向紅,王雅莉,邱桐,金堯,楊雪芳(.甘肅中醫學院病理學教研室/甘肅省中藥藥理與毒理學重點實驗室,蘭州 730000;.甘肅中醫學院中藥資源教研室,蘭州 730000)
急性肺損傷發病機制錯綜復雜、致病環節多、病死率高,已成為臨床危重病學研究的難點和熱點。但是,目前中醫、西醫都沒有確切的方法和藥物阻止其疾病發展[1-2]。紅芪為豆科植物多序巖黃芪(Hedysaryum Polybotrys)的干燥根[3],紅芪水提物是從紅芪中提取的一種復合生物堿,研究已證實其可提高肺表面活性物質含量、清除自由基、減少過氧化物酶和丙二醛生成、增強免疫力、抗衰老[4-7]。已有研究證明,紅芪水提物能減輕新生兒呼吸窘迫綜合征時肺臟的出血、充血、水腫及炎細胞浸潤,使肺表面活性物質的分泌增加[8]。腫瘤壞死因子(TNF)-α是炎癥因子網絡的啟動因子,白細胞介素(IL)-10與核因子(NF)-κB活化有關,二者在急性肺損傷的發生發展中起關鍵作用[9-10]。本研究擬通過觀察紅芪水提物對急性肺損傷模型大鼠各病理指標的影響,探討其對急性肺損傷模型大鼠的保護作用及可能的機制。
潔凈工作臺(天津市泰斯特儀器有限公司);KX31型光學顯微鏡(日本Olympus公司);Microm HM315型切片機(美國Thermo公司);YB-6LF型生物組織包埋機(湖北亞光醫用電子技術有限公司);FA1204B型電子天平(上海精密科學儀器有限公司)。
紅芪生藥材由甘肅中醫學院中藥藥劑教研室提供,經筆者鑒定為真品。
內毒素(LPS,美國Sigma公司);DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋生物技術有限公司);TNF-α、IL-10免疫組化試劑盒(武漢博士德生物技術有限公司)。
SPF級Wistar成年大鼠60只,♀♂兼用,體質量(200±20)g,購自甘肅中醫學院實驗動物中心[實驗動物使用合格證號:SCXK(甘)2011-0001-0000372]。
ip LPS(5mg/kg)以復制大鼠急性肺損傷模型。60只Wistar大鼠隨機均分為6組,即正常對照組(等容生理鹽水)組、模型(等容生理鹽水)組、地塞米松(10mg/kg)組與紅芪水提物高、中、低劑量(5.2、2.6、1.3 g/kg)組,復制模型4 h后ig給藥,每天1次,連續3 d。
2.2.1 肺系數(LI)、肺濕/干質量比(W/D)與肺含水率的測定
末次給藥后,脫頸處死大鼠,取大鼠全肺,用濾紙吸取浮在臟器表面的血液或體液,用電子天平稱定質量,按如下公式計算LI:LI=肺質量(mg)/體質量(g)×10。取大鼠左肺,稱濕質量后,置烤箱中(60℃,48 h),取出,稱干質量,然后計算W/D與肺含水率:W/D=肺濕質量(mg)/肺干質量(mg)×100%;肺含水率=(肺濕質量-肺干質量)/肺濕質量×100%。
2.2.2 肺組織病理學檢測 取大鼠右肺中葉用4%甲醛固定48 h,切取肺組織塊2~4mm3常規脫水、石蠟包埋、切片,用蘇木紫-伊紅染色。在光學顯微鏡下觀察大鼠肺泡間隔病變、炎癥細胞浸潤、血管瘀血狀況等組織形態學變化。
2.2.3 免疫組化法檢測TNF-α、IL-10蛋白的表達 取大鼠右肺中葉組織,常規脫蠟、水化后,檸檬酸浸泡,高壓鍋加熱進行抗原修復,滴加3%H2O2消除內源性過氧化物酶和生物素,再按以下步驟進行操作:①滴加正常山羊血清封閉,溫箱育10min,傾去,勿洗;②滴加一抗工作液(TNF-α、IL-10均稀釋150倍),37℃3 h,PBS沖洗3次,每次3min;③滴加二抗,37℃15min,PBS沖洗3次,每次3min;④滴加辣根酶標記鏈霉素卵白素工作液,37℃15min,PBS沖洗3次,每次3min;⑤滴加DAB顯色劑,3min后放入自來水中浸泡10min;⑥蘇木素復染2min,鹽酸酒精分化,再放入氨水中浸泡;⑦脫水、透明、封片,鏡下觀察。所有切片放大倍數為40倍,每張切片觀察隨機選取10個視野(直徑為1mm),利用LEICAQwin圖像分析軟件測定陽性反應物相對含量的平均灰度值,以其單位面積平均灰度作為表達量的參數。
與正常對照組比較,模型組大鼠LI、W/D、肺含水率增高,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,紅芪水提物高、中、低劑量組大鼠LI、W/D、肺含水率降低,差異有統計學意義(P<0.05)。紅芪水提物對模型大鼠LI、W/D與肺含水率的影響見表1。
