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椰衣提取物總酚含量及抗氧化活性研究

2014-04-29 00:44:03張軍鋒杜寧牛成張名楠周雪晴
安徽農業科學 2014年22期

張軍鋒 杜寧 牛成 張名楠 周雪晴

摘要[目的] 測定椰衣不同提取物的總酚含量,考察椰衣不同提取物的抗氧化活性。[方法] 采用不同極性的溶劑對椰衣粉的60%乙醇提物進行萃取,得到石油醚、乙酸乙酯、正丁醇和水等4個提取物,以清除l,l-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基的能力評價椰衣提取物的抗氧化活性,并采用Folin-Ciocalteu法測定提取物中總酚含量。[結果] 椰衣各提取物均有不同程度的抗氧化能力,順序為 正丁醇提取物>乙酸乙脂提取物>水提物>石油醚提取物。[結論] 椰衣不同提取物均具有抗氧化能力,其與酚類物質含量基本呈正相關,其乙酸乙酯提取物和正丁醇提取物具有較強的抗氧化活性。

關鍵詞 椰衣;提取物;抗氧化;總酚含量

中圖分類號S567文獻標識碼A文章編號0517-6611(2014)22-07389-02

為棕擱科椰子屬,是熱帶地區主要油料作物,主要產于我國廣東南部諸島及雷州半島、海南、臺灣及云南南部熱帶地區,是海南島特產之一。椰子具有極高的經濟價值,全株各部分均有用途。在醫藥上椰子殼用于治療楊梅瘡、筋骨痛,熬膏外用于體癬、腳癬,椰肉用于治療姜片蟲病,椰子油用于治療疥癬、凍瘡、神經性皮炎,椰子液用于治療心臟性水腫、口干煩渴[1]。到目前為止, 對椰子總酚含量和抗氧化活性的研究尚未見詳細的報道。筆者在此對這方面問題進行了探討,為椰子的進一步開發利用提供依據。

1 材料與方法

1.1材料

1.1.1 研究對象。椰子,購買于海口市海南大學南門,海南大學園藝園林學院吳友根副教授鑒定為棕櫚科植物椰子(Cocos nucifera Linn.)的果實。

1.1.2 主要儀器。UV-2550紫外可見分光光度計(日本SH IM ADZU公司); BP211D電子分析天平(d:0.000 1 g,德國Sartorius公司); DFY-200型粉碎機(浙江溫嶺市大德中藥機械有限公司);RE-2000A型旋轉蒸發儀(上海亞榮生化儀器廠)。

1.1.3 主要試劑。鎢酸鈉、鉬酸鈉、磷酸、鹽酸、雙氧水、硫酸鋰等購自上海國藥集團。沒食子酸和1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)購自美國Sigma公司。

1.2方法

1.2.1 提取物的制備。取粉碎過的干燥椰子外衣(椰衣)100.00 g,加入60%乙醇200 ml,提取3次,每次提取72 h,合并次提取液,減壓濃縮至150 ml,分別用石油醚、乙酸乙酯和正丁醇對濃縮液進行萃取,所得萃取液減壓濃縮并蒸干待用[2]。

1.2.2 椰衣不同提取物總酚含量的測定[3]。

1.2.2.1Folin-Ciocalteu試劑的配制。稱取20.00 g鎢酸鈉和5.00 g鉬酸鈉于圓底燒瓶中,用140.00 ml蒸餾水溶解,加入85% 磷酸溶液10.00 ml,濃鹽酸50.00 ml,文火回流10 h,然后依次加入3.00 g硫酸鋰及15.00 ml雙氧水,搖勻,去除冷凝器,繼續煮沸15 min,以去除多余的雙氧水,溶液呈金黃色,冷卻后,定容至250 ml,過濾后的濾液即福林酚試劑,置于棕色瓶中保存。

1.2.2.2線性關系考察。稱取沒食子酸0.007 5 g,用蒸餾水溶解并定容至50 ml,得濃度為0.15 mg/ml的標準液。準確吸取0、1.00、2.00、3.00、4.00、5.00、6.00 ml上述沒食子酸溶液分別用蒸餾水稀釋于10 ml,得沒食子酸標準稀釋溶液。分別取2.00 ml不同濃度的沒食子酸標準稀溶液于10 ml的比色管中,加入2.00 ml福林酚試劑,混勻,在0.5~8 min內加入0.75 ml 7.5%的碳酸鈉溶液,充分混合后用蒸餾水定容至刻度,放置2 h,于765 nm下測定吸光度,空白試劑做參比。以沒食子酸在反應體系中的質量濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,繪制標準曲線。

1.2.2.3椰衣粉總酚含量的測定。分別取石油醚提取物(石油醚相)、乙酸乙酯提取物(乙酸乙酯相)、水提物(水相)、正丁醇相提取物(正丁醇相)20 mg,加入20.00 ml蒸餾水溶解,稀釋5倍,分別得到0.20 mg/ml樣品100 ml,按照上述測定沒食子酸標準曲線的方法,測定它們的吸光度,測定3次,根據公式計算得到總酚含量,取平均值。

1.2.3 椰衣提取物抗氧化能力的測定[4]。

1.2.3.1DPPH標準溶液的配制。精確稱取DPPH 0.004 0 g,置于50 ml的容量瓶中,加入無水乙醇溶解定容后,得濃度為0.08 mg/ml,DPPH標準儲備溶液。置于4 ℃冰箱中保存備用。

1.2.3.2樣品對DPPH的清除能力的測定。分別準確稱取50 mg石油醚相、乙酸乙酯相、水相、正丁醇相的樣品用無水乙醇定容至50 ml,稀釋10倍,得到0.10 mg/ml母液備用。分別移取1.00、2.00、3.00、4.00、5.00、6.00、7.00、8.00 ml于10 ml比色管中,用無水乙醇定容至刻度得到0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08 mg/ml的樣品稀溶液。分別從比色管取1.00 ml樣品溶液置于試管中,再加入配好的DPPH溶液3.00 ml,充分混勻,室溫避光保存30 min后在517 nm處測定吸光度,以無水乙醇為空白對照。每個試驗重復3次,結果取平均值。清除DPPH的能力按下式計算,即DPPH的清除率d(%)=[1-(A1-A2)/A3]×100%,式中,A1為1.00 ml樣品溶液3.00 ml DPPH溶液的混合液在517 nm處的吸光度;A2為1.00 ml樣品溶液與3.00 ml無水乙醇混合液在517 nm處的吸光度;A3為1.00 ml無水乙醇和3.00 ml DPPH混合液在517 nm處的吸光度。

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