SSR分子標記在大豆原原種提純中的應用

曲忠誠

摘要 選用生產上應用的5個大豆品種為材料，利用分布在16個基因連鎖群的多態性SSR引物進行PCR擴增，經6%的聚丙烯酰胺凝膠電泳進行帶型分析。供試材料通過分子鑒定，均存在混雜現象，去除混雜株行后，將帶型一致的株行進行繁殖，從而獲得純度較高的原原種。研究結果表明，利用SSR分子標記對大豆原原種進行提純，不僅能夠去除形態學上的差異種子，還能夠將形態特點極為相似的混雜種子去除。

關鍵詞 分子標記；大豆；原原種；提純

中圖分類號 S188 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611（2014）26-08887-03

Application of SSR Markers in Soybean Original Seed Purification

QU Zhong-cheng

（Qiqihaer Sub-academy of Heilongjiang Academy of Agricultural Sciences， Qiqihaer， Heilongjiang 161006）

Abstract This study selected 5 soybean varieties used in production as material， using PCR amplified polymorphic SSR primers distributed on 16 linkage groups， through 6% polyacrylamide gel electrophoresis， for banding analysis. The tested materials by molecular identification， there are mixed phenomenon， after removal of hybrid lines， the type of strains was reproduced， so as to obtain higher purity of the original seed. The results show that， the soybean seed was purified by using SSR molecular markers， not only can remove the difference of morphology on the seed， but also can remove other similar hybrid seeds.

Key words Molecular markers； Soybean； Pre-elite seed； Purification

從20世紀50年代開始，經過我國育種家的不懈努力，累積育成、推廣大豆新品種1 500多個^[1]，這些新育成的大豆品種具有相對穩定的形態特征和生理特性，但經過一代代的生產繁殖，大部分大豆品種都會逐漸發生純度降低、種性變劣等不良變異，因而導致一些品種失去了原本具有的形態特點和生理特性，抗逆性、產量和品質不斷下降，并有混雜現象。這種混雜是在大豆生產繁殖過程中普遍存在的現象，育種家或種子生產者為防止品種混雜退化，通常會進行原原種繁殖，以便去除混雜植株?？梢娫N提純是大豆種子生產、繁殖過程中一個非常重要的環節。

在生產實踐中，育種家及種子生產者通常做法是分辨原原種株行形態學上的差異來去除雜株，但這不僅無法去除形態特點極為相似的混雜種子，并費時費工，且受環境條件影響較大。隨著DNA分子標記和檢測技術的日趨完善，利用SSR為共顯性分子標記的特點，可以快速、準確地鑒定不同大豆品種基因型^[2-4]。

目前，利用SSR標記鑒定雜交種純度已廣泛用于玉米、水稻、油菜、棉花、番茄等作物中，佘花娣等^[5]闡述了利用 DNA指紋技術進行品種鑒定的原理、特點及其研究概況，認為DNA指紋技術可以鑒定表型上難于鑒別的作物品種^[6]。該標記具有多態性高、數量豐富、簡便快速、穩定性高、重復性好、不受環境影響等優點，能夠反映DNA水平上品種個體間的遺傳差異。該技術是純度種子鑒定的最適宜技術之一，可廣泛應用于植物分子標記連鎖圖的構建與基因定位、遺傳關系分析、種質及其純度鑒定等方面。

針對育種和原原種繁殖過程中，種子提純不僅費時費工，且無法去除混雜形態相似種子的現象，筆者主要通過材料間廣泛多態性的SSR引物，對原原種單株進行分子檢測，去除混雜單株，以達到原原種提純的目的。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

利用5份參試的大豆品種500個株行進行分析，分別設代號A、B、C、D和E，均為黑龍江省農業科學院齊齊哈爾分院提供。田間收獲時，每份材料選取100株單株，每株單獨脫粒，單獨存放并編號為A001、A002…等，以此類推。