表1 紅芪水提物對模型大鼠LI、W/D與肺含水率的影響()Tab 1 Effects of water extract of H.polybotrys on LI,W/D and moisture content of lung in model rats()

表1 紅芪水提物對模型大鼠LI、W/D與肺含水率的影響()Tab 1 Effects of water extract of H.polybotrys on LI,W/D and moisture content of lung in model rats()
與正常對照組比較:*P<0.01;與模型組比較:#P<0.05vs.normal control group:*P<0.01;vs.model group:#P<0.05
組別正常對照組模型組地塞米松組紅芪水提物高劑量組紅芪水提物中劑量組紅芪水提物低劑量組肺含水率,%80.24±1.9089.58±0.89*83.61±1.10#83.33±1.46#86.69±1.17#86.92±0.75#n 101010101010 LI 0.55±0.0361.16±0.14*0.65±0.069#0.60±0.068#0.78±0.090#0.84±0.070#W/D 5.10±0.469.66±0.82*6.12±0.40#6.04±0.56#7.56±0.64#7.67±0.44#
正常對照組大鼠肺組織未見明顯異常,肺泡結構清晰,大小均勻,肺泡壁薄,肺泡隔微血管無充血、瘀血;模型組大鼠肺泡和肺間質水腫,肺間隔明顯增寬,肺泡腔變窄,肺泡內滲出物較多,炎性細胞浸潤,可見較多的中性粒細胞、紅細胞;地塞米松組大鼠肺組織結構尚清晰,破壞較輕,肺充血水腫減輕,炎性細胞浸潤現象明顯減輕或者消失;紅芪水提物高劑量組大鼠肺組織結構清晰,肺泡間隔變窄,紅細胞及中性粒細胞滲出減輕,肺組織病理損傷明顯改善;紅芪水提物中、低劑量組大鼠肺泡腔內出血程度、水腫及肺泡腔內炎癥細胞數量低于模型組。紅芪水提物對模型大鼠肺組織病理學的影響見表2。

表2 紅芪水提物對模型大鼠肺組織病理學的影響Tab 2 Effects of water extract of H.polybotrys on histological changes of lung tissue in model rats
3.3.1 紅芪水提物對模型大鼠TNF-α蛋白表達的影響 與正常對照組比較,模型組大鼠肺組織TNF-α蛋白表達增強,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,紅芪水提物高、中劑量組大鼠肺組織TNF-α蛋白表達減弱,差異有統計學意義(P<0.01)。紅芪水提物對模型大鼠TNF-α蛋白表達的影響見表3。
表3 紅芪水提物對模型大鼠TNF-α蛋白表達的影響()Tab 3 Effects of water extract of H.polybotrys on the expression of TNF-α protein in model rats()

表3 紅芪水提物對模型大鼠TNF-α蛋白表達的影響()Tab 3 Effects of water extract of H.polybotrys on the expression of TNF-α protein in model rats()
與正常對照組比較:*P<0.01;與模型組比較:#P<0.01vs.normal control group:*P<0.01;vs.model group:#P<0.01
組別正常對照組模型組地塞米松組紅芪水提物高劑量組紅芪水提物中劑量組紅芪水提物低劑量組平均灰度值66.45±9.56128.06±10.13*95.56±6.65#75.06±4.65#79.67±7.17#98.83±10.70 n 101010101010
3.3.2 紅芪水提物對模型大鼠IL-10蛋白表達的影響 與正常對照組比較,模型組大鼠IL-10蛋白表達減弱,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,紅芪水提物高、中、低劑量組大鼠IL-10蛋白表達增強,差異有統計學意義(P<0.01)。紅芪水提物對模型大鼠IL-10蛋白表達的影響見表4。
表4 紅芪水提物對模型大鼠IL-10蛋白表達的影響()Tab 4 Effects of water extract of H.polybotrys on the expression of IL-10 protein in model rats()

