無水化處理在病理組織HE染色中的應用價值

武良美 張 雁 高鳳婷

(江蘇省南京市浦口區中心醫院病理科 211800)

病理切片制片為病理診斷的基礎工作，制片質量高低直接影響到診斷的準確與否，也反映了醫院的治療水平［1］。切片和染色為制片的主要內容，其中，HE染色為組織標本處理中最常用的染色方法，其制作簡單，可得到染色穩定、色彩鮮艷的制片，但也存在一定的問題如使用過程中褪色等。此類問題的出現與蘇木精與伊紅染色液的pH值不夠穩定有關［2－3］。對染色前的切片進行無水化處理可有效改善此類問題。本文現將無水化處理HE染色的主要內容介紹如下。

1 材料與方法

1.1 材料及試劑

結腸組織標本(臨床科室送檢樣品);無水乙醇及95%乙醇(國藥集團試劑廠，分析純);蘇木精及伊紅Y(化學純，上海善普化工科技有限公司);其他試劑為實驗室常規試劑，均為分析純。蘇木精、伊紅染色液，酸性飽和硫酸鉀溶液，酸性移除溶液的配制參考文獻方法［4］。

1.2 組織處理及染色

1.2.1 組織處理將送檢結腸組織使用10%甲醛溶液固定，脫水、石蠟包埋，冷凍切片。切片厚度為4 μm，共80張切片。并隨機分為實驗組和對照組各40張。使用二甲苯洗去石蠟、無水乙醇－95%乙醇梯度水化后將切片置于蒸餾水中備用。

1.2.2 蘇木精染色 將實驗組切片從蒸餾水中取出，浸泡于酸性硫酸鉀飽和溶液中，使充分浸泡。滴入蘇木精染色液3 min。對照組切片自蒸餾水中取出后不經酸性硫酸鉀飽和溶液浸泡直接蘇木精染色液3 min。

1.2.3 伊紅染色 實驗組:從蘇木精染液中取出，蒸餾水沖洗5 s后直接置于3%碳酸氫鈉水溶液中，分別上下振動3次，約5 s;蒸餾水沖洗20 s后置于酸性乙醇中，分別上下振動3次，約5 s;采用伊紅染色液染色5 s，蒸餾水沖洗5 s。對照組:從蘇木精染液中取出，采用伊紅染色液染色5 s，蒸餾水沖洗5 s。兩組染色完成后采用無水乙醇 －95%乙醇梯度脫水、二甲苯透明，中性樹膠封片待檢。

1.3 結果觀察染色完成后由兩名高年資病理醫生結合肉眼及顯微鏡(40倍)觀察染色結果，以染色鮮艷、色澤分明、對比清晰、無沉渣為切片染色效果較好。

2 結果

2.1 肉眼觀察結果 實驗組切片著色較深，顏色鮮艷，色澤分明;對照組著色較淡，顏色不鮮艷，色澤不對不清晰。

2.2 顯微鏡觀察結果 觀察組:染色效果較好，鏡下可見細胞核為深藍色著色，且著色細膩;可明顯分辨核仁與核膜;細胞質與細胞核作色對比清晰，細胞質為鮮紅色，細胞核為深藍色;未見蘇木精沉渣。對照組:切片染色效果較差，細胞核與細胞質染色區分不清晰，細胞核呈淡藍色，細胞質為淡紅色;鏡下可見較多蘇木精沉渣。

3 討論

常規切片技術為病理技術中是一項既普通又極其重要的技術，所制得切片質量的好壞將直接關系到臨床病理診斷的準確性［5］。高質量的病理切片可給診斷提供十分有利的幫助，相反，切片褪色、質量不高等原因不僅耽誤診斷的及時性，還給患者帶來較大痛苦。因此，重視提高切片的質量對于病理診斷具有十分重要的意義［6］。HE染色為最為常見的切片制片技術，其操作關鍵在于組織的固定、脫水、浸蠟與包埋等步驟的處理是否科學、合理，但實驗室常見切片染色不均、切片褪色、蘇木精沉渣干擾診斷等因素均可對診斷造成干擾。如何提高病理組織HE染色切片的質量已經成為病理診斷的研究熱點［7］。

常規HE染色中，精處理后的切片置入蘇木精染色液后，由于切片自身攜帶的水分及空氣中水分的酸堿度高于蘇木精染色液的酸堿度，導致蘇木精染色液的pH值逐漸升高，致使染色液中的堿性氫氧根離子增多。持續增多的堿性氫氧根離子可與蘇木精染色液中的Al3+結合生產氫氧化鋁，導致染色液中游離的Al3+減少，導致蘇木紅的數量減少、細胞核染色染色較淡的發生。另外，持續增加的pH值可抑制蘇木精與細胞核的結合力，也促使細胞核染色不清晰的發生;較高的酸堿度導致伊紅的酸堿度高于細胞質的等電點，促使伊紅染色液與細胞質分離，導致染色不清晰，最終導致對診斷造成干擾［8］。

針對實驗中出現的上述問題，筆者分析對組織切片進行無水化處理后再染色可有效改善切片的質量。為此，在蘇木精染色階段，將組織切片充分浸泡于酸性硫酸鉀飽和溶液中，其酸堿度與蘇木精染色液相當，不感染染色，可使組織切片充分脫水后染色;伊紅染色階段，將組織切片使用蒸餾水沖洗5 s后直接置于3%碳酸氫鈉水溶液和置于酸性乙醇中，酸性乙醇取代了外來的水分，為有效抑制水分的滲入提供了保證，均為進行無水化處理的關鍵步驟。本文實驗表明，經無水化處理后，組織切片HE染色的質量明顯提高，具有重要的應用價值。

［1］王小曉.水溶性伊紅Y不同配置法對HE染色效果的影響［J］.臨床與實驗病理學雜志，2013，29(5):575－576.

［2］朱憶凌，龔偉，周新木，等.細胞學涂片HE染色后直接行免疫組化染色分析［J］.現代實用醫學，2012，24(8):876－877.

［3］劉海芳.HE染色切片褪色后免疫組化染色方法研究［J］.中國現代醫生，2011，49(17):81 －82.

［4］王力，曹加興，李濤，等.無水化處理在病理組織HE染色中的應用研究［J］.西南國防醫藥，2013，23(10):1045－1047.

［5］王法娟.高碘對大鼠下腔靜脈內皮細胞活化的影響［D］.山東大學，2012.

［6］王建民.淺析病理技術 HE染色在病理診斷中的應用措施［J］.醫藥前沿，2013，(6):306.

［7］唐從國，郭周慶.如何做好一張HE染色切片［J］.中國組織化學與細胞化學雜志，2012，21(4):428－429.

［8］劉勇，袁晟.采用組織芯片技術進行蘇木精 －伊紅(HE)染色技術標準化的研究［J］.實驗與檢驗醫學，2012，30(1):19 －20，95.