Q 全溫振蕩搖床(中國哈爾濱東聯(lián)電子技術開發(fā)有限公司);Friocell 生化培養(yǎng)箱(BMHIndustruments Co.);Anke TGL-16G 高速離心機(上海安亭科學儀器廠);S-3700N掃描電子顯微鏡(日本日立公司);1%的尼羅藍溶液; 0.3%(w/v)的蘇丹黑B染液、0.5%(w/v)的番紅染液等。

富集培養(yǎng)基(g/L)[1]:醋酸鈉10.0,酵母粉1.5,Na2HPO4·12H2O 3.8,KH2PO42.65,MgSO4·7H2O 0.2,CaC12 0.05,F(xiàn)eC130.01,ZnSO40.01;篩選培養(yǎng)基:含瓊脂2%,尼羅藍濃度為50μg/mL的富集培養(yǎng)基。

1.2 方法

1.2.1 初篩[2]

取溶于水的土壤樣品上層液1.0mL,接于10.0mL富集培養(yǎng)液中32℃富集培養(yǎng)24h,反復傳代培養(yǎng)至獲得純培養(yǎng)菌株。取富集培養(yǎng)液對滅菌后篩選培養(yǎng)基進行梯度稀釋,然后涂布到初篩培養(yǎng)基上。初篩培養(yǎng)基32℃恒溫條件下倒置培養(yǎng)48h,在波長365nm紫外燈下觀察,標記并挑取發(fā)熒光的單菌落保存。

1.2.2 復篩

純培養(yǎng)菌株搖床培養(yǎng)48h后,離心分離棄上清液,挑取離心后得到的菌體涂片、干燥、固定,蘇丹黑B染液染色15min,洗脫至無色,再用番紅染液復染2min,水洗,鏡檢觀察是否有藍黑色的脂肪顆粒[3]。

1.2.3 PHA提取

取復篩后的菌株搖床培養(yǎng),收集、離心發(fā)酵液,收集菌體并烘干至恒重,稱量得干菌體重量(CDW/g)。加入氯仿超聲提取,向提取液中加入50ml甲醇水溶液析出白色絮狀固體PHA[4],抽濾分離出PHA,再次烘干至恒重,稱量得PHA提取量。

1.2.4 鑒定

制涂片進行革蘭氏染色以及芽孢染色,顯微鏡下觀察菌體大小、形態(tài)以及有無芽孢生成。

2 結果

2.1 初篩

菌落呈現(xiàn)黃綠色,黃色和橙色熒光色。根據(jù)熒光色的差異分得11株純培養(yǎng)物,接種至斜面培養(yǎng)基上,4℃低溫保存。

2.2 復篩

菌體外圍泛紅,菌體內部可見明顯的藍黑色顆粒的菌株可能是產(chǎn)生 PHA的細菌。

2.3 胞內產(chǎn)物提取率

根據(jù)PHA提取率(%)=Wp:Wc=(PHA 提取量/CDW)×100%[5]計算各產(chǎn)物的提取率。菌株H2-5的胞內產(chǎn)物產(chǎn)率最高,達到 36.96%。其次為H2-2,提取率為27.32%,具體結果見表1。

2.4 鑒定結果

菌株H2-5的菌落呈圓形,表面光滑,大小均一,邊緣整齊,菌落潮濕呈淡黃色,半透明。革蘭氏染色結果表明菌株 H2-5 為革蘭氏陰性菌,菌體形狀為桿狀,無莢膜,不形成芽孢。

3 結束語

聚羥基脂肪酸酯(polyhydroxyalkanoate,PHA)是可以由很多細菌合成的一種細胞內聚酯,在生物體內主要作為細胞內碳源貯藏性物質而存在,因而具有廣泛應用的價值[6]。本研究采用尼羅藍熒光初篩、蘇丹黑染色復篩進行聚羥基脂肪酸酯高產(chǎn)菌株篩選,擴大了菌株資源,并獲得一株新菌株,為進一步開發(fā)PHA的應用奠定基礎。此外,我們還對菌株H2-5進行了生理生化實驗、并繪制生長曲線。結果與文獻[7]所述一致,均表明菌株H2-5不能水解利用淀粉作為碳源,也不能利用檸檬酸鹽,且適應期短,生長快速,接種18h左右就可達到穩(wěn)定狀態(tài)。對提取菌株H2-5基因組DNA進行16S rDNA 基因擴增測序,結果表明H2-5為根瘤菌屬。

參考文獻

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[2]YilmazM,Soran H,Beyatli Y.Determination of poly-B-hydroxybutyrate(PHB)production by someBacillusspp.World Journal of M-icrobiology& Biotechnology,2005,21: 565-56.

[3]Ganduri V,Ghosh S,Patnaik P. Mixing control as a device to increase PHB production in batch fermentations with cocultures of Lactobacillus delbrueckii and Ralstonia eutropha[J].Process Biochemistry,2005,40: 257-264.

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