表4 紅芪水提物對模型大鼠IL-10蛋白表達的影響()Tab 4 Effects of water extract of H.polybotrys on the expression of IL-10 protein in model rats()
與正常對照組比較:*P<0.01;與模型組比較:#P<0.01vs.normal control group:*P<0.01;vs.model group:#P<0.01
組別正常對照組模型組地塞米松組紅芪水提物高劑量組紅芪水提物中劑量組紅芪水提物低劑量組平均灰度值112.06±10.1366.45±9.56*106.07±7.17#98.56±6.65#94.83±10.70#82.52±10.13#n 101010101010
本研究中,ip LPS以后,大鼠肺組織出現明顯腫脹、全肺充血,LI、W/D及肺含水率明顯升高,光鏡下大鼠肺組織呈現明顯的急性肺損傷病理變化,說明急性肺損傷模型復制成功。ig紅芪水提物后各組大鼠肺損傷程度明顯改善,提示紅芪水提物可以有效地改善急性肺損傷狀況,使大鼠肺組織腫脹減輕,LI、W/D及肺含水率下降,肺組織病理損傷指標明顯改善。同時,與模型組比較,紅芪水提物高、中、低劑量組大鼠TNF-α蛋白表達水平明顯減弱,紅芪水提物高、中劑量組大鼠IL-10表達明顯增強,證實了紅芪對炎性因子的調節作用,說明紅芪可以通過降低TNF-α等前炎性反應因子、增強抗炎因子IL-10的表達,重建體內炎癥介質/抗炎介質的平衡,從而抑制急性肺損傷的發展,對急性肺損傷模型大鼠具有保護作用。其中,紅芪水提物高劑量組效果明顯,其對TNF-α和IL-10蛋白表達的調節作用均優于中、低劑量組。紅芪水提物對TNF-α與IL-10調節的作用機制可能是[15-16]:(1)紅芪水提物通過降低細胞前炎癥因子,從而抑制中性粒細胞和單核細胞炎癥介質的釋放;(2)紅芪水提物可以改善肺泡細胞的缺氧和營養缺乏,增強抗炎因子的表達;(3)紅芪水提物能夠修復受損的內皮細胞,阻斷其與中性粒細胞的黏附,從而抑制其他炎癥介質,如前列腺素、IL-6和IL-8等的釋放。
[1]中華醫學會重癥醫學分會.急性肺損傷/急性呼吸窘迫綜合征診斷和治療指南:2006[J].中華急診醫學雜志,2007,16(4):343.
[2]Steinberg KP,Hudson LD,Goodman RB,et al.Efficacy and safety of corticosteroids for persistent acute respiratory distress syndrome[J].N Engl J Med,2006,354(16):1671.
[3]楊林,譚玉玲.中藥紅芪的研究現狀[J].中外醫療,2010,12(5):120.
[4]朱冉,郭玫.紅芪有效成分及“入脾經”相關藥理研究[J].西部中醫藥,2012,25(1):27.
[5]胡燕,程衛東,劉欣,等.紅芪和黃芪水提物對小鼠免疫功能影響的差異[J].北京中醫藥大學學報,2011,34(9):623.
[6]白娟,黃正良,李萍.紅芪對油酸型肺損傷大鼠肺泡表面活性物質含量及板層小體的影響[J].中藥藥理與臨床,1997,13(2):26.
[7]梁曉海.紅芪水提物肺灌洗對兔肺炎鏈球菌肺炎的動脈血氣的影響[D].廣州:廣州中醫藥大學,2008.
[8]雷豐豐,趙建雄,王學習,等.紅芪總多糖對大鼠肺纖維化及其轉化生長因子β1干預的實驗觀察[J].中藥材,2008,31(6):873.
[9]李彬,李淑君.TNF-α和NF-κB在急性肺損傷中的作用機制[J].包頭醫學院學報,2011,27(2):120.
[10]李洪霞,張進川,趙亞力,等.白細胞介素10對急性肺損傷炎癥/抗炎介質表達的影響[J].中國危重急救醫學,2005,17(6):338.
[11]趙敏,師霞,邱桐,等.黃芪對急性呼吸窘迫綜合征大鼠模型肺組織中SP-A的影響[J].中醫臨床研究,2013,5(8):1.
[12]朱耀斌,李曉峰,張燕搏,等.急性肺損傷動物模型[J].中華實用診斷與治療,2011,25(7):625.
[13]方青,高榮,高英杰,等.急性肺損傷動物模型的研究現狀[J].中國畜牧獸醫,2010,37(5):50.
[14]馬濤,馬小民,高玉華,等.兩種不同誘因所致急性肺損傷動物模型的比較[J].江蘇醫藥,2010,36(21):2546.
[15]李超然.內毒素所致急性肺損傷發病機制的研究進展[J].中國醫藥科學,2011,1(10):47.
[16]關嵐,涂家紅,李天水,等.白細胞介素在急性肺損傷大鼠中的作用[J].中國急救復蘇與災害醫學雜志,2008,3(12):728.