1.2 方法

1.2.1 總DNA 提取與SSR分析。

參照中華人民共和國農業行業標準大豆品種純度鑒定技術規程分子標記法（NY/T 1788-2009）進行分析。每份材料取100粒種子，每粒種子編號，反臍方向取等量組織混合制樣。試驗取少量放入1.5 ml離心管中，加入700 μl預熱（60 ℃）的SDS提取液倒置幾次，在60 ℃下水浴60 min，中間顛倒混勻3次。取出后在室溫下10 000 r/min離心15 min，加700 μl 24∶1（V/V）的氯仿∶酚溶液，倒置幾次輕輕混勻，室溫下10 000 r/min離心15 min。去上清液轉移至1.5 ml離心管中，加入700 μl 24∶1（V/V）氯仿∶酚重新抽提一次，室溫下8 000 r/min離心15 min。加700 μl異丙醇（-20 ℃）靜置15 min，8 000 r/min離心5 min去上清。用75%乙醇洗滌沉淀2次，吹干后用200 μl超純水溶解。采用1%瓊脂糖電泳檢測DNA濃度。

1.2.2 SSR引物來源。

根據Cregan大豆公共遺傳圖譜，分別在20條染色體連鎖群上隨機選擇覆蓋全基因組的SSR引物，經篩選選取16個連鎖群上擴增穩定、多態性高的15對SSR引物進行試驗，采用上海生物工程有限公司合成的SSR引物序列。

1.2.3 SSR引物篩選及擴增。

利用篩選的15對引物，對5組共500份材料進行SSR分子標記分析。

PCR擴增反應體系含1×的PCR緩沖液，150 μmol/L引物（包括上游引物和下游引物），250 μmol/L dNTPs，150 μl 10×buffer，1 U Taq聚合酶，30 ng總DNA，用超純水補足15 μl。

PCR反應在T-Gradient進行，擴增條件：95 ℃預變性5 min；94 ℃變性30 s，47 ℃復性30 s，72 ℃延伸30 s，20個循環；72 ℃延伸5 min，于4 ℃下保存。

電泳方法：每個SSR體系加1.5 μl甲酰胺雙色Loading Buffer（在PCR板上），置于PCR儀中變性5 min，然后放入冰水混合物中冷卻。PCR產物在6%的聚丙烯酰胺標準測序膠上分離，采用北京六一廠DYIII-88A型電泳槽，功率為恒定100 W，電泳時長約1 h。

銀染方法：0.2% AgNO₃中染色20 min（避光），去離子水漂洗30 s，用10%冰醋酸固定液定影5 min，清水漂洗2 min，照相。

2 結果與分析

2.1 分子標記的多態性分析

利用篩選的15對引物對全部材料進行分子標記擴增，獲得清晰的電泳譜帶。品種B 100份株行中，B1～B50樣本中Satt503位點存在差異的電泳譜帶見圖1，共有5個株行存在差異。B51～B100樣本中Satt503位點無差異。

3 討論

大豆在育種和繁殖過程中，利用種子或植株的外觀特性來鑒別不同個體的方法雖然較直觀、簡便，但可直接觀測的農藝性狀有限，且受外界環境的影響較大，不利于種子繁殖和提純工作的開展。隨著分子生物學應用的日趨廣泛，利用分子標記技術在種子純度鑒定方面的研究結果表明，SSR是一種可用于種子純度鑒定的簡便技術。

該研究選用多態性指數較高的15對SSR引物進行電泳擴增，對大豆原原種進行提純，不僅能夠去除形態學上有差異的種子，還能夠將形態特點極為相似的混雜種子去除。隨著更多SSR位點的開發及SSR檢測技術的進步與普及，這一技術將在原原種提純中得到廣泛應用。

4 結論

該研究選用篩選出株行間具有多態性的SSR引物對5個生產上應用的大豆品種進行PCR擴增，經6%的變性聚丙烯酰胺凝膠電泳，進行帶型分析，獲得原原種的純度，并將帶型一致的株行進行繁殖，從而獲得純度較高的原原種。結果表明，供試品種均存在混雜現象，利用SSR分子標記去除混雜單株，不僅能夠去除形態學上有差異的種子，還能夠將形態特點極為相似的混雜種子去除。該方法檢測快速，不受環境影響，且省時省力。

參考文獻

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